伍 玲(綜述),佘 強(qiáng)(審校)
(重慶醫(yī)科大學(xué)附屬第二醫(yī)院心內(nèi)科,重慶 400010)
脊椎動(dòng)物的心臟是產(chǎn)生有效血液循環(huán)、為機(jī)體的組織及器官提供氧和營養(yǎng)的泵器官。在心臟的發(fā)育及工作過程中,結(jié)構(gòu)及功能正常的冠狀動(dòng)脈系統(tǒng)的形成是保證心臟自身營養(yǎng)和氧供的基礎(chǔ),對心臟的正常工作至關(guān)重要。閉合的、有效的胚胎冠狀動(dòng)脈系統(tǒng)的發(fā)生及形成是胚胎繼續(xù)發(fā)育及存活的前提,先天冠狀動(dòng)脈異??蓪?dǎo)致重大心血管畸形。
近年來,心血管系統(tǒng)疾病的發(fā)生率呈逐年上升的趨勢,其中冠狀動(dòng)脈系統(tǒng)相關(guān)疾病嚴(yán)重威脅著人類健康。冠狀動(dòng)脈硬化性心臟病患者發(fā)生心肌梗死的原因是冠狀血管的阻塞導(dǎo)致心肌缺血,若能有效地誘導(dǎo)冠狀血管的修復(fù)及再生,心肌梗死等心血管疾病的晚期治療水平將有很大提高。因此,了解冠狀血管各成分的發(fā)生機(jī)制,將有利于利用現(xiàn)代生物學(xué)技術(shù)誘導(dǎo)血管修復(fù)及再生工程的進(jìn)展,有利于提高冠狀血管疾病的治療水平。
冠狀動(dòng)脈系統(tǒng)結(jié)構(gòu)及功能的形成依賴于內(nèi)皮細(xì)胞及平滑肌細(xì)胞的正常發(fā)育,任何一類細(xì)胞的發(fā)育缺陷都可導(dǎo)致冠狀動(dòng)脈系統(tǒng)異?!,F(xiàn)將從冠狀血管的發(fā)生、血管平滑肌細(xì)胞的來源、血管發(fā)生相關(guān)基因及信號(hào)通路等方面進(jìn)行綜述,并展望其研究前景。
早期心臟的發(fā)育始于小鼠E8.0日(人胚卡耐基胚胎發(fā)育10階段),由中胚葉背側(cè)板分化成的線形心管,原始心管僅由心肌及多層內(nèi)皮細(xì)胞構(gòu)成,無冠狀血管,其接受的氧和營養(yǎng)靠內(nèi)皮細(xì)胞的簡易擴(kuò)散。在E8.5~E9.5日(人胚卡耐基胚胎發(fā)育10~11階段),由于心臟四腔室結(jié)構(gòu)的形成及心肌壁增厚,氧及營養(yǎng)的簡易擴(kuò)散將受到限制,此時(shí)冠狀動(dòng)脈系統(tǒng)的形成成為必需。
冠狀血管的發(fā)育由多種分子機(jī)制及信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路參與。細(xì)胞譜系的決定、定向細(xì)胞遷移、上皮-間充質(zhì)轉(zhuǎn)化(epithelial-to-mesenchymal transition,EMT)現(xiàn)象的調(diào)控及細(xì)胞分化是冠狀血管發(fā)育的標(biāo)志。大部分冠狀血管的細(xì)胞成分都由心外膜分化形成,還可能與靜脈竇、心房肌起源過程有關(guān)。
血管平滑肌譜系的發(fā)育錯(cuò)綜復(fù)雜?;蜃V計(jì)劃確定了至少八種獨(dú)立的血管平滑肌細(xì)胞的前體細(xì)胞[2-3],每種前體細(xì)胞均有不同的譜系背景。這些前體細(xì)胞均可分化為平滑肌細(xì)胞,且均能表達(dá)平滑肌細(xì)胞的標(biāo)志基因如: SMαActin(Acta2),SM22α(Tagln),SM-calponin(Cnn1),SM-MHC(Myh11)。不同分化通路來源的前體細(xì)胞如何向平滑肌細(xì)胞分化,及其在細(xì)胞遷移、增殖過程中的作用均不甚清楚。
與血管內(nèi)皮細(xì)胞不同,不同部位的血管平滑肌細(xì)胞起源可不同,如大動(dòng)脈管壁平滑肌細(xì)胞多來源于背側(cè)神經(jīng)管上皮前體細(xì)胞[4],而降主動(dòng)脈平滑肌主要來源于表達(dá)Pax3及FoxC2的體節(jié)上皮細(xì)胞[5-6]。
關(guān)于冠狀血管平滑肌細(xì)胞的來源,既往研究認(rèn)為,近端冠狀動(dòng)脈平滑肌細(xì)胞來源于神經(jīng)嵴,其余部分來源于前體心外膜及心外膜[7],而冠狀靜脈平滑肌細(xì)胞來源于心房肌細(xì)胞[8]?,F(xiàn)在大多研究者認(rèn)為冠狀血管平滑肌細(xì)胞主要來源于心外膜前體,即小鼠胚胎E8.5日出現(xiàn)在竇房連接處的短暫的間皮細(xì)胞的聚集[9-10]。
心外膜是由前體心外膜衍生形成,包被于心臟表面,具有多向分化潛能的多能間充質(zhì)細(xì)胞。心外膜基因譜系示蹤提示,前體心外膜細(xì)胞可分化為管周成纖維細(xì)胞、血管平滑肌細(xì)胞及冠狀血管內(nèi)皮細(xì)胞[11]。對于冠狀血管平滑肌細(xì)胞,心外膜是最重要的來源,其參與調(diào)節(jié)冠狀血管平滑肌細(xì)胞的發(fā)生。
Wt1 是心外膜發(fā)育過程中具有重要調(diào)節(jié)作用的轉(zhuǎn)錄因子,其對心外膜及泌尿生殖道的發(fā)育具有重要作用[12-14]。Wt1在心外膜前體、心外膜及心外膜衍生細(xì)胞中均有表達(dá),現(xiàn)被看作是心外膜的標(biāo)志基因之一?,F(xiàn)代研究可示蹤心外膜前體的分化命運(yùn),其經(jīng)EMT參與大部分心肌細(xì)胞及部分冠狀血管平滑肌細(xì)胞的形成[15]。研究表明,Wt1缺失可導(dǎo)致竇房結(jié)頭部、心室、心房及主動(dòng)脈部分結(jié)構(gòu)消失,心外膜下間充質(zhì)減少及其向冠狀血管分化的功能喪失[15]。Wt1與心臟損傷后血管及心肌的修復(fù)有關(guān)[16-17]。
Tbx18是近年來發(fā)現(xiàn)的一個(gè)參與心臟發(fā)育調(diào)節(jié)的重要基因,其在哺乳動(dòng)物胚胎期心外膜、四肢、輸尿管及體節(jié)等部位均有表達(dá)[18-19]。有研究表明,Tbx18來源的心外膜祖細(xì)胞(Tbx18+ cardiacprogenitorcells,Tbx18+CPCS)可向竇房結(jié)起搏細(xì)胞、心室心房壁細(xì)胞、平滑肌細(xì)胞及成纖維細(xì)胞遷移分化[20],可能還參與心臟損傷后心肌及血管的修復(fù)及再生[17]。Tbx18在冠狀血管平滑肌細(xì)胞的形成過程中也至關(guān)重要,利用小鼠示蹤模型示蹤Tbx18基因及其衍生細(xì)胞,體內(nèi)及體外試驗(yàn)結(jié)果均提示Tbx18+CPCS參與冠狀血管平滑肌細(xì)胞的形成[20]。
Tcf21(Pod1)是一種在雞胚及小鼠胚胎前體心外膜、心外膜及心外膜衍生細(xì)胞中表達(dá)的轉(zhuǎn)錄因子[21]。Tcf21基因缺失可導(dǎo)致子代新生期的死亡,其死亡原因與肺、腎、脾等器官的缺陷有關(guān),間質(zhì)Tcf21的表達(dá)與肺及腎的上皮形態(tài)發(fā)生密切相關(guān)。在心臟冠狀血管發(fā)育方面,cf21陽性細(xì)胞可誘導(dǎo)分化為心臟成纖維細(xì)胞及冠狀血管平滑肌細(xì)胞[22]。若Tcf21基因缺失,心臟成纖維細(xì)胞前體細(xì)胞會(huì)停留在心外膜而不發(fā)生EMT,而心臟平滑肌細(xì)胞則會(huì)出現(xiàn)異常的增多及過早表達(dá),這種作用可能與維甲酸信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路的調(diào)節(jié)相關(guān)[23]。
4.1心外膜EMT 心外膜祖細(xì)胞是心臟內(nèi)部心肌細(xì)胞、成纖維細(xì)胞、平滑肌細(xì)胞等細(xì)胞的重要來源,細(xì)胞的定向分化決定了心外膜細(xì)胞發(fā)生EMT的能力。多種信號(hào)可激活心外膜EMT,這些信號(hào)作用于特定效應(yīng)器使細(xì)胞間黏附力減弱、細(xì)胞結(jié)構(gòu)和極性改變,并減少了細(xì)胞外基質(zhì)。心外膜EMT包括細(xì)胞角蛋白向波形蛋白的轉(zhuǎn)化,但波形蛋白在EMT過程中使細(xì)胞形態(tài)發(fā)生改變的確切機(jī)制尚不明確[24]。
心外膜EMT過程與多種信號(hào)的調(diào)控有關(guān)。轉(zhuǎn)錄生長因子β(transforming growth factor-β,TGF-β)最初被認(rèn)為是EMT過程的抑制因子之一,但近來的研究表明其可促進(jìn)EMT的發(fā)生[25]。成纖維細(xì)胞生長因子被認(rèn)為與心外膜祖細(xì)胞經(jīng)EMT分化為心肌細(xì)胞有關(guān)[26]。血小板源生長因子BB、血管內(nèi)皮細(xì)胞生長因子等雖不直接影響心外膜EMT過程,但可影響心外膜EMT后細(xì)胞的命運(yùn)[27]。
心臟冠狀血管平滑肌細(xì)胞發(fā)生起源可分為心外膜及其衍生細(xì)胞來源以及心肌細(xì)胞來源。心外膜EMT是心臟冠狀血管平滑肌細(xì)胞的主要來源。多種與EMT相關(guān)的生長因子通過影響心外膜EMT而影響冠狀血管平滑肌細(xì)胞的形成,某些基因及信號(hào)通路也可直接影響心臟冠狀血管平滑肌細(xì)胞的形成,如Notch信號(hào)通路、Wnt1/β聯(lián)蛋白通路、TGF-β及維甲酸等。
4.2Notch信號(hào)通路 Notch信號(hào)通路在決定細(xì)胞命運(yùn)、分化、增殖、凋亡以及再生等過程中具有重要作用。有研究表明,Notch受體是重要的心血管疾病調(diào)節(jié)因子,對心臟損傷可能有保護(hù)作用,其介導(dǎo)心肌保護(hù)作用的機(jī)制是復(fù)雜的,包括防止心肌細(xì)胞凋亡、再次激活心臟祖細(xì)胞及促進(jìn)新生血管形成等[28]。
有研究認(rèn)為,Notch通路是心外膜向冠狀血管遷移分化的中間通路,其在心臟損傷后的修復(fù)及再生過程中具有重要作用[28-29]。Pérez-Pomares等[30]的研究表明,大量Notch通路相關(guān)受體及配體在心外膜及冠狀血管發(fā)育過程中表達(dá)。前體心外膜及心外膜中Notch信號(hào)通路唯一胞內(nèi)介質(zhì)Rbpj轉(zhuǎn)錄因子的缺失可導(dǎo)致冠狀血管嚴(yán)重的形態(tài)異常,且Rbpj缺陷的胚胎其心外膜祖細(xì)胞可向冠狀動(dòng)脈分化,但不能形成有效的冠狀動(dòng)脈平滑肌細(xì)胞。Notch信號(hào)通路的活化可導(dǎo)致心外膜細(xì)胞過早分化為平滑肌細(xì)胞[29]。Notch信號(hào)通路對心臟冠狀血管平滑肌細(xì)胞的形成起重要作用。
4.3TGF-β通路 TGF-β分子信號(hào)家族同樣是參與調(diào)節(jié)心外膜分化及心臟冠狀血管發(fā)生的重要信號(hào)通路。在冠狀血管發(fā)生過程中,TGF-β受體在心外膜及心肌膜周圍區(qū)域均有表達(dá)[31],TGF-β1主要在E12.5日小鼠心外膜呈不連續(xù)表達(dá),后主要在流出道區(qū)域表達(dá),TGF-β2主要在E9.5~E10.5日小鼠前體心外膜及心外膜表達(dá),TGF-β3僅在小鼠E11.5日心外膜形成后開始有表達(dá),持續(xù)至E15.5日之后。
體外試驗(yàn)表明,TGF-β配體可促進(jìn)前體心外膜及心外膜EMT的發(fā)生,TGF-β2基因剔除可導(dǎo)致冠狀血管嚴(yán)重畸形[31-32]。TGF-βⅠ型及Ⅲ型受體在冠狀血管發(fā)育過程中起著重要作用,TGF-βⅠ型受體ALK5缺失的小鼠胚胎,心外膜EMT未完全阻斷,但心外膜向心肌細(xì)胞分化的通路被擾亂,其冠狀血管能夠形成,但較正常細(xì)且有淤血,在發(fā)育過程中冠狀動(dòng)脈的重構(gòu)出現(xiàn)障礙,冠狀血管中平滑肌細(xì)胞標(biāo)志物表達(dá)明顯減少[32]。以上結(jié)果表明,在冠狀血管平滑肌細(xì)胞的形成及分化過程中,TGF-β信號(hào)通路起重要作用。
4.4Wnt/β聯(lián)蛋白通路 Wnt通路是多種生物如果蠅和小鼠心臟發(fā)育過程中至關(guān)重要的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路,心臟發(fā)育過程中有多種Wnt相關(guān)受體的表達(dá)[33]。標(biāo)準(zhǔn)的Wnt通路的發(fā)生依賴于β聯(lián)蛋白的作用。心外膜缺失β聯(lián)蛋白基因可導(dǎo)致孕晚期胚胎或新生小鼠死亡。β聯(lián)蛋白缺失的小鼠因心肌細(xì)胞增殖障礙所以心肌較薄,且心外膜間質(zhì)層減少,故心外膜EMT減少。雖然這種基因剔除小鼠的冠狀動(dòng)脈發(fā)生障礙,但冠狀靜脈發(fā)育完整。研究表明,β聯(lián)蛋白基因缺失小鼠的冠狀血管平滑肌細(xì)胞發(fā)育障礙,且心外膜體外培養(yǎng)試驗(yàn)表明,該小鼠心外膜細(xì)胞中加入TGF-β后仍不能表達(dá)平滑肌細(xì)胞的標(biāo)志物[34]。以上結(jié)果表明,Wnt/β聯(lián)蛋白通路在冠狀血管平滑肌細(xì)胞發(fā)育過程中也具有重要作用。
4.5其他信號(hào)通路 與冠狀血管平滑肌細(xì)胞發(fā)生機(jī)制相關(guān)的信號(hào)通路除上所述外,還有一些通路及細(xì)胞因子如維甲酸、血小板生長因子BB、成纖維細(xì)胞生長因子等可通過影響心外膜EMT或直接影響平滑肌細(xì)胞的分化而調(diào)節(jié)冠狀血管平滑肌細(xì)胞的發(fā)生[30],且不同信號(hào)通路之間并不是各自作用而是相互影響,共同調(diào)節(jié)冠狀血管平滑肌細(xì)胞的發(fā)生。
冠狀血管平滑肌細(xì)胞的發(fā)生是由多種細(xì)胞因子、多條信號(hào)通路相互作用的復(fù)雜的過程。這些發(fā)生機(jī)制可能在成人心臟損傷后也被激活,并可能在心臟疾病的治療及心肌和血管的修復(fù)中起重要作用。故了解冠狀血管平滑肌細(xì)胞的發(fā)生機(jī)制可能對心臟損傷后血管的修復(fù)及再生有重要意義。通過大量的研究,了解了部分與冠狀血管平滑肌細(xì)胞發(fā)生相關(guān)的胚胎基因及其信號(hào)通路,但如何利用這些基因或怎樣使信號(hào)通路激活或失活以達(dá)到調(diào)節(jié)血管平滑肌細(xì)胞的增殖仍需進(jìn)一步探索。
[1] Riley PR,Smart N.Vascularizing the heart[J].Cardiovasc Res,2011,91(2):260-268.
[2] Majesky M.Developmental basis of vascular smooth muscle diversity[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2007,27(6):1248-1258.
[3] Wasteson P,Johansson B,Jukkola T,etal.Developmental origin of smooth muscle cells in the descending aorta in mice[J].Development,2008,135(10):1823-1832.
[4] Jiang X,Rowitch D,Soriano P,etal.Fate of the mammalian cardiac neural crest[J].Development,2000,127(8):1607-1616.
[5] Esner M,Meihac SM,Relaix F,etal.Smooth muscle of the dorsal aorta shares a common clonal origin with skeletal muscle of the myotome[J].Development,2006,133(4):737-749.
[6] Lagha M,Brunelli S,Messina G,etal.Pax3:FoxC2 reciprocal repression in the somite modulates muscular versus vascular cell fate choice in multipotent progenitors[J].Dev Cell,2009,17(6):892-899.
[7] Gittenberger-de Groot AC,DeRuiter MC,Bergwerff M,etal.Smooth muscle cell origin and its relation to heterogeneity in development and disease[J].Arter-ioscler Thromb Vasc Biol,1999,19(7):1589-1594.
[8] Vrancken Peeters MP,Gittenberger-de Groot AC,Mentink MM,etal.Smooth muscle cells and fibroblasts of the coronary arteries derive from epithelial-mesenchymal transformation of the epicardium[J].Anat Embryol(Berl),1999,199(4):367-378.
[9] M?nner J,Pérez-Pomares JM,Macías D,etal.The origin,formation and developmental significance of the epicardium:a review[J].Cells Tissues Organs,2001,169(2):89-103.
[10] Majesky MW.Development of coronary vessels[J].Curr Top Dev Biol,2004,62:225-259.
[11] Guadix JA,Carmona R,Muoz-Chápuli R,etal.In vivo and in vitro analysis of the vasculogenic potential of avian proepicardial and epicardial cells[J].Dev Dyn,2006,235(4):1014-1026.
[12] Moore AW,McInnes L,Kreidberg J,etal.YAC comple-mentation shows a requirement for Wt1 in the development of epicardium,adrenal gland and throughout nephrogenesis[J].Development,1999,126(9):1845-1857.
[13] Schedl A,Hastie N.Multiple roles for the Wilms′tumour suppressor gene,WT1 in genitourinary development[J].Mol Cell Endocrinol,1998,140(1/2):65-69.
[14] Rudat C,Kispert A.Wt1 and epicardial fate mapping[J].Circ Res,2012,111(2):165-169.
[15] Zhou B,Ma Q,Rajagopal S,etal.Epicardial progenitors contribute to the cardiomyocyte lineage in the developing heart[J].Nature,2008,454(7200):109-113.
[16] Wills AA,Holdway JE,Major RJ,etal.Regulated addition of new myocardial and epicardial cells fosters homeostatic cardiac growth and maintenance in adult zebrafish[J].Development,2008,135(1):183-192.
[17] Smart N,Bollini S,Dubé KN,etal.De novo cardiomyocytes from within the activated adult heart after injury[J].Nature,2011,474(7353):640-644.
[18] Kraus F,Haenig B,Kispert A.Cloning and expression analysis of the mouse T-box gene Tbx18[J].Mech Dev,2001,100(1):83-86.
[19] 蒲荻,杜建霖,李曉群,等.轉(zhuǎn)錄因子Tbx18在小鼠胚胎發(fā)育過程中的時(shí)空表達(dá)[J].第三軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào),2012,34(12):1171-1175.
[20] Christoffels VM,Grieskamp T,Norden J,etal.Tbx18 and the fate of epicardial progenitors[J].Nature,2009,458(7240):E8-E9.
[21] Combs MD,Braitsch CM,Lange AW,etal.NFATC1 promotes epicardium-derived cell invasion into myocardium[J].Development,2011,138(9):1747-1757.
[22] Acharya A,Baek ST,Huang G,etal.The bHLH transcription factor Tcf21 is required for lineage-specific EMT of cardiac fibroblast progenitors[J].Development,2012,139(12):2139-2149.
[23] Braitsch CM,Combs MD,Quaggin SE,etal.QuagginPod1/Tcf21 is regulated by retinoic acid signaling and inhibits differentiation of epicardium-derived cells into smooth muscle in the developing heart[J].Dev Biol,2012,368(2):345-357.
[24] Ivaska J,Pallari HM,Nevo J,etal.Novel functions of vimentin in cell adhesion,migration,and signaling[J].Exp Cell Res,2007,313(10):2050-2062.
[25] Compton LA,Potash DA,Brown CB,etal.Coronary vessel development is dependent on the type Ⅲtransforming growth factor beta receptor[J].Circ Res,2007,101(8):784-791.
[26] Pennisi DJ,Mikawa T.FGFR-1 is required by epicardium-derived cells for myocardial invasion and correct coronary vascular lineage differentiation[J].Dev Biol,2009,328(1):148-159.
[27] Smith CL,Baek ST,Sung CY,etal.Epicardial-derived cell epithelial-to-mesenchymal transition and fate specification require PDGF receptor signaling[J].Circ Res,2011,108(12):e15-e26.
[28] del Monte G,Casanova JC,Guadix JA,etal.Differential Notch signaling in the epicardium is required for cardiac inflow development and coronary vessel morphogenesis[J].Circ Res,2011,108(7):824-836.
[29] Grieskamp T,Rudat C,Lüdtke TH,etal.Notch signaling regulates smooth muscle differentiation of epicardium-derived cells[J].Circ Res,2011,108(7):813-823.
[30] Pérez-Pomares JM,de la Pompa JL.Signaling During Epicardium and Coronary Vessel Development[J].Circ Res,2011,109(12):1429-1442.
[31] Olivey HE,Mundell NA,Austin AF,etal.Transforming growth factor-beta stimulates epithelial-mesenchymal transformation in the pro-epicardium[J].Dev Dyn,2006,235(1):50-59.
[32] Compton LA,Potash DA,Mundell NA,etal.Transforming growth factor-beta induces loss of epithelial character and smooth muscle cell differentiation in epicardial cells[J].Dev Dyn,2006,235(1):82-93.
[33] Brade T,M?nner J,Kühl M.The role of Wnt signalling in cardiac development and tissue remodelling in the mature heart[J].Cardiovasc Res,2006,72:198-209.
[34] Zamora M,M?nner J,Ruiz-Lozano P.Epicardium-derived progenitor cells require beta-catenin for coronary artery formation[J].Proc Natl Acad Sci USA,2007,104(46):18109-18114.