張笛+張勇攀+錢文正+于恩琪+秦愛建+金文杰
摘要:以致鵝卵黃性腹膜炎大腸桿菌分離株G8107菌株基因組DNA為模板,用PCR法擴(kuò)增ompA precursor基因,PCR產(chǎn)物用EcoRⅠ、XhoⅠ雙酶切,酶切產(chǎn)物回收與相同黏性末端的表達(dá)載體 pET-32a(+)連接構(gòu)建表達(dá)ompA precursor的重組質(zhì)粒,將此重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化入表達(dá)宿主菌BL21(DE3),抽提質(zhì)粒,酶切鑒定及測序正確后誘導(dǎo)表達(dá)。對轉(zhuǎn)化菌株以 IPTG 進(jìn)行誘導(dǎo)后,裂解細(xì)菌,離心,上清進(jìn)行 SDS-PAGE鑒定。測序結(jié)果顯示,ompA precursor基因大小為 1 014 bp,編碼 338 個氨基酸殘基,蛋白相對分子質(zhì)量約為36。原核表達(dá)產(chǎn)物經(jīng) SDS-PAGE 分析表明,以28 ℃ 1.0 mmol/L 的 IPTG 誘導(dǎo)6 h,該基因表達(dá)效果最好。經(jīng)Western Blot檢測,表達(dá)的重組蛋白可與抗His標(biāo)簽蛋白單抗反應(yīng)。
關(guān)鍵詞:致鵝卵黃性腹膜炎大腸桿菌;外膜蛋白前體;克隆與表達(dá)
中圖分類號:S858.33 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A
文章編號:1002-1302(2014)08-0032-03
鵝卵黃性腹膜炎是一種主要發(fā)生于產(chǎn)蛋種鵝的疾病[1]。該病的發(fā)生主要是由于公鵝生殖器感染大腸桿菌,在交配的過程中傳染給母鵝,導(dǎo)致輸卵管感染大腸桿菌出現(xiàn)炎癥,最終導(dǎo)致卵黃性腹膜炎。該病會導(dǎo)致產(chǎn)蛋母鵝生產(chǎn)性能下降甚至絕產(chǎn),嚴(yán)重的導(dǎo)致產(chǎn)蛋母鵝死亡,造成巨大的經(jīng)濟(jì)損失[2-4]。大腸桿菌是自然界廣泛存在的條件性致病菌,其被發(fā)現(xiàn)后很長一段時間內(nèi)一直被當(dāng)做腸道內(nèi)的正常菌群而非致病菌,后來人類才認(rèn)識到某些血清型的大腸桿菌對人、畜禽具有致病性,當(dāng)動物機(jī)體抵抗力下降或免疫功能受損時可引發(fā)感染。外膜蛋白A是廣泛存在于革蘭氏陰性腸桿菌外膜上的蛋白,OmpA precursor是大腸桿菌外膜蛋白A的前體蛋白。徐淑華以O(shè)mpA為指示蛋白,研究E.coli的Prlc基因產(chǎn)物對OmpA前體蛋白翻譯后轉(zhuǎn)位功能,結(jié)果表明,Prlc基因產(chǎn)物在一定程度上能增進(jìn)OmpA的轉(zhuǎn)位定域[5]。OmpA是細(xì)菌抗宿主殺傷因子,能維持細(xì)菌外膜結(jié)構(gòu)完整及細(xì)菌形態(tài)正常,同時在細(xì)菌黏附、侵襲起始過程中起關(guān)鍵作用。OmpA具有良好的免疫原性,是先天免疫系統(tǒng)的重要靶位,也可以在免疫逃逸中發(fā)揮重要作用[6-8]。由于OmpA 蛋白的生物學(xué)特性,而且在革蘭氏陰性桿菌中OmpA蛋白普遍存在,因此也可以將其作為疫苗的候選分子[9-10]。本研究選取差異蛋白OmpA前體蛋白,對蛋白進(jìn)行體外克隆表達(dá),進(jìn)而探索蛋白在細(xì)菌中與宿主的關(guān)系,旨在為揭示蛋白功能及鵝卵黃性腹膜炎發(fā)生機(jī)理提供幫助。
1 材料與方法
1.1 菌種與載體
致鵝卵黃性腹膜炎大腸桿菌菌株G8107由揚(yáng)州大學(xué)江蘇省動物預(yù)防醫(yī)學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室分離保存。原核表達(dá)載體 pET-32a(+)、大腸桿菌BL21(DE3)均由該實(shí)驗(yàn)室保存。
1.2 試劑
Tryptone、Yeast Extract為Oxiod公司產(chǎn)品;Taq酶、dNTP、10×buffer、1 kb marker、限制性內(nèi)切酶EcoRⅠ、XhoⅠ購自Fermantes生物工程公司;質(zhì)粒提取試劑盒、PCR產(chǎn)物及凝膠純化回收試劑盒購自Axygen公司;PCR引物由華大基因合成;甲叉雙丙烯酰胺、TEMED、NBT、咪唑?yàn)锳mresco公司產(chǎn)品;蛋白質(zhì)純化鎳柱購自GE公司;蛋白marker 購自Fermantes公司;His 標(biāo)簽抗體為筆者所在實(shí)驗(yàn)室自制;其他試劑均為國產(chǎn)分析純。
1.3 引物設(shè)計及合成
根據(jù)GenBank上發(fā)表的大腸桿菌Escherichia coli O157:H7 str. EC1212 的ompA precursor基因序列設(shè)計PCR擴(kuò)增引物,在上游引物5′末端加入EcoRⅠ 限制性酶切位點(diǎn)及保護(hù)性堿基,下游引物5′末端加入XhoⅠ限制性酶切位點(diǎn)及保護(hù)性堿基。引物序列為:上游引物:5′-CTGAATTCCTGGCACTGGCTGGTTTC-3′;下游引物:5′- ATCTCGAGTTAAGCCTGCGGCTGAGT-3′。PCR 擴(kuò)增產(chǎn)物大小為1 014 bp。
1.4 PCR 擴(kuò)增目的基因
以致鵝卵黃性腹膜炎大腸桿菌菌株G8107基因組 DNA 為模板擴(kuò)增ompA precursor基因片段,取新鮮培養(yǎng)的細(xì)菌菌液,12 000 r/min離心1 min,去上清,沉淀用100 μL超純水重懸,將重懸的沉淀煮沸10 min,-20 ℃凍存10 min,取出融化,12 000 r/min 離心5 min,將上清轉(zhuǎn)移至另一離心管中用于PCR。反應(yīng)條件為 95 ℃ 5 min;94 ℃ 50 s,63 ℃ 50 s,72 ℃ 1 min 20 s,循環(huán)35次;72 ℃延伸10 min。用PCR產(chǎn)物純化試劑盒說明書操作回收目的基因。
1.5 目的基因 ompA precursor的克隆及測序
回收的 PCR 產(chǎn)物、pET-32a(+)空載體質(zhì)粒用EcoRⅠ、 XhoⅠ雙酶切,再次回收產(chǎn)物,將ompA precursor 2次膠回收產(chǎn)物及雙酶切后的表達(dá)載體pET-32a(+)在連接酶的作用下于16 ℃過夜連接。取連接產(chǎn)物10 μL轉(zhuǎn)入E.coli BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞內(nèi)(CaCl2法),涂布于含0.1%氨芐的LB 瓊脂平板上,37 ℃培養(yǎng)過夜。挑取單菌落于液體培養(yǎng)基中培養(yǎng),用質(zhì)粒提取試劑盒提取質(zhì)粒,經(jīng)雙酶切鑒定正確的為陽性,將陽性細(xì)菌送測序,測序結(jié)果正確的細(xì)菌用于表達(dá)。
1.6 OmpA precursor融合蛋白表達(dá)條件摸索及蛋白純化
經(jīng)鑒定正確新鮮的ompA precursor陽性重組菌及含有pET-32a(+)質(zhì)粒的BL21(DE3)空載體菌按1 ∶100轉(zhuǎn)接種培養(yǎng)3 h,加入 IPTG,終濃度分別為0、0.25、0.5、0.75、1、1.25 mmol/L,28 ℃分別誘導(dǎo) 2、3、4、5、6 h,每隔1 h收獲相應(yīng)細(xì)菌。等體積菌液4 ℃ 8 000 r/min離心10 min,棄上清,沉淀用1 mL無菌PBS溶液洗滌,4 ℃ 8 000 r/min離心10 min,棄上清,沉淀用400 μL無菌超輕水重懸,懸液超聲裂解,裂解液4 ℃ 8 000 r/min離心10 min,取上清測定濃度,通過 SDS-PAGE 確定蛋白最佳表達(dá)條件。確定最佳表達(dá)條件后采用相同方法大量表達(dá)蛋白,裂解上清經(jīng)0.22 μm濾膜過濾后用His標(biāo)簽鎳柱對上清進(jìn)行純化。
1.7 Western Blot驗(yàn)證
將經(jīng)誘導(dǎo)表達(dá)、純化的上清加 6×上樣buffer混勻,沸水浴10 min,冰浴5 min,離心后取上清進(jìn)行SDS-PAGE。按分子克隆方法,采用電轉(zhuǎn)移方法將膠中蛋白轉(zhuǎn)到硝酸纖維素薄膜上,5%脫脂乳4 ℃過夜封閉,一抗為筆者所在實(shí)驗(yàn)室自制的抗His 標(biāo)簽蛋白單抗腹水(稀釋度為1 ∶2 000),37 ℃作用1 h,二抗采用AP標(biāo)記的羊抗鼠 IgG(稀釋度為 1 ∶30 000),37 ℃作用1 h,NBT顯色。
2 結(jié)果與分析
2.1 ompA基因的 PCR 擴(kuò)增和表達(dá)質(zhì)粒的構(gòu)建
以致鵝卵黃性腹膜炎大腸桿菌G8107基因組為模板進(jìn)行 PCR 擴(kuò)增,用1%瓊脂糖凝膠電泳,以1 kb marker為參照,在1 000 bp左右位置得到與預(yù)期大小一致的擴(kuò)增條帶,結(jié)果如圖1所示。
將回收的ompA precursor PCR產(chǎn)物、pET-32a(+)空載體質(zhì)粒用EcoRⅠ、 XhoⅠ雙酶切,再次回收產(chǎn)物,進(jìn)行1% 瓊脂糖凝膠電泳鑒定,得到5 900、1 014 bp 2個目的條帶,結(jié)果如圖2所示。
將雙酶切后回收的ompA precursor片段及pET-32a(+)載體連接,構(gòu)建pET32a-pre-ompA重組質(zhì)粒。該重組質(zhì)粒雙酶切后,可得到與目的基因(1 014 bp)及載體(5 900 bp)大小相同的2個片段,如圖3所示。將重組細(xì)菌送測序鑒定,結(jié)果正確。
2.3 pET32a-pre-ompA重組表達(dá)蛋白Western Blot鑒定
將純化后的蛋白上清進(jìn)行SDS-PAGE蛋白電泳,隨后轉(zhuǎn)印至硝酸纖維素膜上進(jìn)行Western Blot分析,在分子量 54 ku 處可見陽性條帶(圖10)。
3 結(jié)論與討論
鵝卵黃性腹膜炎別稱鵝蛋子瘟,是一種主要發(fā)生于產(chǎn)蛋種鵝的疾病,能導(dǎo)致鵝生產(chǎn)性能下降甚至死亡。目前,有關(guān)鵝卵黃性腹膜炎大腸桿菌的致病機(jī)理仍不清楚。1977 年,Chai等發(fā)現(xiàn),大腸桿菌的 OmpA 蛋白是大腸桿菌外膜上的主要蛋白[10]。1984 年 Morona等預(yù)測 OmpA 蛋白為多次跨膜結(jié)構(gòu)[11]。1998 年 Pautsch等描述了第1個 OmpA 蛋白的晶體結(jié)構(gòu)[12]。本研究的OmpA precursor為二維電泳差異蛋白。研究表明,大腸桿菌的外膜蛋白具有良好的免疫原性并且能夠誘導(dǎo)機(jī)體脾淋巴細(xì)胞增殖,增強(qiáng)了淋巴細(xì)胞活化,在免疫反應(yīng)中具有重要作用[13]。OmpA 普遍存在于大腸桿菌菌體外膜中,是大腸桿菌重要的毒力因子,參與大腸桿菌對宿主細(xì)胞的黏附作用與侵襲功能[14]。本研究成功克隆了致鵝卵黃性腹膜炎大腸桿菌的外膜蛋白A前體蛋白基因,并在原核表達(dá)載體pET-32a(+)中成功表達(dá),同時確定了最佳表達(dá)時間、溫度及誘導(dǎo)劑IPTG的濃度。Western Blot結(jié)果表明,融合蛋白能夠與抗His標(biāo)簽蛋白單抗腹水反應(yīng)。由于本研究期望獲得可溶性表達(dá)并盡量保持蛋白原空間構(gòu)象的完整,因此只選擇細(xì)菌裂解上清進(jìn)行鎳柱純化,對于包涵體中的蛋白并未用常用的中性去垢劑例如吐溫、NP40進(jìn)行處理,結(jié)果發(fā)現(xiàn),純化的蛋白在透析及濃縮的過程中極易發(fā)生析出,同時凍融后極易發(fā)生降解。免疫印跡試驗(yàn)存在雜條帶,初步分析這可能是OmpA前體蛋白發(fā)生降解的原因,應(yīng)作進(jìn)一步研究。
參考文獻(xiàn):
[1]王永坤,田慧芳. 鵝蛋子瘟防治的研究[J]. 中國禽業(yè)導(dǎo)刊,2003,20(11):19-20.
[2]吳立芬. 母鵝卵黃性腹膜炎的發(fā)生及防治[J]. 現(xiàn)代農(nóng)業(yè)科技,2009(13):339.
[3]施馥壽. 控制卵黃性腹膜炎的嘗試[J]. 家禽,1985(2):11.
[4]王尚榮. 鵝卵黃性腹膜炎的診療報告[J]. 中國動物檢疫,2005,22(4):39-40.
[5]徐淑華. E.coli的Prlc基因產(chǎn)物對OmpA前體蛋白翻譯后轉(zhuǎn)位的功能[J]. 生物化學(xué)雜志,1991,6(7):651-656.
[6]Belaaouaj A,Kim K S,Shapiro S D. Degradation of outer membrane protein A in Escherichia coli killing by neutrophil elastase[J]. Science,2000,289(5482):1185-1188.
[7]Prasadarao N V,Blom A M,Villoutreix B O,et al. A novel interaction of outer membrane protein A with C4b binding protein mediates serum resistance of Escherichia coli K1[J]. Journal of Immunology,2002,169(11):6352-6360.
[8]Sukumaran S K,Shimada H,Prasadarao N V. Entry and intracellular replication of Escherichia coli K1 in macrophages require expression of outer membrane protein A[J]. Infection and Immunity,2003,71(10):5951-5961.
[9]呼 銳,佟春玉,崔玉東.大腸桿菌外膜蛋白A在原核表達(dá)載體中的克隆表達(dá)[J]. 黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)學(xué)報,2011,23(1):56-59.
[10]Chai T J,F(xiàn)oulds J.Purification of protein A,an outer membrane component missing in Escherichia coli K-12 ompA mutants[J]. Biochimica et Biophysica Acta,1977,493(1):210-215.
[11]Morona R,Klose M,Henning U. Escherichia coli K-12 outer membrane protein(OmpA) as a bacteriophage receptor:analysis of mutant genes expressing altered proteins[J]. Journal of Bacteriology,1984,159(2):570-578.
[12]Pautsch A,Schulz G E. Structure of the outer membrane protein A transmembrane domain[J]. Nature Structural Biology,1998,5(11):1013-1017.
[13]李曉霞,邱玉玉,王海榮. 腸致病性大腸桿菌外膜蛋白免疫保護(hù)性研究[J]. 中國免疫學(xué)雜志,2007,23(5):394-397.
[14]宋 舟,陳 偉,張立艷,等. 大腸桿菌外膜蛋白A研究進(jìn)展[J]. 中國畜牧獸醫(yī),2012,39(5):199-202.
1.7 Western Blot驗(yàn)證
將經(jīng)誘導(dǎo)表達(dá)、純化的上清加 6×上樣buffer混勻,沸水浴10 min,冰浴5 min,離心后取上清進(jìn)行SDS-PAGE。按分子克隆方法,采用電轉(zhuǎn)移方法將膠中蛋白轉(zhuǎn)到硝酸纖維素薄膜上,5%脫脂乳4 ℃過夜封閉,一抗為筆者所在實(shí)驗(yàn)室自制的抗His 標(biāo)簽蛋白單抗腹水(稀釋度為1 ∶2 000),37 ℃作用1 h,二抗采用AP標(biāo)記的羊抗鼠 IgG(稀釋度為 1 ∶30 000),37 ℃作用1 h,NBT顯色。
2 結(jié)果與分析
2.1 ompA基因的 PCR 擴(kuò)增和表達(dá)質(zhì)粒的構(gòu)建
以致鵝卵黃性腹膜炎大腸桿菌G8107基因組為模板進(jìn)行 PCR 擴(kuò)增,用1%瓊脂糖凝膠電泳,以1 kb marker為參照,在1 000 bp左右位置得到與預(yù)期大小一致的擴(kuò)增條帶,結(jié)果如圖1所示。
將回收的ompA precursor PCR產(chǎn)物、pET-32a(+)空載體質(zhì)粒用EcoRⅠ、 XhoⅠ雙酶切,再次回收產(chǎn)物,進(jìn)行1% 瓊脂糖凝膠電泳鑒定,得到5 900、1 014 bp 2個目的條帶,結(jié)果如圖2所示。
將雙酶切后回收的ompA precursor片段及pET-32a(+)載體連接,構(gòu)建pET32a-pre-ompA重組質(zhì)粒。該重組質(zhì)粒雙酶切后,可得到與目的基因(1 014 bp)及載體(5 900 bp)大小相同的2個片段,如圖3所示。將重組細(xì)菌送測序鑒定,結(jié)果正確。
2.3 pET32a-pre-ompA重組表達(dá)蛋白Western Blot鑒定
將純化后的蛋白上清進(jìn)行SDS-PAGE蛋白電泳,隨后轉(zhuǎn)印至硝酸纖維素膜上進(jìn)行Western Blot分析,在分子量 54 ku 處可見陽性條帶(圖10)。
3 結(jié)論與討論
鵝卵黃性腹膜炎別稱鵝蛋子瘟,是一種主要發(fā)生于產(chǎn)蛋種鵝的疾病,能導(dǎo)致鵝生產(chǎn)性能下降甚至死亡。目前,有關(guān)鵝卵黃性腹膜炎大腸桿菌的致病機(jī)理仍不清楚。1977 年,Chai等發(fā)現(xiàn),大腸桿菌的 OmpA 蛋白是大腸桿菌外膜上的主要蛋白[10]。1984 年 Morona等預(yù)測 OmpA 蛋白為多次跨膜結(jié)構(gòu)[11]。1998 年 Pautsch等描述了第1個 OmpA 蛋白的晶體結(jié)構(gòu)[12]。本研究的OmpA precursor為二維電泳差異蛋白。研究表明,大腸桿菌的外膜蛋白具有良好的免疫原性并且能夠誘導(dǎo)機(jī)體脾淋巴細(xì)胞增殖,增強(qiáng)了淋巴細(xì)胞活化,在免疫反應(yīng)中具有重要作用[13]。OmpA 普遍存在于大腸桿菌菌體外膜中,是大腸桿菌重要的毒力因子,參與大腸桿菌對宿主細(xì)胞的黏附作用與侵襲功能[14]。本研究成功克隆了致鵝卵黃性腹膜炎大腸桿菌的外膜蛋白A前體蛋白基因,并在原核表達(dá)載體pET-32a(+)中成功表達(dá),同時確定了最佳表達(dá)時間、溫度及誘導(dǎo)劑IPTG的濃度。Western Blot結(jié)果表明,融合蛋白能夠與抗His標(biāo)簽蛋白單抗腹水反應(yīng)。由于本研究期望獲得可溶性表達(dá)并盡量保持蛋白原空間構(gòu)象的完整,因此只選擇細(xì)菌裂解上清進(jìn)行鎳柱純化,對于包涵體中的蛋白并未用常用的中性去垢劑例如吐溫、NP40進(jìn)行處理,結(jié)果發(fā)現(xiàn),純化的蛋白在透析及濃縮的過程中極易發(fā)生析出,同時凍融后極易發(fā)生降解。免疫印跡試驗(yàn)存在雜條帶,初步分析這可能是OmpA前體蛋白發(fā)生降解的原因,應(yīng)作進(jìn)一步研究。
參考文獻(xiàn):
[1]王永坤,田慧芳. 鵝蛋子瘟防治的研究[J]. 中國禽業(yè)導(dǎo)刊,2003,20(11):19-20.
[2]吳立芬. 母鵝卵黃性腹膜炎的發(fā)生及防治[J]. 現(xiàn)代農(nóng)業(yè)科技,2009(13):339.
[3]施馥壽. 控制卵黃性腹膜炎的嘗試[J]. 家禽,1985(2):11.
[4]王尚榮. 鵝卵黃性腹膜炎的診療報告[J]. 中國動物檢疫,2005,22(4):39-40.
[5]徐淑華. E.coli的Prlc基因產(chǎn)物對OmpA前體蛋白翻譯后轉(zhuǎn)位的功能[J]. 生物化學(xué)雜志,1991,6(7):651-656.
[6]Belaaouaj A,Kim K S,Shapiro S D. Degradation of outer membrane protein A in Escherichia coli killing by neutrophil elastase[J]. Science,2000,289(5482):1185-1188.
[7]Prasadarao N V,Blom A M,Villoutreix B O,et al. A novel interaction of outer membrane protein A with C4b binding protein mediates serum resistance of Escherichia coli K1[J]. Journal of Immunology,2002,169(11):6352-6360.
[8]Sukumaran S K,Shimada H,Prasadarao N V. Entry and intracellular replication of Escherichia coli K1 in macrophages require expression of outer membrane protein A[J]. Infection and Immunity,2003,71(10):5951-5961.
[9]呼 銳,佟春玉,崔玉東.大腸桿菌外膜蛋白A在原核表達(dá)載體中的克隆表達(dá)[J]. 黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)學(xué)報,2011,23(1):56-59.
[10]Chai T J,F(xiàn)oulds J.Purification of protein A,an outer membrane component missing in Escherichia coli K-12 ompA mutants[J]. Biochimica et Biophysica Acta,1977,493(1):210-215.
[11]Morona R,Klose M,Henning U. Escherichia coli K-12 outer membrane protein(OmpA) as a bacteriophage receptor:analysis of mutant genes expressing altered proteins[J]. Journal of Bacteriology,1984,159(2):570-578.
[12]Pautsch A,Schulz G E. Structure of the outer membrane protein A transmembrane domain[J]. Nature Structural Biology,1998,5(11):1013-1017.
[13]李曉霞,邱玉玉,王海榮. 腸致病性大腸桿菌外膜蛋白免疫保護(hù)性研究[J]. 中國免疫學(xué)雜志,2007,23(5):394-397.
[14]宋 舟,陳 偉,張立艷,等. 大腸桿菌外膜蛋白A研究進(jìn)展[J]. 中國畜牧獸醫(yī),2012,39(5):199-202.
1.7 Western Blot驗(yàn)證
將經(jīng)誘導(dǎo)表達(dá)、純化的上清加 6×上樣buffer混勻,沸水浴10 min,冰浴5 min,離心后取上清進(jìn)行SDS-PAGE。按分子克隆方法,采用電轉(zhuǎn)移方法將膠中蛋白轉(zhuǎn)到硝酸纖維素薄膜上,5%脫脂乳4 ℃過夜封閉,一抗為筆者所在實(shí)驗(yàn)室自制的抗His 標(biāo)簽蛋白單抗腹水(稀釋度為1 ∶2 000),37 ℃作用1 h,二抗采用AP標(biāo)記的羊抗鼠 IgG(稀釋度為 1 ∶30 000),37 ℃作用1 h,NBT顯色。
2 結(jié)果與分析
2.1 ompA基因的 PCR 擴(kuò)增和表達(dá)質(zhì)粒的構(gòu)建
以致鵝卵黃性腹膜炎大腸桿菌G8107基因組為模板進(jìn)行 PCR 擴(kuò)增,用1%瓊脂糖凝膠電泳,以1 kb marker為參照,在1 000 bp左右位置得到與預(yù)期大小一致的擴(kuò)增條帶,結(jié)果如圖1所示。
將回收的ompA precursor PCR產(chǎn)物、pET-32a(+)空載體質(zhì)粒用EcoRⅠ、 XhoⅠ雙酶切,再次回收產(chǎn)物,進(jìn)行1% 瓊脂糖凝膠電泳鑒定,得到5 900、1 014 bp 2個目的條帶,結(jié)果如圖2所示。
將雙酶切后回收的ompA precursor片段及pET-32a(+)載體連接,構(gòu)建pET32a-pre-ompA重組質(zhì)粒。該重組質(zhì)粒雙酶切后,可得到與目的基因(1 014 bp)及載體(5 900 bp)大小相同的2個片段,如圖3所示。將重組細(xì)菌送測序鑒定,結(jié)果正確。
2.3 pET32a-pre-ompA重組表達(dá)蛋白Western Blot鑒定
將純化后的蛋白上清進(jìn)行SDS-PAGE蛋白電泳,隨后轉(zhuǎn)印至硝酸纖維素膜上進(jìn)行Western Blot分析,在分子量 54 ku 處可見陽性條帶(圖10)。
3 結(jié)論與討論
鵝卵黃性腹膜炎別稱鵝蛋子瘟,是一種主要發(fā)生于產(chǎn)蛋種鵝的疾病,能導(dǎo)致鵝生產(chǎn)性能下降甚至死亡。目前,有關(guān)鵝卵黃性腹膜炎大腸桿菌的致病機(jī)理仍不清楚。1977 年,Chai等發(fā)現(xiàn),大腸桿菌的 OmpA 蛋白是大腸桿菌外膜上的主要蛋白[10]。1984 年 Morona等預(yù)測 OmpA 蛋白為多次跨膜結(jié)構(gòu)[11]。1998 年 Pautsch等描述了第1個 OmpA 蛋白的晶體結(jié)構(gòu)[12]。本研究的OmpA precursor為二維電泳差異蛋白。研究表明,大腸桿菌的外膜蛋白具有良好的免疫原性并且能夠誘導(dǎo)機(jī)體脾淋巴細(xì)胞增殖,增強(qiáng)了淋巴細(xì)胞活化,在免疫反應(yīng)中具有重要作用[13]。OmpA 普遍存在于大腸桿菌菌體外膜中,是大腸桿菌重要的毒力因子,參與大腸桿菌對宿主細(xì)胞的黏附作用與侵襲功能[14]。本研究成功克隆了致鵝卵黃性腹膜炎大腸桿菌的外膜蛋白A前體蛋白基因,并在原核表達(dá)載體pET-32a(+)中成功表達(dá),同時確定了最佳表達(dá)時間、溫度及誘導(dǎo)劑IPTG的濃度。Western Blot結(jié)果表明,融合蛋白能夠與抗His標(biāo)簽蛋白單抗腹水反應(yīng)。由于本研究期望獲得可溶性表達(dá)并盡量保持蛋白原空間構(gòu)象的完整,因此只選擇細(xì)菌裂解上清進(jìn)行鎳柱純化,對于包涵體中的蛋白并未用常用的中性去垢劑例如吐溫、NP40進(jìn)行處理,結(jié)果發(fā)現(xiàn),純化的蛋白在透析及濃縮的過程中極易發(fā)生析出,同時凍融后極易發(fā)生降解。免疫印跡試驗(yàn)存在雜條帶,初步分析這可能是OmpA前體蛋白發(fā)生降解的原因,應(yīng)作進(jìn)一步研究。
參考文獻(xiàn):
[1]王永坤,田慧芳. 鵝蛋子瘟防治的研究[J]. 中國禽業(yè)導(dǎo)刊,2003,20(11):19-20.
[2]吳立芬. 母鵝卵黃性腹膜炎的發(fā)生及防治[J]. 現(xiàn)代農(nóng)業(yè)科技,2009(13):339.
[3]施馥壽. 控制卵黃性腹膜炎的嘗試[J]. 家禽,1985(2):11.
[4]王尚榮. 鵝卵黃性腹膜炎的診療報告[J]. 中國動物檢疫,2005,22(4):39-40.
[5]徐淑華. E.coli的Prlc基因產(chǎn)物對OmpA前體蛋白翻譯后轉(zhuǎn)位的功能[J]. 生物化學(xué)雜志,1991,6(7):651-656.
[6]Belaaouaj A,Kim K S,Shapiro S D. Degradation of outer membrane protein A in Escherichia coli killing by neutrophil elastase[J]. Science,2000,289(5482):1185-1188.
[7]Prasadarao N V,Blom A M,Villoutreix B O,et al. A novel interaction of outer membrane protein A with C4b binding protein mediates serum resistance of Escherichia coli K1[J]. Journal of Immunology,2002,169(11):6352-6360.
[8]Sukumaran S K,Shimada H,Prasadarao N V. Entry and intracellular replication of Escherichia coli K1 in macrophages require expression of outer membrane protein A[J]. Infection and Immunity,2003,71(10):5951-5961.
[9]呼 銳,佟春玉,崔玉東.大腸桿菌外膜蛋白A在原核表達(dá)載體中的克隆表達(dá)[J]. 黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)學(xué)報,2011,23(1):56-59.
[10]Chai T J,F(xiàn)oulds J.Purification of protein A,an outer membrane component missing in Escherichia coli K-12 ompA mutants[J]. Biochimica et Biophysica Acta,1977,493(1):210-215.
[11]Morona R,Klose M,Henning U. Escherichia coli K-12 outer membrane protein(OmpA) as a bacteriophage receptor:analysis of mutant genes expressing altered proteins[J]. Journal of Bacteriology,1984,159(2):570-578.
[12]Pautsch A,Schulz G E. Structure of the outer membrane protein A transmembrane domain[J]. Nature Structural Biology,1998,5(11):1013-1017.
[13]李曉霞,邱玉玉,王海榮. 腸致病性大腸桿菌外膜蛋白免疫保護(hù)性研究[J]. 中國免疫學(xué)雜志,2007,23(5):394-397.
[14]宋 舟,陳 偉,張立艷,等. 大腸桿菌外膜蛋白A研究進(jìn)展[J]. 中國畜牧獸醫(yī),2012,39(5):199-202.