王亞光,王鵬,陶貴周△,黃建華
Akt/GSK-3β/eNOS通路在藏紅花酸保護離體大鼠心肌缺血再灌注損傷中的作用
王亞光1,王鵬2,陶貴周1△,黃建華2
目的研究藏紅花酸(CRO)對離體大鼠心肌缺血再灌注損傷的保護作用,探討其與絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶(Akt)/糖原合成酶激酶(GSK)-3β/一氧化氮合酶(eNOS)信號通路的關(guān)系。方法SD大鼠40只,隨機數(shù)字表法均分為正常(N)組、缺血再灌注(IR)組及5、10、15 mg/L加藥(CRO1、CRO2、CRO3)組,比較再灌注30 min時各組心率(HR),冠脈流量(CF),左心室內(nèi)壓測定(LVDP、LV+dp/dtmax、LV-dp/dtmax)。灌流結(jié)束TTC心肌染色評估梗死范圍,分光光度法測定肌漿乳酸脫氫酶(LDH)和肌酸激酶(CK-MB);Western blot檢測各組心肌組織內(nèi)Akt、磷酸化的絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶(p-Akt)、GSK-3β、磷酸化的糖原合成酶激酶(p-GSK)-3β、eNOS、磷酸化的一氧化氮合酶(p-NOS)。結(jié)果IR組再灌注30 min時HR、CF、LVDP、LV+dp/dtmax、LV-dp/dtmax較N組及加藥組降低,心肌梗死面積較加藥組增大,LDH、CK-MB表達較N組及加藥組增加(均P<0.05),CRO3組再灌注指標較CRO1組升高,梗死面積降低,LDH、CK-MB表達減少(P<0.05)。IR組Akt、GSK-3b及eNOS較N組及加藥組的表達差異無統(tǒng)計學意義,但p-Akt、p-GSK-3β及p-NOS與N組及加藥組降低,且CRO3組較CRO1組增加(均P<0.05)。結(jié)論藏紅花酸能夠減輕大鼠心肌缺血再灌注損傷,其作用機制可能與激活Akt/GSK-3β/eNOS通路并影響其磷酸化水平有關(guān)。
體外循環(huán);再灌注損傷;蛋白激酶類;糖原合成酶激酶-3β;一氧化氮合酶;氧化磷酸化
目前,心肌缺血再灌注損傷(MIRI)成為阻礙缺血心肌從再灌注療法獲得最佳療效的主要難題[1]。藏紅花是多年生草本植物,可以調(diào)節(jié)纖維蛋白溶酶原激活劑及其抑制物之間的平衡,改善冠心病、心絞痛患者纖維蛋白的溶解功能,減少血栓形成[2]。王艷艷等[3]動物實驗證實,藏紅花酸(crocetin,CRO)預處理能夠上調(diào)凋亡抑制蛋白(Bcl)-2、下調(diào)促凋亡蛋白(Bax),從而對損傷的心肌細胞產(chǎn)生保護作用。但有關(guān)CRO在體外對心肌缺血再灌注的相關(guān)研究少見。本實驗旨在觀察CRO對大鼠絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶(Akt)、糖原合成酶激酶(GSK)-3β、一氧化氮合酶(eNOS)及其磷酸化形式表達的影響,探討其對再灌注心肌的保護作用,以期為CRO改善MIRI的研究提供參考。
1.1 一般資料健康清潔級SD大鼠40只,體質(zhì)量250~300 g,12~14周齡,雌雄不限,購于遼寧醫(yī)學院實驗動物中心。灌流裝置購于美國RADNOTI公司,MP150多導生理記錄分析系統(tǒng)購于美國BIAPOC公司,Krebs-Henseleit(K-H)試劑購于sigma公司,左室壓力測定使用泰盟BL-420S生物功能實驗系統(tǒng),TTC試劑購于北京科博賽而科技有限公司,乳酸脫氫酶(LDH)和肌酸激酶(CK-MB)試劑盒購于南京建成生物有限公司,CRO購自濟南浩化實業(yè)有限責任公司(批號為20121123)。
1.2 方法
1.2.1 實驗分組與模型建立40只大鼠隨機數(shù)字表法分為空白對照(N)組、缺血再灌注(IR)組、5 mg/L加藥(CRO1)組、10 mg/L加藥(CRO2)組、15 mg/L加藥(CRO3)組,每組均為8只。大鼠干預前均自由進食,自由飲水。所有大鼠20%烏拉坦(5 μL/g)麻醉,1 000 U肝素靜脈注射,迅速開胸,取出心臟,迅速移至Langendorff灌流裝置,主動脈逆行插管,用KH液80 cm H2O恒壓(1 cm H2O=0.098 kPa),Krebs-Henseleit(K-H)液成分NaCl 118 mmol/L,KCl 4.74 mmol/L,KH2PO41.19 mmol/L,MgSO4·7H2O 1.19 mmol/L,CaCl21.5 mmol/L,NaHCO325 mmol/L,葡萄糖10 mmol/L。調(diào)pH值為7.4。以體積分數(shù)為950 mL/L O2+50 mL/L CO2,水浴維持缺血溫度37℃。心臟掛至灌流裝置后,插入球囊,另一端連接換能器[4]。非循環(huán)模式下預灌流20 min后,IR組停灌30 min取K-H液再灌流45 min;CRO1組、CRO2組和CRO3組于再灌注時,灌流液中分別加入CRO 5、10及15 mg/L,余同IR組;對照組連續(xù)灌流95 min。凡由大鼠自身心臟結(jié)構(gòu)決定心率(HR)<200次/min或冠脈流量<8 mL/min,予以排除[4]。再灌注30 min時測冠脈流量(CF)>5 mL/min、HR>170次/min為造模成功。
1.2.2 灌流期間觀察指標在灌流穩(wěn)定后缺血再灌流30 min時測各組流出K-H液冠脈流量(mL/min)、MP150測HR、BL-420S生物功能實驗系統(tǒng)測左心室內(nèi)壓(LVDP)、等容收縮期左心室內(nèi)壓最大變化率(LV+dp/dtmax)及等容舒張期左心室內(nèi)壓最大變化速率(LV-dp/dtmax)。
1.2.3 TTC染色及酶譜測定在95 min灌注結(jié)束時取各組心臟于-20℃凍存1 h,N組不參與染色,由心尖至心底部橫向均勻切片,1%2,3,5-氯化三苯基四氮唑(TTC)37℃染色5 min,后于10%福爾馬林固定10 min,數(shù)碼照相機拍照,蒼白色為梗死區(qū)。采用圖像分析儀Image pro plus 7.0軟件處理得面積百分比。另取心尖組織0.5 g,制成10%心肌均漿,分光光度法分別在450 nm和340 nm處測定LDH、CK-MB含量。
1.2.4 Western blot取各組左室前壁心肌組織,提取蛋白,進行SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳。封閉液封閉,抗-Akt單克隆抗體(1∶1 500)、抗p-Akt單克隆抗體(1∶1 000)、抗-GSK-3β單克隆抗體(1∶1 000)、抗p-GSK-3β單克隆抗體(1∶1 000)、抗eNOS單克隆抗體(1∶1 000)及抗p-eNOS單克隆抗體(1∶1 000),以上抗體均為Cell Signaling公司產(chǎn)品,辣根過氧化酶標記的鼠抗兔為二抗,TBST洗膜后成像,Akt、GSK-3β、eNOS的水平以Akt/β-actin、p-Akt/β-actin、GSK-3β/β-ac?tin、p-GSK-3β/β-actin、eNOS/β-actin、p-eNOS/β-actin表示,用圖像分析儀Image pro plus 7.0軟件凝膠圖像分析系統(tǒng)分析灰度值。
1.3 統(tǒng)計學方法采用SPSS 17.0軟件統(tǒng)計分析。符合正態(tài)分布的計量資料以表示,多組間比較采用單因素方差分析,組間多重比較采用LSD-t檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 CRO對各組中HR、CF、LVDP、LV+dp/dtmax、LV-dp/dtmax的影響N組、CRO1、CRO2及CRO3組CF、HR、LVDP、LV+dp/dtmax、LV-dp/dtmax均高于IR組(P<0.05)。CRO3組各項指標較CRO1、CRO2組升高(P<0.05),CRO2組、CRO1組差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05),見表1。
Tab.1Comparison of CF,HR and LVDP during the period of ischemia/reperfusion between five groups表1 各組灌流期間CF、HR及LVDP等比較(n=8,)
Tab.1Comparison of CF,HR and LVDP during the period of ischemia/reperfusion between five groups表1 各組灌流期間CF、HR及LVDP等比較(n=8,)
**P<0.01;a與IR組比較,b與CRO1組比較,c與CRO2組比較,均P<0.05;1 mmHg=0.133 kPa
組別N組I R組C R O1組C R O2組C R O3組F C F(m L / m i n)9 . 9 ± 0 . 6 a 5 . 2 ± 0 . 5 6 . 3 ± 0 . 2 a 6 . 7 ± 0 . 5 a 7 . 3 ± 0 . 2 a b c 2 5 . 7 6 8 * * H R(次/ m i n)2 6 2 ± 4 a 1 8 1 ± 6 1 9 6 ± 7 a 2 1 0 ± 6 a 2 2 1 ± 6 a b c 2 1 . 4 3 2 * * L V D P(m m H g)7 1 . 8 ± 9 . 9 a 3 3 . 8 ± 1 . 5 4 4 . 2 ± 3 . 0 a 4 5 . 6 ± 2 . 5 a 5 2 . 1 ± 5 . 6 a b c 1 8 . 5 6 4 * * L V + d P / d t m a x(m m H g / s)1 4 8 2 ± 7 6 a 7 1 6 ± 5 9 7 9 2 ± 3 6 a 8 1 2 ± 4 8 a 8 9 8 ± 7 8 a b c 3 3 . 7 4 6 * * L V -d P / d t m a x(m m H g / s)1 1 3 7 ± 4 8 a 5 8 2 ± 5 2 6 9 0 ± 8 3 a 7 2 3 ± 6 8 a 7 7 5 ± 7 9 a b c 1 7 . 8 5 2 * *
2.2 TTC染色梗死面積比較IR組、CRO1組、CRO2組及CRO3組的梗死面積分別為(48.7±9.8)%、(32.7± 4.2)%、(29.1±2.7)%、(21.7±4.5)%(F=34.264,P<0.01),其中IR組較CRO1組、CRO2組及CRO3組增
大,CRO3組較CRO1組減?。ň鵓<0.05),見圖1。
Fig.1TTC staining showing infarction area in different groups圖1 各組梗死心肌TTC染色比較
2.3 各組LDH、CK-MB表達水平比較IR組較N組、CRO1、CRO2及CRO3組的LDH、CK-MB含量升高(P<0.01);CRO3組LDH、CK-MB含量較CRO1組降低(P<0.05),CRO3組LDH含量較CRO2組降低(P<0.05),見表2。
Tab.2The expressions of LDH and CK-MB in myocardial homogenate表2 心肌均漿LDH、CK-MB的檢測結(jié)果(n=8,)
Tab.2The expressions of LDH and CK-MB in myocardial homogenate表2 心肌均漿LDH、CK-MB的檢測結(jié)果(n=8,)
**P<0.01;a與IR組比較,b與CRO1組比較,c與CRO2組比較,均P<0.05
C K -M B(U · L -1)2 1 9 ± 1 2 a 6 2 1 ± 3 6 5 2 1 ± 4 5 a 3 5 8 ± 5 3 a b 3 3 3 ± 1 9 a b 2 2 . 5 0 8 * *組別N組I R組C R O 1組C R O 2組C R O 3組F L D H(U · g -1)1 4 9 6 . 2 ± 2 0 1 . 5 a 2 2 5 9 . 6 ± 1 7 8 . 3 2 0 3 0 . 8 ± 4 5 6 . 6 a 1 7 5 7 . 8 ± 4 7 6 . 2 a b 1 6 1 3 . 9 ± 3 5 6 . 4 a b c 1 7 . 3 5 2 * *
2.4 Western blot檢測結(jié)果IR組與N組、CRO1、CRO2及CRO3組的Akt、GSK-3β、eNOS活性差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05);IR組較N組、CRO1、CRO2及CRO3組的p-Akt、p-GSK-3β、p-eNOS表達降低(P<0.05),CRO3組p-Akt、p-GSK-3β、p-eNOS表達較CRO1組增加(P<0.05),見圖2~4、表3。
Fig.2Comparison of Akt and p-Akt activity between five groups圖2 Akt與p-Akt在不同組內(nèi)活性的比較
Fig.3Comparison of GSK-3β and p-GSK-3β activity between five groups圖3 GSK-3β與p-GSK-3β在不同組內(nèi)活性的比較
Fig.4Comparison of eNOS and p-eNOS activity between five groups圖4 eNOS與p-eNOS在不同組內(nèi)活性的比較
Tab.3Comparison of protein expression between five groups表3 各組蛋白表達結(jié)果的比較(n=8,)
Tab.3Comparison of protein expression between five groups表3 各組蛋白表達結(jié)果的比較(n=8,)
**P<0.01;a與IR組比較,b與CRO1組比較,P<0.05
組別N組I R組C R O 1組C R O 2組C R O 3組F A k t 2 . 3 0 ± 0 . 1 2 2 . 2 9 ± 0 . 2 1 2 . 3 1 ± 0 . 1 7 2 . 3 4 ± 0 . 2 0 2 . 2 7 ± 0 . 1 8 0 . 9 2 1 p -A k t 1 . 0 3 ± 0 . 2 6 a 0 . 6 7 ± 0 . 1 2 1 . 0 4 ± 0 . 1 8 a 1 . 1 1 ± 0 . 1 6 a 1 . 1 9 ± 0 . 1 3 a b 1 5 . 3 7 2 * * G S K -3 β 1 . 9 5 ± 0 . 2 1 1 . 9 4 ± 0 . 2 3 1 . 9 5 ± 0 . 2 2 1 . 9 7 ± 0 . 2 1 1 . 9 6 ± 0 . 2 6 0 . 7 6 9組別N組I R組C R O 1組C R O 2組C R O 3組F p -G S K -3 β 0 . 9 2 ± 0 . 1 9 a 0 . 4 8 ± 0 . 1 6 0 . 9 6 ± 0 . 1 8 a 1 . 0 6 ± 0 . 2 3 a 1 . 2 1 ± 0 . 2 1 a b 1 3 . 2 6 7**e N O S 3 . 5 9 ± 0 . 2 3 3 . 5 7 ± 0 . 3 3 3 . 6 0 ± 0 . 2 8 3 . 6 1 ± 0 . 3 1 3 . 5 4 ± 0 . 2 8 0 . 8 2 1 p -e N O S 1 . 8 9 ± 0 . 2 6 a 0 . 8 7 ± 0 . 1 8 1 . 9 2 ± 0 . 1 7 a 2 . 1 3 ± 0 . 2 1 a 2 . 5 6 ± 0 . 2 8 a b 1 7 . 3 2 1**
藏紅花是一種傳統(tǒng)的中藥材,CRO是其主要的活性成分之一。孫經(jīng)武等[5]證實,CRO預處理在心肌缺血再灌注損傷中可以通過負性調(diào)節(jié)腫瘤壞死因子(TNF)-α,正性調(diào)節(jié)白細胞介素(IL)-10來減輕炎癥反應并抑制心肌細胞的凋亡,發(fā)揮心肌保護作用。李玲等[6]研究證實,通過CRO對大鼠的預處理能夠減輕缺血再灌注對心肌細胞的損傷,其作用機制與缺氧誘導因子-1α、血管內(nèi)皮生長因子的表達有關(guān)。
本研究采用體外循環(huán)灌流裝置,去除體液、神經(jīng)及心臟前后負荷對再灌注的影響。結(jié)果顯示,IR組與N組、各加藥組比較,再灌流期間CF、HR、LVDP、LV+dp/dtmax、LV-dp/dtmax降低,TTC染色梗死面積較各加藥組增大,心肌勻漿LDH、CK-MB的表達較N組、各加藥組增加,表明缺血再灌注可導致心肌受損,也表明造模成功,提示CRO可以減輕離體大鼠心肌梗死模型的MIRI。再灌注期間CRO3組各項指標較CRO1、CRO2組升高,而CRO2組、CRO1組差異無統(tǒng)計學意義,CRO3組較CRO1組梗死面積及LDH、CK-MB的表達降低,表明高劑量的CRO發(fā)揮作用更明顯,而抑制心肌細胞凋亡可能有助于CRO對心臟缺血再灌注保護作用。
細胞凋亡是組織損傷繼發(fā)于缺血再灌注損傷的重要機制,心肌組織在缺血后再灌注的開始時,多種心肌保護手段均能夠主動募集信號轉(zhuǎn)導通路,其中Akt/GSK-3β/eNOS信號轉(zhuǎn)導通路是最重要的途徑之一,具有顯著的抗心肌細胞凋亡、保護再灌注心肌的
作用[7]。葉強等[8]通過觀察辛伐他汀對心肌梗死后心肌細胞凋亡的影響顯示,辛伐他汀可改善心肌梗死后心功能,認為其可能是通過激活Akt/GSK-3β通路,抑制心肌細胞凋亡實現(xiàn)。劉馨駿等[9]研究表明,紅景天苷可增加缺血再灌注心肌中Akt/GSK-3β的蛋白表達及磷酸化,增強對缺血再灌注損傷心肌保護作用。AKT激活后形成p-Akt,可進一步作用于相關(guān)底物發(fā)揮抗凋亡作用[10]。眾多具有心肌保護作用的激酶如PKA、PKB/Akt、PKC都匯合于GSK-3β通路,導致GSK-3β磷酸化失活,最終通過抑制線粒體死亡來減輕細胞凋亡[11]。eNOS可產(chǎn)生NO,通過舒張血管、減輕炎癥細胞及減少血小板聚集、浸潤,改善冠脈血供,對心肌內(nèi)皮細胞起保護作用[12]。eNOS的翻譯后修飾有著復雜的模式,而磷酸化和去磷酸化網(wǎng)絡是調(diào)節(jié)eNOS活性的主要的翻譯后修飾[13]。
本研究結(jié)果顯示IR組與N組及各加藥組比,Akt、GSK-3β、eNOS蛋白總量未有明顯變化,但其p-Akt、p-GSK-3β、p-eNOS較N組及各加藥組表達量減少,CRO3組p-Akt、p-GSK-3β、p-eNOS表達較CRO1組增加,表明CRO保護心肌缺血再灌注損傷的作用機制可能與激活Akt/GSK-3β/eNOS通路有關(guān),但不影響Akt、GSK-3β、eNOS總量的表達,而通過影響其磷酸化水平來發(fā)揮作用,與葉強等[8]研究相一致,且高劑量的CRO發(fā)揮作用更明顯。因此,抑制細胞凋亡可能是CRO保護心肌、對抗缺血再灌注損傷的機制之一,證實Akt/GSK-3β/eNOS信號轉(zhuǎn)導通路在MIRI保護作用中發(fā)揮重要作用,其活性調(diào)控呈現(xiàn)出一個復雜而精密的調(diào)控網(wǎng)絡。目前,由于不同氨基酸殘基的磷酸化對其活性調(diào)控的機制亦各異,中藥及其有效活性成分在這些方面的深入研究尚較少。
[1]Xu M.Research on main mechanisms of MIRI and related drug ther?apy[J].Practical Pharmacy and Clinical Remedies,2014,17(8):1052-1055.[徐盟.心肌缺血再灌注損傷的主要機制與相關(guān)藥物治療的研究進展[J].實用藥物與臨床,2014,17(8):1052-1055].
[2]Zhang N,Li LS.Research progress on pharmacological effects of Crocus sativus and its active ingredients[J].Drug Evaluation Re?search,2013,36(5):394-396.[張娜,李林森.藏紅花藥理作用研究進展[J].藥物評價研究,2013,36(5):394-396].doi:10.7501/j. issn.1674-6376.2013.05.018.
[3]Wang YY,Sun JW,F(xiàn)an WN,et al.Effect of crocet in pretreatment on the expression of myocardial ischemia related proteins Bcl-2 and Bax in rats[J].Journal of Clinical Cardiology,2015,31(1):93-96.[王艷艷,孫經(jīng)武,樊維娜,等.CRO預處理對心肌缺血大鼠凋亡相關(guān)蛋白與Bcl-2與Bax表達的影響[J].臨床心血管病雜志,2015,31(1):93-96].doi:10.13201/j.issn.1001-1439.2015.01.025.
[4]Becker M,Goetzenich A,Roehl AB,et al.Myocardial effects of lo?cal shock wave therapy in a Langendorff model[J].Ultrasonics,2014,54(1):131-136.doi:10.1016/j.ultras.2013.07.005.
[5]Sun JW,Wang YY,F(xiàn)ang C.Effect of CRO pretreatment on inflam?matory reaction and ap optosis of myocardial ischemiareperfusionin?jury in experimentalRats[J].Chinese Circulation Journal,2015,30(2):172-175.[孫經(jīng)武,王艷艷,房燦.CRO預處理對大鼠心肌缺血再灌注損傷中炎癥反應和細胞凋亡的影響及其機制[J].中國循環(huán)雜志,2015,30(2):172-175].doi:10.3969/j.issn.1000-3614.2015.02.019.
[6]Li L,Wang B.Saffron on myocardial ischemia reperfusion in rats af?ter myocardial tissue the expression of hypoxia influenecd factor 1α,and vascular endothelial growth factor[J].Chinese Journal of Gerontology,2013,11(33):5656-5657.[李玲,王斌.藏紅花對大鼠心肌缺血再灌注后心肌組織中缺氧誘導因子-1α、血管內(nèi)皮生長因子表達的影響[J].中國老年醫(yī)學雜志,2013,11(33):5656-5657].doi:10.3969/j.issn.1005-9202.2013.22.077.
[7]Bharti S,Sinqh R,Chauhan SS,et al.Phosphorylation of Akt/ GSK-3β/eNOS amplifies 5-HT2B receptor blockade mediated anti-hypertrophic effect in rats.[J].FEBS Lett,2012,586(2):180-185.doi:10.1016/j.febslet.2011.12.015.
[8]Ye Q,Chen HL,Liu YC.imvastatin through Akt/GSK3 beta path?ways inhibiting myocardial apoptosis after myocardial infarction[J]. Chinese Pharmacological Bulletin,2011,27(12):1656-1660.[葉強,陳良海,劉應才.辛伐他汀通過Akt/GSK3β通路抑制心肌梗死后心肌細胞凋亡[J].中國藥理學通報,2011,27(12):1656-1660].doi:10.3969/j.issn.1001-1978.2011.12.008.
[9]Liu XJ,Gong JB,Pan T.Effect of salidroside on Akt/GSK-3β/eNOS of myocardium with ischemia-reperfusion injury in rats[J].Med Postgra,2015,28(2):146-148.[劉馨駿,宮劍濱,潘濤.紅景天苷對大鼠缺血再灌注損傷心肌Akt/GSK-3β作用的研究[J].醫(yī)學研究生學報,2015,28(2):146-148].
[10]Song ZF,Chen DY,Du B,et al.Poly(ADP-ribose)polymerase inhibitor reduces heart ischaemia/reperfusion injury via inflammation and Akt signaling in rats[J].Chin Med J(Engl),2013,126(10):1913-1917.
[11]Chen D,Zhang LT,Li JJ.Glycogen synthase kinase-3β in myo?cardial protection[J].Journal of Clinical Cardiology(China),2014,30(9):825-828.[陳丹,張麗婷,李建軍.糖原合成酶激酶-3β與心肌保護研究進展[J].臨床心血管病雜志,2014,30(9):825-828]. doi:10.13201/j.issn.1001-1439.2014.109.025.
[12]Ying Z,Xie X,Chen M,et al.Alpha-lipoic acid activates eNOS through activation of PI3-kinase/Akt signaling pathway[J].Vascul Pharmacol,2015,64(1):28-35.doi:10.1016/j.vph.2014.11.004.
[13]Fleming I.Molecular mechanisms underlying the activation of eNOS[J]. Pflugers Arch,2010,459(6):793-806.doi:10.1007/s00424-009-0767-7.
(2015-03-13收稿 2015-06-25修回)
(本文編輯 陸榮展)
The effect of crocetin on Akt/GSK-3β/eNOS signaling pathway in myocardial ischemiareperfusion injury of isolated rat hearts
WANG Yaguang1,WANG Peng2,TAO Guizhou1△,HUANG Jianhua2
1 Department of Cardiology,the First Affiliated Hospital of Liaoning Medical College,Jinzhou 121001,China;2 Key Laboratory of Tissue Engineering,The First Affiliated Hospital of Liaoning Medical College,Jinzhou△
ObjectiveTo study the protective effects of crocetin on myocardial ischemia-reperfusion injury,and their correlation with the signaling pathway of serine/threonine protein kinase(Akt)/glycogen synthase kinase(GSK)-3β/nitric ox?ide synthase(eNOS).MethodsForty healthy SD rats were divided into normal group(N),ischemia reperfusion group(IR)and 5,10 and 15 mg/L of crocetin groups(CRO1,CRO2and CRO3)by random number table method.The values of heart rate(HR),coronary flow(CF)and left ventricular pressure measurement(LVDP,LV+dp/dtmax,LV-dp/dtmax)30 minutes after reperfusion were compared between five groups.TTC staining was used to detect the infarct volume.Spectrophotometric method was used to determinate the expression of lactate dehydrogenase(LDH)and creatine kinase(CK-MB).The levels of Akt,the phosphorylation of Akt(p-Akt),GSK-3β,phosphorylation of GSK-3β(p-GSK-3β),eNOS and phosphorylation of eNOS(p-NOS)were detected by Western blot assay.ResultsThe HR,CF,LVDP,LV+dp/dtmax and LV-dp/dtmax were significantly lower 30 min after reperfusion in IR group than those of N group and crocetin groups(P<0.05).The myocardial infarction area was bigger in IR group than that of crocetin groups.The expression levels of LDH and CK-MB were signifi?cantly higher in IR group than those of N group and crocetin groups(P<0.05).The reperfusion index was higher in CRO3group than that of CRO1group.The infarction area,LDH and CK-MB expressions were significantly decreased in CRO3group than those of CRO1group(P<0.05).There were no significant differences in expressions of Akt,GSK-3β and eNOS between IR group,N group and crocetin groups.But p-Akt,p-GSK-3β and p-NOS were significantly decreased in IR group than those of N group and crocetin groups.The p-Akt,p-GSK-3β and p-NOS were significantly increased in CRO3group than those of CRO1group(P<0.05)。ConclusionCrocetin has protective effects on myocrdial ischemia reperfusion injury in rats,which may be involved in the enhancing the phosphorylation of signalling pathway of Akt/GSK-3β/eNOS.
extracorporeal circulation;reperfusion injury;protein kinases;glycogen synthase kinase 3β;nitric oxide synthase;oxidative phosphorylation
R965.2
A
10.11958/j.issn.0253-9896.2015.11.021
1錦州,遼寧醫(yī)學院附屬第一醫(yī)院心內(nèi)科(郵編121001),2院組織工程重點實驗室
王亞光(1990),男,碩士研究生,主要從事冠心病的診斷與治療研究
△通訊作者E-mail:tgz56789@163.com