曹 軍,羅 寧,李建璜△
1.中南大學(xué)湘雅醫(yī)學(xué)院附屬腫瘤醫(yī)院 胸部?jī)?nèi)二科(長(zhǎng)沙 410013);2.中南大學(xué)湘雅醫(yī)院 腫瘤科(長(zhǎng)沙 410008)
惡性淋巴瘤是危害人類健康的重要疾病之一,其主要治療方法為化學(xué)藥物治療和放射治療,但上述方法對(duì)于進(jìn)一步提高其生存率作用有限。隨著基因工程技術(shù)的飛速發(fā)展,基因治療已成為淋巴瘤治療研究的熱點(diǎn),并取得了較多的成果,但目的基因表達(dá)靶向性差及表達(dá)效率低是限制其臨床應(yīng)用的關(guān)鍵問(wèn)題。本課題組成員前期研究已成功構(gòu)建出能在淋巴瘤細(xì)胞中高效特異性表達(dá)目的基因的S-VISA載體[1],很好地解決了以上問(wèn)題。因而,如何選擇有效的治療基因成為淋巴瘤基因治療的關(guān)鍵。
細(xì)胞凋亡通路障礙是淋巴瘤發(fā)生發(fā)展過(guò)程中最重要的分子事件之一,因此,誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞凋亡成為淋巴瘤基因治療的思路之一。Bcl-2家族包括凋亡抑制蛋白Bcl-2、Bcl-XL、Bcl-w、Mcl-1等,促凋亡蛋白質(zhì)如 Bik、Bad、Bax等[2]。Bik(Bcl-2interacting killer)作為Bcl-2家族中一種僅含BH3結(jié)構(gòu)域的促凋亡蛋白質(zhì),能結(jié)合的Bcl-2家族凋亡抑制蛋白最多,且與 Bcl-2及 Mcl-1的結(jié)合力最強(qiáng)[3]。既往研究[4-6]表明,將Bik的第33位蘇氨酸殘基和第35位絲氨酸殘基替換為門冬氨酸,使其成為突變型Bik(BikDD),BikDD在肺癌、乳腺癌及前列腺癌等惡性腫瘤中促進(jìn)細(xì)胞凋亡和抑制細(xì)胞生長(zhǎng)的能力比野生型Bik更強(qiáng)。
本實(shí)驗(yàn)擬構(gòu)建含BikDD、Survivin啟動(dòng)子及VISA系統(tǒng)的表達(dá)質(zhì)粒S-VISA-BikDD,將其轉(zhuǎn)染淋巴瘤細(xì)胞株,研究其在淋巴瘤細(xì)胞中的作用。
1.1.1 質(zhì)粒 pGL3-Survivin質(zhì)粒由本科室唐友紅博士惠贈(zèng)[7],pCMVgDWPRE質(zhì)粒由意大利帕爾馬大 學(xué) Dr Gaetano Donofrio 惠 贈(zèng)[8],TSTA-NSN質(zhì)粒由美國(guó)加州大學(xué)洛杉磯分校醫(yī)學(xué)院Dr Mike Carey惠 贈(zèng)[9],pGL3-CMV、pGL3-Basic質(zhì) 粒 購(gòu) 自Promega公司。
1.1.2 細(xì)胞 人淋巴瘤 Ramos、U937、Raji細(xì)胞株購(gòu)自上海麥莎生物科技有限公司,人肝細(xì)胞株Chang Liver購(gòu)自中科院上海生命科學(xué)院細(xì)胞所。
1.1.3 試劑 實(shí)驗(yàn)所用內(nèi)切酶均為NEB產(chǎn)品,連接酶(寶靈曼B.M 公司),DNA連接酶、luciferase assay system試劑盒(美國(guó)Promega公司)。新生小牛血清(杭州四季青生物公司),DMEM、RPMI 1640培養(yǎng)基(美國(guó)Gibco公司),質(zhì)粒小量提取試劑盒(美國(guó)Omega公司)、膠回收試劑盒(TaKaRa公司),基因定點(diǎn)突變?cè)噭┖校ū淘铺焐锛夹g(shù)研究所),鼠抗人Bik單克隆抗體(臺(tái)灣Abnova公司)。
1.2.1 pGL3-Bik載體的構(gòu)建 根據(jù) GenBank的Bik基因序列設(shè)計(jì)引物,上游引物序列為:5'CGAAGATCTATGTCTGAAGTAAGACC 3'(包含起始密碼子,并在5'端引入BgiⅡ酶切位點(diǎn));下游引物序列為:5'CCAAGCTTTCACTTGAGCAGC AGGT 3'(在5'端引入 HindⅢ酶切位點(diǎn)),引物由上海英駿生物技術(shù)有限公司合成。Trizol法提取人類腸基因組RNA,以此為模板,PCR擴(kuò)增Bik基因,反應(yīng)條件:94℃預(yù)變性4min,94℃30s,53℃30 s,72℃30s,30個(gè)循環(huán),72℃延伸8min。PCR產(chǎn)物用1.0% 瓊脂糖電泳檢測(cè),觀察結(jié)果。用BgiⅡ/HindⅢ對(duì)PCR產(chǎn)物進(jìn)行雙酶切后純化回收,連入同樣用BgiⅡ/HindⅢ雙酶切的pGL3-Basic載體,構(gòu)建成pGL3-Bik載體。利用PCR及 HindⅢ/BgiⅡ雙酶切鑒定后送上海英駿生物技術(shù)有限公司純化測(cè)序。
1.2.2 pGL3-BikDD 載體的構(gòu)建 根據(jù) GenBank的Bik基因序列,為實(shí)現(xiàn)將Bik基因編碼蛋白第33位蘇氨酸殘基和第35位絲氨酸殘基替換為門冬氨酸,對(duì)其編碼基因進(jìn)行定點(diǎn)突變,分別將第33位蘇氨酸殘基編碼基因ACT突變?yōu)镚AC,第35位絲氨酸殘基編碼基因TCT突變?yōu)镚AT。引物設(shè)計(jì)如下:上游引物5'GTTCTTGGCATGGACGAC GATGAAGAGGACC3',下游 引物 5'GGTCCTCT TCATCGTCGTCCATGCCAAGAAC 3'。以 pGL3-Bik質(zhì)粒為模板,對(duì)Bik基因編碼序列進(jìn)行PCR擴(kuò)增,反應(yīng)條件:95℃預(yù)變性1min,95℃40s,60℃60s,68℃5min,18個(gè)循環(huán),72℃延伸8min。擴(kuò)增產(chǎn)物轉(zhuǎn)化感受態(tài)大腸桿菌DH5α,氨卞抗性篩選后提取質(zhì)粒,KpnI/NheI酶切鑒定,進(jìn)一步測(cè)序證實(shí)pGL3-BikDD構(gòu)建成功。
1.2.3 pGL3-CMV-BikDD載體的構(gòu)建 BgiⅡ和HindⅢ雙酶切pGL3-BikDD和pGL3-CMV載體,回收約500bp的BikDD片段和約5.4kb的pGL3-CMV載體片段。用T4DNA連接酶連接,構(gòu)建成pGL3-CMV-BikDD載體。利用Bik引物進(jìn)行PCR篩選及雙酶切(BgiⅡ/HindⅢ)鑒定。
1.2.4 S-VISA-BikDD 載體的構(gòu)建 1)G5E4TBikDD-WPRE載體的構(gòu)建:BgiⅡ和HindⅢ雙酶切pGL3-BikDD和 G5E4T-WPRE載體,回收約500 bp的BikDD片段和約5.6kb的G5E4T-WPRE載體片段。用T4DNA連接酶連接,構(gòu)建成G5E4TBikDD-WPRE過(guò)渡載體。利用Bik引物進(jìn)行PCR篩選和雙酶切(BgiⅡ/HindⅢ)鑒定。2)S-VISABikDD載體的構(gòu)建:KpnI和SalI雙酶切S-TSTA和G5E4T-BikDD-WPRE載體,回收約4.8kb的STSTA片段(保留Survivin啟動(dòng)子、除G5E4T外的TSTA系統(tǒng)和部分載體序列)和約3.3kb的G5E4T-BikDD-WPRE片段(保留 G5E4T、BikDD、熒光素酶編碼基因、WPRE和poly A序列)。用T4 DNA連接酶連接,構(gòu)建成S-VISA-BikDD載體,分別利用G5E4T和Bik引物進(jìn)行PCR篩選及雙酶切(KpnI/SalI)鑒定。
1.2.5 質(zhì)粒轉(zhuǎn)染 將培養(yǎng)至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的Ramos、Raji、U937和chang liver細(xì)胞與S-VISA/CMV-BikDD/S-VISA-BikDD/pGL3-basic 質(zhì) 粒 分別溶于無(wú)血清RPMI 1640的電穿孔介質(zhì)中,將細(xì)胞懸液移入石英電轉(zhuǎn)杯中,電轉(zhuǎn)條件:電壓270V,穿孔時(shí)間14.4ms。電轉(zhuǎn)完成后立即將細(xì)胞懸液轉(zhuǎn)移至25cm2培養(yǎng)瓶中,加入含10%胎牛血清的RPMI 1640培養(yǎng)液,置于37℃5%CO2培養(yǎng)箱中,48h后終止培養(yǎng),收獲細(xì)胞。
1.2.6 Western blot檢測(cè)Bik蛋白表達(dá) 分別收集質(zhì)粒轉(zhuǎn)染前及轉(zhuǎn)染48h后各組細(xì)胞,加入RIPA蛋白裂解液裂解細(xì)胞抽提蛋白,BCA法測(cè)定蛋白濃度,蛋白變性后取60μg總蛋白進(jìn)行10%SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳分離,蛋白通過(guò)濕轉(zhuǎn)法轉(zhuǎn)移至硝酸纖維膜上。一抗(鼠抗人Bik單克隆抗體)4℃孵育過(guò)夜,TBST洗膜3次,二抗為辣根過(guò)氧化物酶(horseradish peroxidase,HRP)標(biāo)記的羊抗鼠抗體,室溫孵育1h,TBST洗膜3次,化學(xué)發(fā)光試劑ECL(enhanced chemiluminescence)發(fā)光、顯影和定影。
1.2.7 流式細(xì)胞儀檢測(cè)Raji細(xì)胞凋亡 離心、收集轉(zhuǎn)染S-VISA、CMV-BikDD、S-VISA-BikDD質(zhì)粒48h后的Raji細(xì)胞1×106個(gè)/mL,加入PI室溫避光孵育40min,流式細(xì)胞儀分析檢測(cè)細(xì)胞凋亡率。
1.2.8 MTT 實(shí)驗(yàn)取轉(zhuǎn)染S-VISA、CMVBikDD、S-VISA-BikDD質(zhì)粒48h后的細(xì)胞,各孔加入 MTT溶液(5mg/mL)20μL,放入培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng)4h后棄上清液,再加入DMSO 150μL/孔,充分振蕩15min溶解結(jié)晶,用酶標(biāo)儀在570nm波長(zhǎng)處測(cè)定其吸光度(OD)值。以轉(zhuǎn)染pGL3-basic的細(xì)胞為對(duì)照組,抑制率=(對(duì)照組OD值-質(zhì)粒轉(zhuǎn)染組OD值)/對(duì)照組OD值×100%。
采用SPSS 19.0統(tǒng)計(jì)軟件對(duì)各組數(shù)據(jù)進(jìn)行分析比較。本實(shí)驗(yàn)中所有數(shù)據(jù)均采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示。多組間比較采用One-Way ANOVA檢驗(yàn),多個(gè)樣本均數(shù)間兩兩比較采用S-N-Kq檢驗(yàn)法,相關(guān)分析采用直相關(guān)計(jì)算Pearson相關(guān)系數(shù),P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
以人類腸基因組RNA為模版,PCR擴(kuò)增Bik基因后連入pGL3-basic載體,構(gòu)建成pGL3-Bik載體。利用定點(diǎn)突變技術(shù)將第33位蘇氨酸殘基編碼基因ACT突變?yōu)镚AC,第35位絲氨酸殘基編碼基因TCT突變?yōu)镚AT,即分別將第97~99及103~105位的堿基突變,PCR酶切鑒定結(jié)果(圖1)。測(cè)序結(jié)果與GeneBank上公布的Bik基因序列一致。
圖1 pGL3-BikDD載體酶切鑒定圖
重組載體CMV-BikDD的酶切鑒定。BgiⅡ和HindⅢ雙酶切pGL3-BikDD和pGL3-CMV載體,回收BikDD片段和pGL3-CMV載體片段。用T4 DNA連接酶連接,構(gòu)建成 pGL3-CMV-BikDD 載體。雙酶切鑒定結(jié)果(圖2)。
圖2 CMV-BikDD載體酶切鑒定
重組載體S-VISA-BikDD的構(gòu)建及酶切鑒定。BgiⅡ和 HindⅢ雙酶切pGL3-BikDD和 G5E4TWPRE載體,回收的BikDD片段和G5E4T-WPRE片段用T4DNA連接酶連接,構(gòu)建成G5E4TBikDD-WPRE過(guò)渡載體。再經(jīng)KpnI和SalI雙酶切S-TSTA和G5E4T-BikDD-WPRE載體后,回收到約4.8kb的 S-TSTA片段和約3.3kb 的G5E4T-BikDD-WPRE片段,進(jìn)一步用T4DNA連接酶連接,PCR雙酶切鑒定結(jié)果(圖3)。
圖3 S-VISA-BikDD載體酶切鑒定
收集S-VISA-BikDD轉(zhuǎn)染前、后的淋巴瘤細(xì)胞Raji、Ramos和 U937和肝細(xì)胞chang liver作Western blot檢測(cè)。轉(zhuǎn)染前的淋巴瘤細(xì)胞中Bik蛋白表達(dá)均低于chang liver細(xì)胞,轉(zhuǎn)染后的淋巴瘤細(xì)胞中Bik蛋白表達(dá)均較前有上升,但仍低于chang liver細(xì)胞的Bik蛋白表達(dá)水平,而chang liver細(xì)胞在BikDD處理前后無(wú)明顯變化(圖4)。
圖4 S-VISA-BikDD載體轉(zhuǎn)染前后淋巴瘤細(xì)胞和肝細(xì)胞的Bik表達(dá)水平
MTT實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示:轉(zhuǎn)染S-VISA-BikDD對(duì)于淋巴瘤細(xì)胞Raji、Ramos和U937有明顯生長(zhǎng)抑制作用,并且均強(qiáng)于CMV-BikDD,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);對(duì)于chang liver細(xì)胞無(wú)顯著生長(zhǎng)抑制作用,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。轉(zhuǎn)染SVISA對(duì)于淋巴瘤細(xì)胞Raji、Ramos、U937、hut78和chang liver細(xì)胞均無(wú)生長(zhǎng)抑制作用,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。轉(zhuǎn)染CMV-BikDD對(duì)于淋巴瘤細(xì)胞Raji、Ramos、U937和chang liver細(xì)胞均有顯著生長(zhǎng)抑制作用,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(圖5)。
圖5 S-VISA-BikDD與CMV-BikDD轉(zhuǎn)染對(duì)淋巴瘤和肝細(xì)胞的生長(zhǎng)抑制作用比較
為探討上述載體轉(zhuǎn)染對(duì)Raji細(xì)胞凋亡的影響,筆者用流式細(xì)胞儀檢測(cè)了Raji、Ramos、U937和chang liver 4種細(xì)胞的凋亡情況,結(jié)果顯示:對(duì)照組(2.67±0.31)%;S-VISA 組(7.34±0.76)%,SVISA-BikDD組(28.93±4.25)%,CMV-BikDD組(17.62±2.17)%。結(jié)果表明,S-VISA-BikDD 及CMV-BikDD轉(zhuǎn)染對(duì)淋巴瘤Raji細(xì)胞有明顯凋亡誘導(dǎo)作用,且S-VISA-BikDD對(duì)于Raji細(xì)胞的凋亡誘導(dǎo)作用較CMV-BikDD明顯,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。
Bcl-2家族是細(xì)胞凋亡的關(guān)鍵調(diào)節(jié)因子,Bik是其中一種重要的促凋亡蛋白。最新研究發(fā)現(xiàn),伴隨著死亡信號(hào)的刺激,Bik磷酸化后,可以與抗凋亡蛋白質(zhì)結(jié)合,從而使其他促凋亡蛋白直接激活Bax。Bax移位到線粒體并形成同源二聚體通道,促進(jìn)細(xì)胞色素c的釋放,導(dǎo)致caspase的激活和細(xì)胞凋亡[10]。
Sturm等[11]研究顯示,Bik高表達(dá)于正常腎上皮中,而腎細(xì)胞癌中由于染色體22q13.2中的Bik位點(diǎn)雜合性丟失及表觀遺傳學(xué)啟動(dòng)子沉寂而導(dǎo)致Bik基因表達(dá)失活。Van Keimpema等[12]闡明彌漫大B細(xì)胞淋巴瘤患者的生存率低與Bik蛋白編碼基因表達(dá)減低相關(guān)。Brosseau等[13]發(fā)現(xiàn),治療套細(xì)胞淋巴瘤的一種新的有效藥物來(lái)那度胺與1α,25-二羥維生素D3聯(lián)合應(yīng)用,明顯促進(jìn)了腫瘤細(xì)胞死亡,其作用與Bik表達(dá)上調(diào)相關(guān),這種表達(dá)上調(diào)與Bik mRNA水平增長(zhǎng)有關(guān)。Bik基因沉寂阻止了這兩種藥物誘導(dǎo)的凋亡,證實(shí)Bik直接參與細(xì)胞死亡。Hong等[14]在 MCF-7和 MDA-MB231人類乳腺癌細(xì)胞系中發(fā)現(xiàn)植物血凝素與阿霉素聯(lián)合應(yīng)用,促進(jìn)癌細(xì)胞凋亡,同時(shí)檢測(cè)到包括Bik蛋白在內(nèi)的促凋亡蛋白表達(dá)上升。Guo等[15]通過(guò)對(duì)濾泡性淋巴瘤患者基因表達(dá)譜的分析,鑒定出包括Bik在內(nèi)的幾種基因在zeste同源物2(EZH2)啟動(dòng)子突變型病例中其mRNA表達(dá)水平降低。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,淋巴瘤細(xì)胞Raji、Ramos及U937的Bik蛋白表達(dá)水平與作為正常對(duì)照的肝細(xì)胞chang liver相比顯著降低,與前述研究結(jié)果一致。
Xie等[16]構(gòu)建了含 BikDD、hTERT 啟動(dòng)子及VISA系統(tǒng)的腫瘤靶向治療基因T-VISA-BikDD,將其導(dǎo)入多種乳腺癌鼠模型中,發(fā)現(xiàn)該治療基因可引起有效的抗腫瘤效應(yīng),延長(zhǎng)病鼠生存期。近來(lái),Xie等[17]在前列腺癌鼠模型中進(jìn)行腫瘤靶向性基因治療研究,將T-VISA-BikDD載體進(jìn)一步聯(lián)合雄激素反應(yīng)區(qū)域(ARR)構(gòu)建成AT-VISA-BikDD載體,導(dǎo)入前列腺癌鼠模型,抑制了前列腺癌生長(zhǎng)并延長(zhǎng)病鼠存活期,且對(duì)機(jī)體無(wú)明顯毒副作用。以上實(shí)驗(yàn)均證實(shí),T-VISA作為啟動(dòng)子的毒性作用明顯低于CMV 啟動(dòng)子。本實(shí)驗(yàn)將 S-VISA-BikDD、CMVBikDD和對(duì)照S-VISA瞬時(shí)轉(zhuǎn)染人淋巴瘤細(xì)胞Raji、Ramos、U937和肝細(xì)胞chang liver后,筆者發(fā)現(xiàn)S-VISA-BikDD及CMV-BikDD對(duì)于上述3種淋巴瘤細(xì)胞均有明顯生長(zhǎng)抑制作用,S-VISA-BikDD的生長(zhǎng)抑制作用強(qiáng)于 CMV-BikDD(P<0.05);SVISA-BikDD轉(zhuǎn)染對(duì)于chang liver細(xì)胞無(wú)明顯生長(zhǎng)抑制作用(P>0.05),但 CMV-BikDD 對(duì) chang liver細(xì)胞表現(xiàn)出抑制作用(P<0.05)。本研究結(jié)果表明,S-VISA載體選擇性地驅(qū)動(dòng)BikDD在淋巴瘤細(xì)胞中的表達(dá),實(shí)現(xiàn)了BikDD在淋巴瘤細(xì)胞中的高效、特異性表達(dá),避免了對(duì)正常細(xì)胞的急性毒性作用。凋亡檢測(cè)的結(jié)果進(jìn)一步證實(shí)了S-VISA-BikDD特異性促淋巴瘤細(xì)胞凋亡的作用,其作用較CMVBikDD明顯增強(qiáng)。因此,對(duì)于淋巴瘤的基因治療而言,S-VISA-BikDD可能比 CMV-BikDD更為有力,且對(duì)正常細(xì)胞的毒性低,與以上實(shí)驗(yàn)結(jié)果一致。
綜上所述,S-VISA-BikDD載體的成功構(gòu)建及其促凋亡作用研究,為淋巴瘤基因治療找到了新的思路及靶標(biāo),為進(jìn)一步開展動(dòng)物實(shí)驗(yàn)和臨床實(shí)驗(yàn)的可行性及安全性提供了可靠依據(jù),具有重要的理論意義和應(yīng)用前景。
[1]羅寧,肖志強(qiáng),李建璜.淋巴瘤特異性高效基因表達(dá)載體survivin-VISA的構(gòu)建與鑒定[J].腫瘤防治研究,2014,41(7):724-727.
[2]Yip KW,Reed JC.Bcl-2family proteins and cancer[J].Oncogene,2008,27(50):6398-6406.
[3]Garg H,Salcedo R,Trinchieri G,et al.Improved nonviral cancer suicide gene therapy using survivin promoter-driven mutant Bax[J].Cancer Gene Therapy,2010,17(3):155-163.
[4]Sher YP,Liu SJ,Chang CM,et al.Cancer-Targeted BikDD Gene Therapy Elicits Protective Antitumor Immunity against Lung Cancer[J].Mol Cancer Ther,2011,10(4):637-647.
[5]Lang JY,Hsu JL,Meric-Bernstam F,et al.BikDD Eliminates Breast Cancer Initiating Cells and Synergizes with Lapatinib for Breast Cancer Treatment[J].Cancer Cell,2011,20(3):341-356.
[6]Xie X,Xia W,Li Z,et al.Targeted Expression of BikDD Eradicates Pancreatic Tumors in Noninvasive Imaging Models[J].Cancer Cell,2007,12(1):52-65.
[7]Tang YH,Zhong MZ,Liu W,et al.To clone human Survivin gene promoter and research the transcriptional activity of it in the lymphoma cells[J].Bai Xue Bing Lin Ba Liu,2010,19(2):84-87.
[8]Donofrio G,Cavirani S,Vanderplasschen A,et al.Recombinant bovine herpesvirus 4(BoHV-4)expressing glycoprotein D of BoHV-1is immunogenic and elicits serumneutralizing antibodies against BoHV-1in a rabbit model[J].Clinical and Vaccine Immunology,2006,13(11):1246-1254.
[9]Zhang L,Adams JY,Billick E,et al.Molecular engineering of a Two-step transcription amplification(TSTA)system for transgene delivery in Prostate cancer[J].Molecular Therapy,2002,5(3):223-232.
[10]Garg H,Salcedo R,Trinchieri G,et al.Improved nonviral cancer suicide gene therapy using survivin promoter-driven mutant Bax[J].Cancer Gene Therapy,2010,17(3):155-163.
[11]Sturm I,Stephan C,Gillissen B,et al.Loss of the tissuespecific proapoptotic BH3-only protein Nbk/Bik is a unifying feature of renal cell carcinoma[J].Cell Death Differ,2006,13(4):619-627.
[12]Van Keimpema M,Grüneberg LJ,Mokry M,et al.FOXP1 directly represses transcription of proapoptotic genes and cooperates with NF-κB to promote survival of human B cells[J].Blood,2014,124(23):3431-3440.
[13]Brosseau C,Dousset C,Touzeau C,et al.Combination of lenalidomide with vitamin D3induces apoptosis in mantle cell lymphoma via demethylation of BIK[J].Cell Death Dis,2014,5:1389.
[14]Hong CE,Park AK,Lyu SY.Synergistic anticancer effects of lectin and doxorubicin in breast cancer cells[J].Mol Cell Biochem,2014,394(1-2):225-235.
[15]Guo S,Chan JK,Iqbal J,et al.EZH2mutations in follicular lymphoma from different ethnic groups and associated gene expression alterations[J].Clin Cancer Res,2014,20(12):3078-3086.
[16]Xie X,Li L,Xiao X,et al.Targeted expression of BikDD eliminates breast cancer with virtually no toxicity in noninvasive imaging models[J].Mol Cancer Ther,2012,11(9):1915-1924.
[17]Xie X,Kong Y,Tang H,et al.Targeted BikDD expression kills androgen-dependent and castration-resistant prostate cancer cells[J].Mol Cancer Ther,2014,13(7):1813-1825.