王婷,王緒明
(江漢大學醫(yī)學院病理學與病理生理學教研室,武漢430056)
雌激素及其受體α與胃癌生物學行為關(guān)系的研究進展
王婷,王緒明
(江漢大學醫(yī)學院病理學與病理生理學教研室,武漢430056)
研究證實,雌激素與胃癌的發(fā)生有關(guān)。男性生理性低濃度雌激素可促進胃癌細胞增殖,而女性生理性高濃度雌激素則可抑制胃癌細胞增殖。因此推測,雌激素對胃癌的生長具有雙向調(diào)節(jié)作用。雌激素主要通過雌激素受體α(ERα)發(fā)揮作用,故ERα與胃癌的發(fā)生亦存在相關(guān)性。ERα有3種亞型,即ERα- 66、ERα- 46、ERα- 36,三者均能通過相應的信號通路參與胃癌細胞增殖、侵襲和轉(zhuǎn)移等惡性生物學行為。本文就近年雌激素及ERα與胃癌生物學行為關(guān)系的相關(guān)研究進行綜述。
胃癌;雌激素;雌激素受體
胃癌是全世界范圍內(nèi)最常見的惡性腫瘤之一,是亞洲癌癥相關(guān)死亡的主要原因[1]。臨床研究發(fā)現(xiàn),早期胃癌的治愈率高達95%,但早期胃癌確診率僅10%左右,大多數(shù)胃癌患者確診時已屬晚期,無法進行根治性手術(shù),5年生存率不足20%[2]。流行病學調(diào)查發(fā)現(xiàn),男性胃癌的發(fā)病率比絕經(jīng)前女性高2~3倍,但與絕經(jīng)后女性比較并無統(tǒng)計學差異;多次生育女性較無生育女性胃癌的發(fā)病率明顯降低;口服避孕藥和雌激素替代治療可降低女性胃癌的發(fā)病率,而卵巢切除女性胃癌的發(fā)病率明顯增加;前列腺癌患者雌激素治療后胃癌的發(fā)病率明顯低于未用雌激素治療者[3]。以上研究表明,雌激素與胃癌的發(fā)生有關(guān)。雌激素主要通過雌激素受體α(ERα)發(fā)揮生物學功能,故ERα與胃癌的發(fā)生亦存在相關(guān)性。本文結(jié)合文獻就雌激素及ERα與胃癌生物學行為關(guān)系的研究進展作一綜述。
內(nèi)源性雌激素是一種主要由卵巢分泌的類固醇激素,主要包括雌酮(E1)、17β- 雌二醇(E2)和雌三醇(E3)等,以E2的生物活性最強[4]。在體內(nèi)雌激素可與其特定受體結(jié)合,發(fā)揮促進女性附屬性器官成熟及第二性征出現(xiàn),并維持正常性欲及生殖功能[4]。
ER是固醇類激素受體蛋白超家族成員之一,分布于多種組織,介導大部分已知的雌激素效應。ER有ERα、ERβ兩種。目前關(guān)于ER與胃癌關(guān)系的研究主要集中在ERα上,而ERβ與胃癌的關(guān)系尚不清楚[5,6]。ERα有3種亞型,即ERα- 66、ERα- 46、ERα- 36[7]。ERα- 66是傳統(tǒng)的ERα,包括多個功能區(qū)域,A/B區(qū)有一個非配體依賴的轉(zhuǎn)錄激活區(qū)(AF- 1),C區(qū)是DNA結(jié)合域,D區(qū)可與DNA結(jié)合,E/F區(qū)為配體結(jié)合域,E區(qū)有一個依賴配體的轉(zhuǎn)錄激活區(qū)(AF- 2),F(xiàn)區(qū)的主要功能是調(diào)節(jié)配體與配體結(jié)合、受體二聚化及敏感基因表達激活[8,9]。ERα- 66作為傳統(tǒng)的雌激素受體,主要介導雌激素的核信號通路,調(diào)節(jié)激活靶基因轉(zhuǎn)錄活動[10]。與ERα- 66相比,ERα- 46缺少AF- 1,其功能目前尚不清楚,可能介導雌激素的膜信號通路[11]。而ERα- 36是ERα- 66獨特的變異,ERα- 36缺少2個轉(zhuǎn)錄激活區(qū),即AF- 1、AF- 2,但保留了與ERα- 66同樣的DNA結(jié)合域、部分二聚體以及配體結(jié)合域[12]。其主要介導雌激素的膜信號通路,與細胞增殖、侵襲及轉(zhuǎn)移有關(guān)[12,13]。
研究發(fā)現(xiàn),男性生理性低濃度雌激素可促進胃癌細胞增殖,而女性生理性高濃度雌激素則可抑制胃癌細胞增殖,說明雌激素對胃癌的生長具有雙向調(diào)節(jié)作用[3]。高活性E2經(jīng)17β- 羥基類固醇脫氫酶1(HSD17B1)的作用可轉(zhuǎn)換成低活性E1。Frycz等[14]研究發(fā)現(xiàn),5- dAzaC通過誘導DNA的5′側(cè)翼區(qū)的去甲基化,使HSD17B1表達上調(diào),導致E1向E2轉(zhuǎn)換增強,可降低胃癌的發(fā)生風險。高活性E2亦可經(jīng)17β- 羥基類固醇脫氫酶2(HSD17B2)轉(zhuǎn)換為低活性E1,同時HSD17B2可將睪酮轉(zhuǎn)為雄烯二酮、5α- 雄烯二醇轉(zhuǎn)為脫氫表雄酮,并且睪酮經(jīng)5α轉(zhuǎn)化酶生成雙氫睪酮,胃癌組織中HSD17B2表達降低,導致E2水平升高,同時睪酮與雙氫睪酮水平升高,增加胃癌的發(fā)生風險;此外,低水平HSD17B2還與彌漫性胃癌的發(fā)生有關(guān)[15]。
三葉肽又名三葉因子,由乳腺癌相關(guān)肽(TFF1)、解痙多肽(TFF2)和腸三葉因子(TFF3)組成。TFF1是1982年由Masiakowski等首次在乳腺癌MCF7細胞中發(fā)現(xiàn)的,TFF2同年由Jorgensen等在分離豬胰島素時發(fā)現(xiàn)的,TFF3是1991年由Suemori等從大鼠空腸組織中發(fā)現(xiàn)的。三葉肽的編碼基因位于人染色體21q22.3區(qū)域,三個基因在一條染色體上順序成簇分布,說明這3個基因是由一個原始基因復制而來。TFF1基因位于21號染色體長臂,有3個外顯子、2個內(nèi)含子和2個啟動子,TFF1基因啟動子CpG島甲基化可促進TFF1表達,而TFF1具有保護胃黏膜、促進胃黏膜再生作用[16]。有研究發(fā)現(xiàn),TFF1基因啟動子區(qū)-394 TT基因型和CT基因型存在于雌激素反應元件中,TFF1基因為雌激素誘導基因,經(jīng)雌激素誘導C與T互換,使雌激素受體與雌激素反應元件結(jié)合的親和力減小,TFF1基因表達降低,從而促進胃癌的發(fā)生[17]。
研究發(fā)現(xiàn),用不同濃度E2處理胃癌細胞時,caspase- 3隨著E2濃度的升高逐漸被激活,繼而引起細胞凋亡[18]。甲基CpG結(jié)合蛋白2(MeCP2)是甲基化CpG結(jié)合域之一,胃癌中高表達的MeCP2通過MyoD1介導caspase- 3信號通路下調(diào),抑制胃癌細胞凋亡[19]。7- o- geranylquercetin(GQ)為槲皮素的一種O- 烷基化衍生物,可通過激活ROS/MAPK介導的信號通路,參與誘導caspase引起胃癌細胞凋亡[20]。雌激素可通過抑制原癌基因erbB- 2表達抑制胃癌進展。雌激素治療可通過抑制胃癌組織IL- 6- Src/Cas/paxillin信號通路活化,抑制間充質(zhì)干細胞誘導的胃癌細胞遷移[21]。
3.1 ERα- 66 ERα- 66的編碼基因位于人6q25染色體上,編碼蛋白全長約595個氨基酸,分子量約為66 kD[22]。研究發(fā)現(xiàn),ERα- 66可抑制胃癌生長,高表達ERα- 66的胃癌細胞增殖和侵襲能力受到抑制,而低表達ERα- 66的胃癌細胞增殖和侵襲能力增強[22]。
β- 鏈蛋白(β- catenin)主要參與細胞間的黏附及相關(guān)基因的表達,還與細胞增殖、分化和凋亡等有關(guān)。ERα- 66高表達可導致β- catenin表達降低,抑制胃癌細胞的生長和增殖,并可阻止細胞進入G1/G0期,促進細胞凋亡,阻止腫瘤進展[22]。胃癌中存在Wnt信號通路的異常激活,細胞周期和細胞凋亡調(diào)節(jié)因子1(CCAR1)是Wnt/β- catenin信號通路的轉(zhuǎn)錄輔激活因子,CCAR1降低可抑制細胞生長、侵襲與遷移能力并可促進細胞凋亡,而β- catenin可協(xié)同CCAR1發(fā)揮作用[23]。β- catenin也可由MeCP2通過調(diào)節(jié)FOXF1介導的Wnt5a/β- catenin信號通路影響細胞增殖和凋亡[19]。但上述通路是否與ERα- 66有關(guān)尚不明確。
研究顯示,LMTK3是一種與ERα- 66表達相關(guān)的促腫瘤生長因子,是目前治療腫瘤的一個新靶點[24]。LMTK3作為ERα- 66的調(diào)節(jié)器,可使ERα- 66磷酸化,并使其免受蛋白酶分解,胃癌細胞ERα- 66表達陽性時,靶向抑制LMTK3可作為胃癌的治療策略之一[25]。
研究表明,ERα- 66高表達可造成β- catenin表達降低,進而抑制胃癌的侵襲和轉(zhuǎn)移[22]。緊密連接蛋白claudin- 1(CLDN1)在惡性腫瘤中表達失調(diào),其參與腫瘤細胞的增殖和凋亡的機制尚不明確,但胃癌中ERα- 66和CLDN1的表達呈負相關(guān)關(guān)系,且與正常胃組織相比,CLDN1在胃癌組織中表達更高[26]。此外,CLDN1與腫瘤細胞增殖、侵襲及轉(zhuǎn)移密切相關(guān)。因此,ERα- 66和CLDN1可能共同影響胃癌細胞增殖、侵襲與轉(zhuǎn)移。但也有研究認為,E- cadherin對上皮細胞間黏附作用的產(chǎn)生和維護具有重要作用,細胞間黏附性損傷與腫瘤細胞發(fā)生浸潤和遷移有關(guān),E- cadherin表達缺失可促進腫瘤的侵襲和轉(zhuǎn)移,而ERα- 66低表達可促進E- cadherin表達,繼而阻止腫瘤的侵襲和轉(zhuǎn)移[27];ERα- 66在胃癌組織及正常胃組織中均呈低表達[28];ERα- 66表達與腫瘤分級無關(guān)[29];ERα- 66陽性表達與無病生存期縮短及彌漫型胃癌發(fā)生有關(guān),也與胃癌預后不良相關(guān)[27];ERα- 66表達缺失患者預后較好[30]。上述研究證實,ERα- 66與胃癌細胞增殖、侵襲和轉(zhuǎn)移等生物學行為相關(guān),但其具體作用尚需進一步研究。
3.2 ERα- 36 ERα- 36的編碼基因亦位于人6q25染色體上,編碼蛋白全長約310個氨基酸,分子量約為36 kD[22]。文獻報道,ERα- 36與胃癌細胞增殖、侵襲和轉(zhuǎn)移有關(guān)。高表達ERα- 36的胃癌細胞增殖、侵襲及轉(zhuǎn)移能力增強。而抑制ERα- 36的表達則可抑制胃癌細胞增殖、侵襲及轉(zhuǎn)移能力[13]。
ERα- 36可能參與激活絲裂原活化蛋白激酶(MAPK)/ERK信號通路而促進細胞增殖[31]。ERα- 36高表達的胃癌細胞中,ERα- 36通過c- Src信號轉(zhuǎn)導通路活化介導雌激素信號,誘導c- Src中Tyr416磷酸化并降低Tyr527磷酸化,使Cyclin D1表達水平增加,進而促進細胞增殖,故ERα- 36可能是胃癌的一個治療靶點[32]。Wang等[3]研究表明,ERα- 36高表達時胃癌細胞對雌激素呈高敏狀態(tài),Cyclin D1高表達,細胞生長加快;而ERα- 36低表達時則相反。ERα- 36表達高低不同時,Cyclin D1表達呈雙相模式,細胞生長也呈雙向模式。
Deng等[29]研究發(fā)現(xiàn),ERα- 36主要表達于胃癌細胞膜和細胞質(zhì)中,其表達變化與淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移有關(guān),但其具體機制尚不清楚。在胃癌組織中,高表達ERα- 36介導的雌激素信號通路可使下游信號分子GRP94表達增強,繼而促進腫瘤細胞增殖、侵襲和轉(zhuǎn)移[33]。在ERα- 36- GRP94介導胃癌發(fā)生過程中,Ser473位點Akt磷酸化水平增強,可促進細胞存活與增殖,Akt信號通路可能亦參與其中[34],但其具體機制還有待于進一步研究。
3.3 ERα- 46 ERα- 46的編碼基因亦位于人6q25染色體上,編碼蛋白全長約422個氨基酸,分子量約為46 kD[22]。迄今為止,尚未發(fā)現(xiàn)ERα- 46與胃癌生物學行為相關(guān)的報道。
綜上所述,雌激素及其受體不僅參與機體生長、發(fā)育等正常生理過程,在胃癌的增殖、侵襲和轉(zhuǎn)移等生物學行為中亦可發(fā)揮重要作用,但其具體機制尚未完全闡明。
[1] Tanaka M, Ma E, Tanaka H, et al. Trends of stomach cancer mortality in Eastern Asia in 1950- 2004: comparative study of Japan, Hong Kong and Singapore using age, period and cohort analysis[J]. Int J Cancer, 2012,130(4):930- 936.
[2] Yazici O, Sendur MA, Ozdemir N, et al. Targeted therapies in gastric cancer and future perspectives[J]. World J Gastroenterol, 2016,22(2):471- 489.
[3] Wang X, Huang X, Fu Z, et al. Biphasic ER- α36- mediated estrogen signaling regulates growth of gastric cancer cells[J]. Int J Oncol, 2014,45(6):2325- 2330.
[4] Birkhauser M. Treatment of pain in estrogen deficiency[J]. Arch Gynecol Obstet, 1996,259(Suppl 1):S74- S79.
[5] Xu CY, Guo JL, Jiang ZN, et al. Prognostic role of estrogen receptor alpha and estrogen receptor beta in gastric cancer[J]. Ann Surg Oncol, 2010,17(9):2503- 2509.
[6] Guo JL, Xu CY, Jiang ZN, et al. Estrogen receptor beta variants mRNA expressions in gastric cancer tissues and association with clinicopathologic parameters[J]. Hepatogastroenterology, 2009,57(104):1584- 1588.
[7] Vranic S, Gatalica Z, Deng H, et al. ER- α36, a novel isoform of ER- α66, is commonly over- expressed in apocrine and adenoid cystic carcinomas of the breast[J]. J Clin Pathol, 2011,64(1):54- 57.
[8] Greschik H, Flaig R, Renaud JP, et al. Structural basis for the deactivation of the estrogen- related receptor gamma by Diethylstilbestrol or 4- hydroxytamoxifen and determinants of selectivity[J]. J Biol Chem, 2004,279(32):33639- 33646.
[9] Luo J, Sladek R, Carrier J, et al. Reduced fat mass in mice lacking orphan nuclear receptor estrogen- related receptor alpha[J]. Mol Cell Biol, 2003,23(22):7947- 7956.
[10] Lee HR, Kim TH, Choi KC. Functions and physiological roles of two types of estrogen receptors, ERα and ERβ, identified by estrogen receptor knockout mouse[J]. Lab Anim Res, 2012,28(2):71- 76.
[11] Flouriot G, Brand H, Denger S, et al. Identification of a new isoform of the human estrogen receptor- alpha (hER- alpha) that is encoded by distinct transcripts and that is able to repress hER- alpha activation function 1[J]. EMBO J, 2000,19(17):4688- 4700.
[12] Wang Z, Zhang X, Shen P, et al. Identification, cloning, and expression of human estrogen receptor- α36, a novel variant of human estrogen receptor- α66[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2005,336(4):1023- 1027.
[13] 王緒明,劉晶晶,鄧昊,等.ER- α36對胃癌SGC7901細胞在裸鼠體內(nèi)生長的影響[J].世界華人消化雜志,2011,19(28):2919- 2924.
[14] Frycz BA, Murawa D, Wysocki- Borejsza M, et al. Expression of 17β- hydroxysteroid dehydrogenase type 1 in gastric cancer[J]. Biomed Pharmacother, 2013,67(7):651- 657.
[15] Frycz BA, Murawa D, Borejsza- Wysocki M, et al. Expression of 17β- hydroxysteroid dehydrogenase type 2 is associated with some clinicopathological features ingastriccancer[J]. Biomed Pharmacother, 2015(70):24- 27.
[16] Feng G, Zhang Y, Yuan H, et al. DNA methylation of trefoil factor 1 (TFF1) is associated with the tumorigenesis of gastric carcinoma[J]. Mol Med Rep, 2014,9(1):109- 117.
[17] Moghanibashi M, Mohamadynejad P, Rasekhi M, et al. Polymorphism of estrogen response element in TFF1 gene promoter is associated with anincreased susceptibility to gastric cancer[J]. Gene, 2012,492(1):100- 103.
[18] Qin J, Liu M, Ding Q, et al. The direct effect of estrogen on cell viability and apoptosis inhuman gastric cancer cells[J]. Mol Cell Biochem, 2014,395(1- 2):99- 107.
[19] Zhao L, Liu Y, Tong D, et al. MeCP2 promotes gastric cancer progression through regulating FOXF1/Wnt5a/β- Catenin and MYOD1/Caspase- 3 signaling pathways[J]. E Bio Med, 2017(16):87- 100.
[20] Zhu Y, Jiang Y, Shi L, et al. 7- O- Geranylquercetin induces apoptosis in gastric cancer cells via ROS- MAPK mediated mitochondrial signaling pathway activation[J]. Biomed Pharmacother, 2017(87):527- 538.
[21] Liu CJ, Kuo FC, Hu HM, et al. 17β- estradiol inhibition of IL- 6- Src and Cas and paxillin pathway suppresses human mesenchymal stem cells- mediated gastric cancer cell motility[J]. Transl Res, 2014,164(3):232- 243.
[22] Zhou J, Teng R, Xu C, et al. Overexpression of ERα inhibits proliferation and invasion of MKN28 gastric cancer cells by suppressing β- catenin[J]. Oncol Rep, 2013,30(4):1622- 1630.
[23] Chang TS, Wei KL, Lu CK, et al. Inhibition of CCAR1, a coactivator of β- catenin, suppresses the proliferation and migration of gastric cancer cells[J]. Int J Mol Sci, 2017,18(2):E460.
[24] Giamas G, Filipovic A, Jacob J, et al. Kinome screening for regulators of the estrogen receptor identifies LMTK3 as a new therapeutic target in breast cancer[J]. Nat Med, 2011,17(6):715- 719.
[25] Li Z, Wu J, Ji M, et al. Prognostic role of lemur tyrosine kinase 3 in postoperative gastric cancer[J]. Mol Clin Oncol, 2014,2(5):756- 760.
[26] Sathiya Pandi N, Manimuthu M, Asha GV, et al. In silico analysis and validation of the proliferative potential of CLDN1 expression in gastric cancer[J]. J Environ Pathol Toxicol Oncol, 2013,32(4):343- 360.
[27] Yi JH, Do IG, Jang J, et al. Anti- tumor efficacy of fulvestrant in estrogen receptor positive gastric cancer[J]. Sci Rep, 2014(4):7592.
[28] Wang J, Li J, Fang R, et al. Expression of ERα36 in gastric cancer samples and their matched normal tissues[J]. Oncol Lett, 2012,3(1):172- 175.
[29] Deng H, Huang X, Fan J, et al. A variant of estrogen receptor- α, ER- alpha36 is expressed in human gastric cancer and is highly correlated with lymph node metastasis[J]. Oncol Rep, 2010,24(1):171- 176.
[30] Ryu WS, Kim JH, Jang YJ, et al. Expression of estrogen receptors in gastric cancer and their clinical significance[J]. J Surg Oncol, 2012,106(4):456- 461.
[31] Wang X, Chen Q, Huang X, et al. Effects of 17β- estradiol and tamoxifen on gastric cancer cell proliferation and apoptosis and ER- α36 expression [J]. Oncol Lett, 2017,13(1):57- 62.
[32] Wang X, Deng H, Zou F, et al. ER- α36- mediated gastric cancer cell proliferation via the c- Src pathway[J]. Oncol Lett, 2013,6(2):329- 335.
[33] Fu Z, Deng H, Wang X, et al. Involvement of ER- α36 in the malignant growth of gastric carcinoma cells is associated with GRP94 overexpression[J]. Histopathology, 2013,63(3):325- 333.
[34] Fu Z, Zhen H, Zou F, et al. Involvement of the Akt signaling pathway in ER- α36/GRP94- mediated signaling in gastric cancer[J]. Oncol Lett, 2014,8(5):2077- 2080.
國家自然科學基金資助項目(81272754、81470110);湖北省衛(wèi)生和計劃生育委員會基金資助項目(WJ2015Z059)。
王緒明(E- mail: 107967594@qq.com)
10.3969/j.issn.1002- 266X.2017.36.035
R735.2
A
1002- 266X(2017)36- 00103- 04
2016- 10- 26)