張建龍,丘富安,董 星,秦 韜,馬玉芳,黃一帆*,李 健*
(1. 福建農(nóng)林大學(xué) 福建省獸醫(yī)中藥與動(dòng)物保健重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,福州 350002;2. 中西獸醫(yī)結(jié)合與動(dòng)物保健福建省高等學(xué)校重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,福州 350002)
氧化應(yīng)激作為誘發(fā)多種疾病的重要病理機(jī)制之一,導(dǎo)致畜禽生長(zhǎng)緩慢、體重下降、飼料利用率低,幼齡畜禽出現(xiàn)發(fā)育不良、腹瀉、腸道絨毛萎縮和隱窩增生、成活率低下等情況,對(duì)畜禽養(yǎng)殖產(chǎn)生巨大影響。研究表明,中藥多糖作為免疫添加劑,對(duì)免疫系統(tǒng)具有廣泛的調(diào)節(jié)作用[1-3]。
人工誘發(fā)氧化應(yīng)激是一種常見(jiàn)的試驗(yàn)方法,常用的有大腸桿菌、沙門(mén)菌與高溫滅活的葡萄球菌三種氧化應(yīng)激原,其中大腸桿菌是使用最普遍的一種菌種,具體模型的建立是在試驗(yàn)豬腹膜或者靜脈注射一定劑量的大腸桿菌脂多糖(LPS)。脂多糖(LPS)是存在于革蘭陰性菌細(xì)胞壁中的致病成分,已有眾多研究使用LPS構(gòu)建細(xì)胞[4-6]和動(dòng)物[7-8]的氧化應(yīng)激模型。LPS既可以誘導(dǎo)產(chǎn)生大量的ROS,又是生豬氧化應(yīng)激繼發(fā)內(nèi)毒血癥過(guò)程中重要的毒力因子,因此更具生產(chǎn)實(shí)際意義。
猴頭菇(Hericiumerinaceus)是一種藥用食用菌,具有抗氧化、抗衰老、保肝利肝、提高免疫力等的功效[9-11],因?yàn)榇罅康娜斯ぴ耘嗍沟闷涑杀窘档?,在日常食品中深受青睞。猴頭菇多糖(Hericiumerinaceuspolysaccharide,HEP)作為猴頭菇內(nèi)的主要活性物質(zhì),在動(dòng)物保健和治療上有著良好的療效。然而,用HEP對(duì)豬腸道氧化應(yīng)激的研究目前還比較鮮少,因此,本試驗(yàn)利用LPS建立氧化應(yīng)激模型,來(lái)探究HEP對(duì)豬腸道氧化應(yīng)激作用的各方面影響。
選購(gòu)45頭健康的(28±3)日齡斷奶仔豬(杜洛克×長(zhǎng)白×大白),猴頭菇多糖(HEP):購(gòu)自上??抵壅婢嗵怯邢薰?,純度為50%,脂多糖(LPS):大腸桿菌血清型055:B5,Sigma公司提供,qPCR試劑盒和反轉(zhuǎn)錄試劑盒由TaKaRa公司提供。其他試劑還有蛋白裂解液、BCA蛋白濃度測(cè)定試劑盒(cwbiotech 02912E)、蛋白marker(Biomed)、PVDF膜0.45 μm(Millipore)、丙烯酰胺、雙丙烯酰胺(Amresco)、SDS(Sigma L4390)、HRP標(biāo)記山羊抗兔一抗(Jackson111-035-003)、HRP標(biāo)記山羊抗鼠二抗(Jackson115-035-003)等。
將45頭仔豬按體重相近原則隨機(jī)分為5個(gè)處理組:空白組、模型組(LPS)、0.2% HEP組、0.4% HEP組、0.6% HEP組,分別飼喂基礎(chǔ)日糧、基礎(chǔ)日糧、添加0.2%、0.4%、0.6% HEP的基礎(chǔ)日糧。每個(gè)處理組9個(gè)重復(fù),每個(gè)重復(fù)1頭仔豬,試驗(yàn)周期21 d。第21天,分別對(duì)模型組、0.2% HEP組、0.4% HEP組、0.6% HEP組仔豬腹腔注射100 μg·kg-1BW脂多糖(LPS),空白組注射等劑量滅菌生理鹽水(NS)。試驗(yàn)于福建莆田優(yōu)利可農(nóng)牧發(fā)展有限公司進(jìn)行,每天喂食3次,單欄飼養(yǎng),圈舍自然通風(fēng),且不定期進(jìn)行消毒。
注射LPS后第3小時(shí),每個(gè)處理組隨機(jī)挑選3頭試驗(yàn)豬,前腔靜脈采血15 mL左右,2 000 r·min-1離心20 min分離血清,用于檢測(cè)抗氧化指標(biāo)以及谷氨酰胺和二胺氧化酶。試驗(yàn)豬于采血完成后立即宰殺,從腹腔內(nèi)取3~5 cm的回腸;取部分腸組織置于10%多聚甲醛磷酸緩沖液中固定,用于制作切片;另取部分腸組織置于液氮中凍存,用于檢測(cè)緊密連接相關(guān)基因和蛋白質(zhì)的表達(dá)情況。
過(guò)氧化氫酶(CAT)測(cè)定試劑盒(可見(jiàn)光法)、谷胱甘肽過(guò)氧化物酶(GSH-PX)測(cè)定試劑盒(比色法)、總超氧化物歧化酶(SOD)測(cè)定試劑盒(WST-1法)和丙二醛(MDA)測(cè)定試劑盒(TBA法),購(gòu)自南京建成生物工程研究所,采用分光光度法測(cè)定,詳細(xì)步驟參照試劑盒說(shuō)明書(shū)要求完成。
谷氨酰胺(GLN)試劑盒和二胺氧化酶(DAO)試劑盒購(gòu)自南京建成生物工程研究所,采用改良分光光度法,按試劑盒說(shuō)明測(cè)定回腸中谷氨酰胺(GLN)和二胺氧化酶(DAO)活性。
將保存在4%多聚甲醛的小腸組織經(jīng)過(guò)“浸洗→脫水→透明→浸蠟→包埋→切片→貼片→烘干→脫蠟入水”制備石蠟切片后,通過(guò)蘇木精-伊紅(HE)染色。每張切片選取2個(gè)視野,每個(gè)視野連續(xù)測(cè)定10 根腸絨毛,運(yùn)用Imageproplus6.0軟件計(jì)算腸絨毛高度和隱窩深度,并計(jì)算絨毛高度/隱窩深度(V/C)值。
1.7.1 RNA提取和反轉(zhuǎn)錄 RNA的提取按照組織勻漿研磨的方法,將提取出的總RNA溶于DEPC水中測(cè)定其OD值,OD260 nm/OD280 nm在1.8~2.0之間的說(shuō)明其純度相對(duì)較高,經(jīng)PCR反應(yīng)擴(kuò)增后取8 μL·孔-1的PCR反應(yīng)液進(jìn)行瓊脂凝膠電泳試驗(yàn)。
1.7.2 RT-PCR測(cè)定 根據(jù)GenBank中豬源Occludin、Claudin和ZO-1全長(zhǎng)序列,用Oligo 7.0軟件設(shè)計(jì)引物,內(nèi)參基因?yàn)镚APDH,按試劑盒說(shuō)明書(shū)要求,采用12.5 μL的體系,將反應(yīng)液加到Real Time PCR管內(nèi)進(jìn)行Real Time PCR反應(yīng),循環(huán)參數(shù):98 ℃ 2 min 初期變性;98 ℃ 10 s、60 ℃ 10 s、68 ℃ 30 s,40 個(gè)循環(huán)。采用雙△Ct+標(biāo)準(zhǔn)曲線擴(kuò)增效率校正法,用10倍梯度稀釋法制作標(biāo)準(zhǔn)曲線,每個(gè)樣品3個(gè)重復(fù),計(jì)算公式為相對(duì)表達(dá)量=2-△△Ct,△△Ct=(Ct目的基因-Ct管家基因)試驗(yàn)組-(Ct目的基因-Ct管家基因)對(duì)照組。
表1基因的擴(kuò)增引物序列
Table1Geneamplificationprimersequence
基因Gene引物序列(5'→3')Primersequence產(chǎn)物長(zhǎng)度/bpLengthofproducts登錄號(hào)AccessionNo.GAPDHForward:ACATCATCCCTGCTTCTACTGGReversed:CTCGGACGCCTGCTTCAC188AF017079OccludinForward:ACGAGCAGCAAAGGGATTCTTCReversed:TCACACCCAGGATAGCACTCATT152NM_001163647.2ClaudinForward:TGCCTCAGTGGAAGATTTACTCCReversed:TGGTGTTCAGATTCAGCAAGGA147NM_001244539.1ZO-1Forward:AGTTTGATAGTGGCGTTGACACReversed:GCTGAAGGACTCACAGGAACA106XM_005659811.1
1.7.3 Western blot檢測(cè) RIPA buffer提取細(xì)胞總蛋白質(zhì),按照Braford蛋白質(zhì)定量試劑盒說(shuō)明書(shū)測(cè)定蛋白質(zhì)樣品的濃度,使用山羊抗兔IgG(H+L)HRP 1∶10 000,室溫孵育1 h。蛋白質(zhì)經(jīng)SDS-PAGE電泳并轉(zhuǎn)移至PVDF膜。以5% BSA-PBST稀釋一抗后4 ℃水平搖床孵育過(guò)夜。次日用5%BSA-PBST稀釋二抗,加入1∶10 000的山羊抗兔IgG(H+L)HRP室溫孵育1 h,加入ECL曝光顯影。
所有指標(biāo)均以孔為統(tǒng)計(jì)單位,采用Excel對(duì)測(cè)得的數(shù)據(jù)進(jìn)行初步整理,試驗(yàn)數(shù)據(jù)采用統(tǒng)計(jì)軟件SPSS17.0進(jìn)行單因素方差分析(ONE-WAY ANOVA)和Duncan氏多重比較,以P<0.05為差異顯著性標(biāo)準(zhǔn),P<0.01為差異極顯著,結(jié)果用平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示。
HEP對(duì)氧化應(yīng)激仔豬血清抗氧化指標(biāo)的影響結(jié)果如圖1所示。根據(jù)圖1A所知,經(jīng)處理過(guò)的各組血清中的CAT含量顯著低于空白組(P<0.05),0.6% HEP組顯著高于LPS組(P<0.05)。根據(jù)圖1B所知,處理過(guò)的各組血清中SOD的含量顯著低于空白組(P<0.05),0.6% HEP組顯著高于LPS組(P<0.05)。根據(jù)圖1C可知,處理過(guò)的各組血清中的GSH-Px含量顯著低于空白組(P<0.05),HEP組顯著高于LPS組(P<0.05)。根據(jù)圖1D可知,各組血清中的MDA的含量相比較,0.2%、0.4% HEP組相比空白組顯著升高(P<0.05),LPS組和0.6% HEP組相比空白組極顯著升高(P<0.01),各HEP組比LPS組顯著降低(P<0.05)。
與空白對(duì)照組比較,*. P<0.05,**. P<0.01;與LPS組比較,#. P<0.05,##. P<0.01;下同。A. HEP對(duì)氧化應(yīng)激仔豬血清CAT的影響;B. HEP對(duì)氧化應(yīng)激仔豬血清SOD的影響;C. HEP對(duì)氧化應(yīng)激仔豬血清GSH-Px的影響;D. HEP對(duì)氧化應(yīng)激仔豬血清MDA的影響Compared with control group, *. P<0.05, **. P<0.01; Compared with LPS group, #. P<0.05, ##. P<0.01; The same as follows. A. Effects of HEP on serum CAT in oxidative stress piglets; B. Effects of HEP on serum SOD in oxidative stress piglets; C. Effects of HEP on serum GSH-Px in oxidative stress piglets; D. Effects of HEP on serum MDA in oxidative stress piglets圖1 HEP對(duì)氧化應(yīng)激仔豬血清抗氧化指標(biāo)的影響Fig.1 Effects of HEP on serum antioxidant indexes in oxidative stress piglets(±s, n=3)
HEP對(duì)氧化應(yīng)激仔豬血清GLN含量和DAO活性的影響結(jié)果如圖2所示。各組間血清中谷氨酰胺的含量由圖2A所知,LPS處理組的GLN水平顯著低于空白組(P<0.05),經(jīng)HEP處理后的各組GLN水平顯著高于LPS組(P<0.05)。圖2B反映了各組血清中DAO的含量變化情況,LPS組的DAO水平極顯著高于空白組(P<0.01),HEP處理組的DAO水平顯著低于LPS組(P<0.05)。
A. HEP對(duì)氧化應(yīng)激仔豬血清谷氨酰胺含量的影響;B. HEP對(duì)氧化應(yīng)激仔豬血清二胺氧化酶活性的影響A. Effects of HEP on serum GLN in oxidative stress piglets; B Effects of HEP on serum DAO in oxidative stress piglets圖2 HEP對(duì)氧化應(yīng)激仔豬血清GLN含量和DAO活性的影響Fig.2 Effects of HEP on serum GLN and DAO in oxidative stress piglets(±s, n=3)
HEP對(duì)氧化應(yīng)激仔豬回腸結(jié)構(gòu)的影響如圖3所示。圖3A表示HEP對(duì)氧化應(yīng)激仔豬回腸絨毛的影響,其中,a圖表示絨毛的高度,空白組極顯著地高于其余各組(P<0.01),LPS組極顯著低于其余各組(P<0.01);b圖表示隱窩的深度,空白組極顯著低于其余各組(P<0.01),LPS組顯著高于0.2% HEP組(P<0.05),極顯著地高于0.4%、0.6% HEP組(P<0.01);c圖表示絨毛高度/隱窩深度的情況,空白組極顯著高于其余各組(P<0.01),LPS組極顯著地低于其余各組(P<0.01)。
圖3B反映了HEP對(duì)氧化應(yīng)激仔豬回腸形態(tài)結(jié)構(gòu)的影響,由圖b可見(jiàn):回腸組織絨毛上皮細(xì)胞的單層柱狀上皮細(xì)胞局部糜爛脫落,隱窩結(jié)構(gòu)受損,黏 膜層局部區(qū)域隱窩結(jié)構(gòu)消失,組織疏松,表明造模成功。圖c、d、e均顯示:回腸上皮絨毛上皮細(xì)胞可見(jiàn)少量脫落,隱窩結(jié)構(gòu)清晰,黏膜層及黏膜下層結(jié)構(gòu)較正常,高劑量HEP組和空白組的結(jié)果基本相似。
A. HEP對(duì)氧化應(yīng)激仔豬回腸絨毛的影響;B. HEP對(duì)氧化應(yīng)激仔豬回腸形態(tài)結(jié)構(gòu)的影響(圖a~e分別為空白組、LPS組、0.2%HEP組、0.4%HEP組和0.6%HEP組),100×A. Effects of HEP on ileal villi of oxidative stress piglets; B. Effects of HEP on ileal morphology of oxidative stress piglets (Fig. a-e were control group, LPS group, 0.2% HEP group, 0.4% HEP group and 0.6% HEP group, respectively), 100×圖3 HEP對(duì)氧化應(yīng)激仔豬回腸結(jié)構(gòu)的影響Fig.3 Effects of HEP on ileal morphology of oxidative stress piglets(±s, n=3)
HEP對(duì)氧化應(yīng)激仔豬回腸緊密連接的影響結(jié)果如圖4。圖4A表示HEP對(duì)氧化應(yīng)激仔豬緊密連接基因轉(zhuǎn)錄的影響,可知:LPS組的3種緊密連接(tight junction,TJ)基因轉(zhuǎn)錄量極顯著地低于空白組的轉(zhuǎn)錄量(P<0.01)。0.4% HEP組的ZO-1 mRNA和ClaudinmRNA轉(zhuǎn)錄量極顯著地高于LPS組(P<0.01),0.2%、0.6% HEP組顯著高于LPS組(P<0.05);0.2% HEP組的OccludinmRNA轉(zhuǎn)錄量顯著高于LPS組(P<0.05),但極顯著低于其他2個(gè)HEP組和空白組(P<0.01);0.4%、0.6% HEP組極顯著地高于LPS組(P<0.01)。
HEP對(duì)氧化應(yīng)激仔豬緊密連接蛋白表達(dá)的影響結(jié)果如圖4 B和C所示。根據(jù)圖4C可以看出,三組TJ蛋白相對(duì)表達(dá)量中,LPS組均極顯著地低于空白組(P<0.01)。各HEP組的Claudin蛋白、Occludin蛋白極顯著地低于空白組(P<0.01),0.2%、0.4% HEP組ZO-1蛋白極顯著地低于空白組(P<0.01),0.6% HEP組顯著低于空白組(P<0.05)。各HEP組三種TJ蛋白表達(dá)量(除0.2% HEP組Claudin外)均極顯著(P<0.01)高于LPS值。
MDA、SOD、GSH-Px、CAT是動(dòng)物機(jī)體抗氧化系統(tǒng)成分,用以清除氧自由基,從而調(diào)節(jié)氧自由基的生成和清除之間的動(dòng)態(tài)平衡[12-14]。本試驗(yàn)結(jié)果顯示,氧化應(yīng)激狀態(tài)下的仔豬血清中的抗氧化指標(biāo)有了明顯變化,SOD、GSH-Px、CAT指數(shù)下降和MDA指數(shù)升高,飼料中添加HEP后,這些指標(biāo)都在向著正常的趨勢(shì)逐漸發(fā)展,這說(shuō)明HEP具有一定抗氧化的能力,且濃度的不同所造成的影響也不同,中等劑量的HEP有著較好的抗氧化應(yīng)激能力。
A. HEP對(duì)氧化應(yīng)激仔豬緊密連接基因轉(zhuǎn)錄的影響;B. HEP對(duì)氧化應(yīng)激仔豬緊密連接蛋白表達(dá)的影響;C. HEP對(duì)氧化應(yīng)激仔豬緊密連接蛋白相對(duì)表達(dá)結(jié)果A. Effects of HEP on TJ gene transcription of oxidative stress piglets; B. Effects of HEP on TJ protein expression of oxidative stress piglets; C. Effects of HEP on TJ protein relative expression圖4 HEP對(duì)氧化應(yīng)激仔豬緊密連接蛋白表達(dá)的影響Fig.4 Effects of HEP on expression of tight junction in ileum from oxidative stress piglets(±s, n=3)
小腸是動(dòng)物機(jī)體內(nèi)吸收轉(zhuǎn)運(yùn)物質(zhì)和預(yù)防疾病的重要組織器官,小腸絨毛是其發(fā)揮生理功能的基本功能單位,腸絨毛高度、隱窩深度和V/C是小腸黏膜結(jié)構(gòu)完整性的重要衡量指標(biāo)[15]。本試驗(yàn)結(jié)果顯示,LPS應(yīng)激嚴(yán)重破壞了仔豬小腸黏膜形態(tài)的完整性,使小腸黏膜功能受損,在添加了HEP之后,隨著劑量的升高,腸黏膜的形態(tài)明顯出現(xiàn)改善。同時(shí),根據(jù)絨毛高度、隱窩深度和V/C值可以分析出,HEP具有保護(hù)腸黏膜的作用,增強(qiáng)腸黏膜對(duì)氧化應(yīng)激的抵御能力,使腸道的結(jié)構(gòu)和功能保持完整。
GLN是哺乳動(dòng)物體內(nèi)的一類(lèi)條件必需氨基酸,它能有效保護(hù)腸道黏膜結(jié)構(gòu),防止黏膜萎縮,改善腸道免疫功能[16],因此,血漿中GLN活性可直接反映腸道結(jié)構(gòu)和功能的完整性。DAO是一種具有高度活性的細(xì)胞內(nèi)酶,跟小腸黏膜中核酸、蛋白質(zhì)的合成密切相關(guān),可作為腸道黏膜結(jié)構(gòu)與功能狀態(tài)的理想指標(biāo),其含量與腸道損傷程度呈正相關(guān),與腸黏膜DAO活性呈負(fù)相關(guān)[17-19]。LPS的刺激,導(dǎo)致仔豬產(chǎn)生氧化應(yīng)激,在破壞腸道結(jié)構(gòu)的同時(shí),引起機(jī)體GLN含量的下降和DAO含量的升高。通過(guò)在日糧中添加HEP的試驗(yàn)結(jié)果顯示,不同劑量的HEP對(duì)GLN和DAO均有一定程度的影響,使受損的腸黏膜得到一些改善。
緊密連接是保護(hù)腸黏膜屏障和腸上皮細(xì)胞間最主要的連接方式,對(duì)緊密連接起關(guān)鍵作用的是連接蛋白ZO-1、Claudin、Occludin[20-22]。本試驗(yàn)結(jié)果顯示,LPS應(yīng)激后,回腸中ZO-1、Claudin、Occludin蛋白表達(dá)量均顯著下降,飼料中添加HEP后,下降程度得到顯著抑制。這表明LPS的應(yīng)激破壞了仔豬回腸上皮細(xì)胞的緊密連接結(jié)構(gòu),而HEP能抑制經(jīng)LPS應(yīng)激后腸上皮細(xì)胞緊密連接mRNA及蛋白質(zhì)表達(dá)量的下降,提高緊密連接基因表達(dá)量,從而保護(hù)腸黏膜屏障功能。
日糧中添加猴頭菇多糖能緩解氧化應(yīng)激造成的回腸黏膜損傷,維持腸上皮細(xì)胞通透性。
[1] 周 雄, 周漢林, 王定發(fā), 等. 中草藥添加劑在養(yǎng)殖生產(chǎn)中的應(yīng)用現(xiàn)狀及展望[J]. 貴州農(nóng)業(yè)科學(xué), 2016, 44(7): 77-80.
ZHOU X, ZHOU H L, WANG D F, et al. Current situation and prospects of the application of Chinese herbal medicine feed additives[J].GuizhouAgriculturalSciences, 2016, 44(7): 77-80. (in Chinese)
[2] 趙成堅(jiān), 李 力, 徐永莉, 等. 中藥飼料添加劑對(duì)荷斯坦公牛血液生化指標(biāo)及生長(zhǎng)發(fā)育的影響[J]. 動(dòng)物醫(yī)學(xué)進(jìn)展, 2016, 37(6): 59-62.
ZHAO C J, LI L, XU Y L, et al. Effects of Chinese herb feed additives on growth and blood biochemical indexes in Holstein Bulls[J].ProgressinVeterinaryMedicine, 2016, 37(6): 59-62. (in Chinese)
[3] 吳 超, 張 莉, 吳躍明, 等. 中草藥添加劑對(duì)早期斷奶仔豬生長(zhǎng)性能和腸道菌群的影響[J]. 中國(guó)畜牧雜志, 2010, 46(3): 31-35, 52.
WU C, ZHANG L, WU Y M, et al. Effects of Chinese herb additives on growth performance and intestinal microflora of weaned piglets[J].ChineseJournalofAnimalScience, 2010, 46(3): 31-35, 52. (in Chinese)
[4] ZHANG M, PAN H, XU Y, et al. Allicin decreases lipopolysaccharide-induced oxidative stress and inflammation in human umbilical vein endothelial cells through suppression of mitochondrial dysfunction and activation of Nrf2[J].CellPhysiolBiochem, 2017, 41(6): 2255-2267.
[5] YAO H, SUN Y P, SONG S S, et al. Protective effects of dioscin against lipopolysaccharide-induced acute lung injury through inhibition of oxidative stress and inflammation[J].FrontPharmacol, 2017, 8: 120.
[6] WU G J, ZHOU W H, ZHAO J F, et al. Matrine alleviates lipopolysaccharide-induced intestinal inflammation and oxidative stress via CCR7 signal[J].Oncotarget, 2017, 8(7): 11621-11628.
[7] HASSAN H M, GUO H L, YOUSEF B A, et al. Dexamethasone pretreatment alleviates Isoniazid/Lipopolysaccharide hepatotoxicity: inhibition of inflammatory and oxidative stress[J].FrontPharmacol, 2017, 8: 133.
[8] FU C L, DAI X G, YANG Y, et al. Dexmedetomidine attenuates lipopolysaccharide-induced acute lung injury by inhibiting oxidative stress, mitochondrial dysfunction and apoptosis in rats[J].MolMedRep, 2017, 15(1): 131-138.
[9] 樊偉偉, 黃惠華. 猴頭菇多糖研究進(jìn)展[J]. 食品科學(xué), 2008, 29(1): 355-358.
FAN W W, HUANG H H. Advances onHericiumerinaceuspolysaccharides[J].FoodScience, 2008, 29(1): 355-358. (in Chinese)
[10] ZHU Y, LI Q, MAO G H, et al. Optimization of enzyme-assisted extraction and characterization of polysaccharides fromHericiumerinaceus[J].CarbohydrPolym, 2014, 101: 606-613.
[11] KHAN M A, TANIA M, LIU R, et al.Hericiumerinaceus: an edible mushroom with medicinal values[J].JComplementIntegrMed, 2013, 10(1): 253-258.
[12] 張克烽, 張子平, 陳 蕓, 等. 動(dòng)物抗氧化系統(tǒng)中主要抗氧化酶基因的研究進(jìn)展[J]. 動(dòng)物學(xué)雜志, 2007, 42(2): 153-160.
ZHANG K F, ZHANG Z P, CHEN Y, et al. Antioxidant defense system in animals[J].ChineseJournalofZoology, 2007, 42(2): 153-160. (in Chinese)
[13] 尹 杰. 出生和早期斷奶對(duì)仔豬抗氧化系統(tǒng)發(fā)育的影響及其機(jī)理研究[D]. 北京: 中國(guó)科學(xué)院大學(xué), 2015.
YIN J. Effects of birth and early weaning on antioxidative system development of piglets and its mechanism[D]. Beijing: University of Chinese Academy of Sciences, 2015. (in Chinese)
[14] 成傳尚, 薛紅星, 彭 健. 日糧中添加酚類(lèi)抗氧化劑對(duì)斷奶仔豬抗氧化系統(tǒng)及生長(zhǎng)性能的影響[C]//中國(guó)畜牧獸醫(yī)學(xué)會(huì)動(dòng)物營(yíng)養(yǎng)學(xué)分會(huì)第七屆中國(guó)飼料營(yíng)養(yǎng)學(xué)術(shù)研討會(huì)論文集. 鄭州: 中國(guó)畜牧獸醫(yī)學(xué)會(huì)動(dòng)物營(yíng)養(yǎng)學(xué)分會(huì), 2014: 5-6.
CHENG C S, XUE H X, PENG J. Effects of dietary phenol antioxidants on antioxidant system and growth performance of weaned[C]//Animal Nutrition Branch Chinese Association of Animal Science and Veterinary Medicine. Zhengzhou: Animal Nutrition Branch of China Institute of Animal Husbandry and Veterinary Medicine, 2014: 5-6. (in Chinese)
[15] 姜慧慧, 黃麗娜, 吳寶成, 等. 猴頭菇多糖對(duì)MDRV感染番鴨病死率及腸道形態(tài)結(jié)構(gòu)的影響[J]. 中國(guó)家禽, 2015, 37(5): 22-26.
JIANG H H, HUANG L N, WU B C, et al. Effects of hericium polysaccharide powder on mortality rate and intestinal morphology of muscovy ducks infected with muscovy duck reovirus[J].ChinaPoultry, 2015, 37(5): 22-26.(in Chinese)
[16] 朱 翠, 蔣宗勇. 谷氨酰胺對(duì)早期斷奶仔豬腸黏膜免疫的調(diào)節(jié)作用[J]. 中國(guó)畜牧獸醫(yī), 2011, 38(8): 10-16.
ZHU C, JIANG Z Y. Regulative function of glutamine on intestinal mucosal immunity in early-weaning piglets[J].ChinaAnimalHusbandry&VeterinaryMedicine, 2011, 38(8): 10-16. (in Chinese)
[17] 湯 菲, 徐海濤, 賈克然. 二胺氧化酶的臨床應(yīng)用[J]. 臨床誤診誤治, 2014, 27(8): 112-115.
TANG F, XU H T, JIA K R. Clinical application of diamine oxidase[J].ClinicalMisdiagnosis&Mistherapy, 2014, 27(8): 112-115. (in Chinese)
[18] AHRENS F, GBEL G, GARZ B, et al. Release and permeation of histamine are affected by diamine oxidase in the pig large intestine[J].InflammRes, 2002, 51(S1): 83-84.
[19] FUKUDOME I, KOBAYASHI M, DABANAKA K, et al. Diamine oxidase as a marker of intestinal mucosal injury and the effect of soluble dietary fiber on gastrointestinal tract toxicity after intravenous 5-fluorouracil treatment in rats[J].MedMolMorphol, 2014, 47(2): 100-107.
[20] 胡彩虹, 錢(qián)仲倉(cāng), 劉海萍, 等. 高鋅對(duì)早期斷奶仔豬腸黏膜屏障和腸上皮細(xì)胞緊密連接蛋白表達(dá)的影響[J]. 畜牧獸醫(yī)學(xué)報(bào), 2009, 40(11): 1638-1644.
HU C H, QIAN Z C, LIU H P, et al. Effect of high level of zinc oxide on tight junction protein expression in intestinal epithelial cells and intestinal mucosal barrier in early weaning piglets[J].ActaVeterinariaetZootechnicaSinica, 2009, 40(11): 1638-1644. (in Chinese)
[21] BERKES J, VISWANATHAN V K, SAVKOVIC S D, et al. Intestinal epithelial responses to enteric pathogens: effects on the tight junction barrier, ion transport, and inflammation[J].Gut, 2003, 52(3): 439-451.
[22] HU C H, XIAO K, LUAN Z S, et al. Early weaning increases intestinal permeability, alters expression of cytokine and tight junction proteins, and activates mitogen-activated protein kinases in pigs[J].JAnimSci, 2013, 91(3): 1094-1101.