徐珍霞 鄧乾春 董緒燕 楊陳 魏芳 陳洪 黃鳳洪 呂昕
摘?要:亞麻籽蛋白(flaxseed protein isolate,F(xiàn)PI)作為植物來源的優(yōu)質(zhì)蛋白,具有良好的乳化能力。本研究采用堿溶酸沉法提取得到蛋白質(zhì)含量為90.8%的亞麻籽蛋白,分析不同超聲乳化條件(40%功率,超聲有效時間2、6、12、18、24、30 min)對含有大豆油的兩種不同濃度(0.5%、1.0%,w/w)的亞麻籽蛋白穩(wěn)定乳液的理化性質(zhì)及流變性能的影響,發(fā)現(xiàn)在超聲乳化30 min后乳液具有較小液滴尺寸,乳液的絕對Zeta(ζ)-電位值最高,顯示出最佳的粘彈性。同時,相比低濃度蛋白乳液,高濃度蛋白穩(wěn)定乳液顯示出良好的液滴尺寸分布特征和更好的穩(wěn)定性。結(jié)果表明,超聲乳化處理30 min可明顯提高乳液的穩(wěn)定性及凝膠性。
關(guān)鍵詞:超聲;亞麻籽蛋白;乳液;理化性質(zhì)
乳液是兩種不相混溶的液相的非均相混合物,包括水包油(O / W)、油包水(W / O)或多重乳液(O / W / O或W / O / W)三種類型[1],廣泛應(yīng)用于制藥[2]、化妝品工業(yè)[3]、農(nóng)業(yè)[4]和食品行業(yè)[5]中。作為一種熱力學(xué)穩(wěn)定體系,O / W乳液可以改善油溶性物質(zhì)的水溶性,促進(jìn)油脂的消化吸收,保護(hù)功能性物質(zhì)的生物活性,并保證物質(zhì)的儲藏穩(wěn)定性等[6]。目前,制備O / W乳液的研究方法之一是超聲乳化技術(shù),其主要是通過聲空化現(xiàn)象,增強生物聚合物的功能特性,產(chǎn)生穩(wěn)定的乳液[7-8]。Taha等[9]通過高強度超聲處理制備出大豆分離蛋白穩(wěn)定的乳液,證實超聲是一種有用的乳化技術(shù)。同樣,Yao等[10]發(fā)現(xiàn),超聲處理可有效提高肌原纖維蛋白-黃原膠乳液的穩(wěn)定性,但未改變該復(fù)合物的官能團(tuán)。蛋白質(zhì)因其兩親性而適用作乳化劑,有利于乳液的形成[11]。其中,F(xiàn)PI不僅具有與大豆蛋白相當(dāng)?shù)陌被嶙V和營養(yǎng)價值,而且具有良好的乳化活性、熱穩(wěn)定性及高持油性等功能特性,其濃縮物具有高表面電荷,更利于形成穩(wěn)定乳液體系[12-13]。Pham等[14]發(fā)現(xiàn),與亞麻籽蛋白-酚類絡(luò)合物穩(wěn)定的乳液相比,具有高表面電荷密度的FPI穩(wěn)定的乳液顯示出更高的物理穩(wěn)定性,說明FPI具有作為天然乳化劑的潛力。本研究以大豆油作為油相,通過超聲乳化技術(shù)制備FPI穩(wěn)定的O / W乳液,研究不同超聲處理時間及兩種FPI濃度對乳液理化性質(zhì)的影響,并對乳液流變性能進(jìn)行分析,為亞麻籽蛋白穩(wěn)定乳液應(yīng)用于食品及其他工業(yè)提供技術(shù)支持。
1?材料與方法
1.1?材料與儀器
1.1.1?材料?亞麻仁,大同市福瑞康鑫科技有限責(zé)任公司;大豆油,購自當(dāng)?shù)爻?尼羅紅染料,上海源葉生物科技有限公司;正己烷、乙醇、鹽酸、氫氧化鈉等均為分析純,國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。
1.1.2?儀器?GAMMA 1-16 LSC冷凍干燥機,德國Martin Christ公司;Kjeltec TM 2300全自動凱氏定氮儀,德國福斯公司;T25高速剪切機,德國IKA公司;Nano DeBEE實驗型超高壓均質(zhì)機,美國DeBEE國際有限公司;JY92-ⅡDN超聲波細(xì)胞粉碎機,寧波新芝生物科技股份有限公司;Mastersizer 2000粒度分析儀,英國馬爾文儀器有限公司;Zetasizer Nano ZS納米粒度及Zeta電位分析儀,英國馬爾文儀器有限公司;Nikon A1共聚焦激光掃描顯微鏡,日本尼康公司;DHR-2流變儀;美國TA儀器有限公司。
1.2?方法
1.2.1?亞麻籽蛋白的提取與組分分析?以脫殼并經(jīng)粉碎的亞麻籽仁為原料,將其與蒸餾水以1∶25的質(zhì)量比混合溶解,用1mol/L NaOH調(diào)節(jié)pH為9.5,在60℃下水浴攪拌60 min后,以4 000 r/min離心30 min,得到的上清液用1mol/L HCl調(diào)節(jié)其pH為4.4,然后以4 500 r/min的轉(zhuǎn)速離心1 h,棄去上清液,對得到的沉淀進(jìn)行冷凍干燥并經(jīng)研磨粉碎,即可得到FPI,儲存于4℃?zhèn)溆?。之后,采用凱氏定氮法測定所得FPI的蛋白含量(%N×6.25)。
1.2.2?乳液的制備?將蛋白質(zhì)含量為90.8%的FPI粉末分散在Tris緩沖液(0.1mol/L pH 8.4)中,在室溫下以500 r/min的轉(zhuǎn)速攪拌16 h,并在40℃攪拌1 h以溶解蛋白質(zhì),制得FPI儲備溶液(0.5%或1%,w/w)。將一定質(zhì)量的大豆油加入到FPI溶液中(w/w=1∶10),乳液分兩步制備。首先,使用磁力攪拌器在環(huán)境溫度(25℃)下制備預(yù)粗乳液(2 500 r/min,30 min)。其次,將預(yù)粗乳液用高速剪切機在10 000 r/min下預(yù)均化2 min。再使用超聲細(xì)胞破碎儀制備乳液,將40 mL粗乳液于超聲幅度40%,脈沖持續(xù)時間為導(dǎo)通時間2 s和關(guān)斷時間2 s的條件下,將樣品超聲處理2、6、12、18、24、30 min(其為有效處理時間,省略脈沖時間)制備乳液。同時,通過高壓均質(zhì)機將其在10 000 Psi的壓力水平下均質(zhì)以制備對照樣品。
1.2.3?粒徑分析?在制備乳液后立即使用Mastersizer 2000納米粒度儀設(shè)備測定乳液的粒徑。泵速和遮蔽率分別設(shè)定為2 000 r/min和10%~15%。其中,分散介質(zhì)的折射率為1.330,大豆油的折射率為1.472。乳液的粒度用粒度分布(PSD)、體積平均粒徑(d-4,3)和表面平均粒徑(d-3,2)表示。
1.2.4?Zeta(ζ)電位測量?使用Milli-Q水將乳液稀釋100倍,然后使用DTS-7010電位槽,在25℃通過Malvern Zetasizer Nano ZS(ZEN 3600)分析儀測量乳液的ζ-電位值。
1.2.5?乳液穩(wěn)定性?將玻璃管中的新鮮乳液(20 mL)放置在室溫黑暗環(huán)境中,在1、7、14d后觀察乳液是否有分層或絮凝現(xiàn)象產(chǎn)生。
1.2.6?共聚焦激光掃描顯微鏡(CLSM)?使用尼康A(chǔ)1激光共聚焦顯微鏡觀察新鮮乳液的形態(tài)以獲得CLSM圖像。使用尼羅紅(以0.1% w/v的濃度溶解于乙醇中)用于油相染色,將40 μL上述染料加入到2 mL乳液中混合均勻后進(jìn)行微觀結(jié)構(gòu)觀察。激發(fā)波長為 488~530 nm,發(fā)射波長在575~580 nm之間。
1.2.7?流變測量
(1)應(yīng)力掃描:使用具有鋁平行板(直徑40 mm、間隙1 mm)的DHR-2流變儀進(jìn)行流變學(xué)測量。通過在1 HZ下進(jìn)行的應(yīng)變掃描測試,確定每個樣品的線性粘彈性區(qū)域。在線性粘彈性區(qū)域內(nèi)測量樣品的粘彈性(儲能模量G、損耗模量G″)。(2)頻率掃描:頻率掃描測試在25℃下,0.1~100 rad/s的角頻率范圍內(nèi)進(jìn)行。選擇頻率掃描測試的應(yīng)變幅度為0.05%。(3)剪切速率掃描:穩(wěn)定剪切試驗在25℃下,1~100/s的剪切速率范圍內(nèi)進(jìn)行,以測量乳液的表觀粘度。
1.3?數(shù)據(jù)處理
試驗處理重復(fù)3次,采用Excel 2007及OriginPro 8.0進(jìn)行數(shù)據(jù)整理和圖表繪制。試驗結(jié)果以平均值±標(biāo)準(zhǔn)偏差表示。
2?結(jié)果與分析
2.1?乳液粒徑測量
圖1顯示,對于兩種濃度蛋白質(zhì)(0.5%、1%,w/w)穩(wěn)定的大豆油乳液,超聲處理能顯著降低液滴尺寸,隨超聲作用時間的延長,乳液的粒徑隨之減小。例如,從附表可以看出,對于蛋白質(zhì)濃度為0.5%的乳液,相比均質(zhì)處理,有效超聲破碎30 min后,大豆油乳液的粒徑從50.12±2.30 μm(H樣品)降低至4.66±0.02 μm(S30樣品),這些結(jié)果可能是由于聲空化氣泡的產(chǎn)生加劇了油滴的破壞過程[15]。另外,蛋白質(zhì)濃度對乳液粒徑有很大影響,對比兩種蛋白濃度的乳液可發(fā)現(xiàn),相比高濃度蛋白形成的乳液,低FPI濃度的乳液具有更大的液滴尺寸,原因可能是高濃度FPI作為乳化劑能更好地形成水包油乳液體系,該結(jié)果與Felix等[16]發(fā)現(xiàn)高濃度鷹嘴豆蛋白穩(wěn)定的乳液具有較小液滴尺寸一致。
2.2?Zeta(ζ)電位分析
Zeta電位的絕對值越大說明分散體系越穩(wěn)定,可根據(jù)它們的值來評估乳液的穩(wěn)定性。如圖2所示,觀察到所有樣品都具有負(fù)ζ電位值,這可能是由于FPI分子在pH值高于其等電點時帶負(fù)電荷。對于蛋白質(zhì)濃度為1%的乳液,超聲處理后ζ-電位的絕對值顯著增加,表明超聲處理可將更多的負(fù)氨基酸暴露于FPI分子表面,乳液表面攜帶更多的負(fù)電荷,液滴之間的排斥力增加,乳液液滴的粒徑相對更小,與粒徑分析結(jié)果一致。而對于FPI濃度為0.5%的乳液,超聲處理后乳液的ζ-電位絕值相差不大。而且,在同樣處理條件下,蛋白質(zhì)濃度為1%的乳液的ζ-電位值高于FPI濃度為0.5%的乳液,說明高濃度蛋白制備的乳液穩(wěn)定性更好。
2.3?乳液穩(wěn)定性
放置不同時間后乳液的表觀圖像表明,乳液主要是發(fā)生了乳化作用從而產(chǎn)生分層現(xiàn)象,而乳化是由于重力分離。可以觀察到超聲處理的樣品較均質(zhì)化樣品穩(wěn)定性更好,表明超聲產(chǎn)生更穩(wěn)定的乳液。隨著超聲時間的增加,F(xiàn)PI乳液的穩(wěn)定性增加。原因可能有兩點:一是較長的超聲作用可以顯著降低油滴的大小,提高蛋白質(zhì)的溶解度,從而促進(jìn)FPI分子向油/水界面的運動;二是超聲可使蛋白質(zhì)展開并將疏水基團(tuán)暴露在表面,從而促進(jìn)油膜上FPI水界面的形成,形成穩(wěn)定的水包油體系[17]。
2.4?共聚焦激光掃描顯微鏡(CLSM)
不同濃度蛋白質(zhì)穩(wěn)定的乳液經(jīng)均質(zhì)和有效超聲處理2、12、30 min后的共聚焦激光顯微照片表明,大豆油用尼羅紅染色后于激發(fā)/發(fā)射波長=488~530/575~580 nm處進(jìn)行形態(tài)觀察。以蛋白質(zhì)濃度為1%的乳液為例,與均質(zhì)相比,超聲處理乳液顯示出更小的粒徑和更均勻的液滴,說明超聲處理能降低乳液粒徑并提高其分散性。在兩種蛋白質(zhì)濃度下,低濃度蛋白質(zhì)穩(wěn)定乳液顯示出更大的液滴尺寸并顯示出小規(guī)模的絮凝,說明高濃度蛋白有利于單分散乳液的形成。
2.5?流變
2.5.1?應(yīng)力掃描?以FPI濃度為1%的大豆油乳液為代表,進(jìn)行流變測量。圖3顯示了經(jīng)均質(zhì)處理和超聲30 min處理乳液在固定頻率(1Hz)下的儲能模量(G)和損耗模量(G″)的應(yīng)變依賴性。對于經(jīng)均質(zhì)處理的樣品,G在低應(yīng)變率(0.01%~5%,稱為線性粘彈性區(qū)域)下大于G″,表明樣品的彈性(固體狀)行為。然而,當(dāng)應(yīng)變速率增加到足夠高的水平(> 5%)時,G″變得大于G,從而揭示其中的粘性(液體狀)行為[18]。而對于經(jīng)超聲30 min的樣品,G和G″在低應(yīng)變率下幾乎一致,當(dāng)應(yīng)變增加到足夠高(> 5%)時,G″變得大于G,表現(xiàn)流體特征,為粘彈性液體。
2.5.2?頻率掃描?頻率掃描測試在25℃下0.1~100 rad/s的角頻率范圍內(nèi)進(jìn)行,選擇頻率掃描測試的應(yīng)變幅度為0.05%。圖4表明,對于經(jīng)均質(zhì)處理的樣品,隨著頻率的增加,模量呈現(xiàn)出增加的趨勢,G″在低頻率范圍內(nèi)大于G,揭示其粘性行為;當(dāng)頻率> 11 rad/s時,G變得大于G″,從而揭示其彈性行為。而對于經(jīng)超聲處理的樣品,隨著頻率的增加,模量呈現(xiàn)出平緩增加的趨勢,而后當(dāng)頻率達(dá)到5 rad/s時G=G″,之后G和G″均快速增加,且觀察到在掃描頻率范圍內(nèi)G大于G″,
表明在該頻率范圍內(nèi)彈性行為是顯著地,乳液體現(xiàn)出了典型的弱凝膠特性,顯示出了樣品的頻率依賴性,而乳液的粘彈性響應(yīng)通??膳c凝膠狀結(jié)構(gòu)相關(guān)[19],說明該乳液能夠形成相當(dāng)強的小液滴彈性凝膠網(wǎng)絡(luò)。
2.5.3?剪切速率?剪切速率測試在1~100/s的剪切速率范圍內(nèi)進(jìn)行,以測量乳液的表觀粘度。從圖5可以看出,經(jīng)均質(zhì)處理的乳液樣品,在剪切速率1~10/s的范圍內(nèi),其粘度保持不變,隨后粘度呈現(xiàn)先增加后降低的趨勢;經(jīng)超聲處理的所有樣品的表觀粘度值隨著剪切速率的增加而降低,表明這些乳液樣品本質(zhì)上是剪切稀化的,為剪切變稀流體(假塑性流體)[20]。表觀粘度與剪切速率曲線表明,每種剪切速率下表觀粘度的大小隨著超聲時間的增加而增加,表明超聲時間越長乳液的凝膠性越強。但超聲處理30 min時乳液的整體粘度有所降低,原因可能是超聲強度太大破壞了乳液的結(jié)構(gòu)。
3?結(jié)論
采用超聲乳化技術(shù)制備FPI穩(wěn)定的O/W乳液,發(fā)現(xiàn)超聲30 min后,1%FPI穩(wěn)定乳液液滴分散更均一,粒徑尺寸低至6.14 μm,乳液穩(wěn)定性最好,顯示出最高的粘彈性和凝膠特性。通過比較蛋白濃度為0.5%和1.0%的乳液理化性質(zhì),發(fā)現(xiàn)高蛋白濃度有利于形成均一穩(wěn)定的乳液體系。
參考文獻(xiàn)
[1]Reddy S R,F(xiàn)ogler H S.Emulsion stability of acoustically formed emulsions[J].The Journal of Physical Chemistry,1980,84(12):1570-1575.
[2]Sivakumar M,et al.Cavitation technology -?A greener processing technique for the generation of pharmaceutical nanoemulsions[J].Ultrasonics Sonochemistry,2014,21(6):2069-2083.
[3]Sonnevilleaubrun O,et al.Nanoemulsions:a new vehicle for skincare products[J].Advances in Colloid and Interface Science,2004(108):145-149.
[4]Zheng L,et al.Preparation and characterization of water-in-oil emulsions of isoprothiolane[J].Colloids and Surfaces A:Physicochemical and Engineering Aspects,2018(168):399-410.
[5]Perugini L,Cinelli G,Cofelice M,et al.Effect of the coexistence of sodium caseinate and Tween 20 as stabilizers of food emulsions at acidic pH[J].Colloids and Surfaces B:Biointerfaces,2018(68):163-168.
[6]李季楠,吳艷,胡浩,等.食品納米乳液的研究進(jìn)展[J].食品與機械,2019(2):217-225.
[7]Perdih T S,et al.Revision of the mechanisms behind oil-water (O/W)emulsion preparation by ultrasound and cavitation[J].Ultrasonics Sonochemistry,2019(51):298-304.
[8]Kaltsa O,Michon C,Yanniotis S,et al.Ultrasonic energy input influence οn the production of sub-micron o/w emulsions containing whey protein and common stabilizers[J].Ultrasonics Sonochemistry,2013,20(3):881-891.
[9]Taha A,Hu T,Zhang Z,et al.Effect of different oils and ultrasound emulsification conditions on the physicochemical properties of emulsions stabilized by soy protein isolate[J].Ultrasonics Sonochemistry,2018(49):283-293.
[10]Xiong Y,Q,Miao S,et al.Effect of ultrasound on physicochemical properties of emulsion stabilized by fish myofibrillar protein and xanthan gum[J].Innovative Food Science & Emerging Technologies,2019(54):225-234.
[11]Mcclements D J.Protein-stabilized emulsions[J].Current Opinion in Colloid and Interface Science,2004,9(5):305-313.
[12]Kuhn K R,et al.Assessing the potential of flaxseed protein as an emulsifier combined with whey protein isolate[J].Food Research International,2014(58):89-97.
[13]Pham LB,Wang B,Zisu B,et al.Covalent modification of flaxseed protein isolate by phenolic compounds and the structure and functional properties of the adducts[J].Food Chemistry,2019(293):463-471.
[14]Pham L B,Wang B,Zisu B,et al.Complexation between flaxseed protein isolate and phenolic compounds:effects on interfacial,emulsifying and antioxidant properties of emulsions[J].Food Hydrocolloids,2019(94):20-29.
[15]Vélez-Erazo E M,et al.Mono and double-layer emulsions of chia oil produced with ultrasound mediation[J].Food and Bioproducts Processing,2018(112):108-118.
[16]Felix M,Isurralde N,Romero A,et al.Influence of pH value on microstructure of oil-in-water emulsions stabilized by chickpea protein flour[J].Food Science and Technology International,2019,25(7):555-563.
[17]Amine C,Dreher J,Helgason T,et al.Investigation of emulsifying properties and emulsion stability of plant and milk proteins using interfacial tension and interfacial elasticity[J].Food Hydrocolloids,2014(39):180-186.
[18]Su J,Wang X,Li W,et al.Enhancing the viability of lactobacillus plantarum as probiotics through encapsulation with high internal phase emulsions stabilized with whey protein isolate microgels[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry,2018,66(46):12335-12343.
[19]Khalesi H,Emadzadeh B,Kadkhodaee R,et al.Effect of Persian gum on whey protein concentrate cold-set emulsion gel:Structure and rheology study[J].International Journal of Biological Macromolecules,2019(125):17-26.
[20]Chen C,et al.Effect of flaxseed gum on the rheological properties of peanut protein isolate dispersions and gels[J].Lwt-Food Science and Technology,2016(74):528-533.
(責(zé)任編輯?唐建敏)