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      基于理性設(shè)計提高產(chǎn)微球莖菌AG1瓊膠酶的熱穩(wěn)定性

      2020-01-02 06:06:02郭玉淅姜澤東肖安風(fēng)朱艷冰
      中國食品學(xué)報 2019年12期
      關(guān)鍵詞:瓊脂糖熱穩(wěn)定性氫鍵

      郭玉淅 高 賀 倪 輝 ,2,3,4 姜澤東 ,2,3,4 肖安風(fēng) ,2,3,4 朱艷冰 ,2,3,4*

      (1 集美大學(xué)食品與生物工程學(xué)院 福建廈門 361021

      2 福建省食品微生物與酶工程重點實驗室 福建廈門 361021

      3 廈門市食品與生物工程技術(shù)研究中心 福建廈門 361021

      4 廈門市南方海洋研究中心經(jīng)濟(jì)海藻資源化利用與深加工重點實驗室 福建廈門 361021)

      瓊膠又稱瓊脂,是江蘺、紫菜和石花菜等紅藻的細(xì)胞壁的親水性多糖,由瓊脂糖和瓊脂膠組成[1]。瓊脂糖是一種由D-半乳糖和3,6-內(nèi)醚-α-L-半乳糖經(jīng) α(1→3)和 β(1→4)糖苷鍵交替連接而成的鏈狀多糖,是形成凝膠的主要組分。瓊脂膠是一種非凝膠組分,具有與瓊脂糖類似的多糖鏈狀結(jié)構(gòu),含有多種取代基,如硫酸酯、丙酮酸乙縮醛、甲基等。瓊膠酶能催化水解瓊脂糖分子內(nèi)的糖苷鍵,產(chǎn)生瓊膠寡糖?;谒呋擒真I的類型差異,瓊膠酶分為兩大類:α-瓊膠酶(E.C.3.2.1.158)和β-瓊膠酶(E.C.3.2.1.81),前者作用于瓊脂糖的α-1,3 糖苷鍵,產(chǎn)物是以 3,6-內(nèi)醚-α-L-半乳糖為還原性末端的瓊寡糖;后者作用于瓊脂糖的β-1,4糖苷鍵,產(chǎn)物是以D-半乳糖為還原性末端的新瓊寡糖[2-3]。瓊膠寡糖水溶性好,易于為人體吸收,具有多種生理功能,如抑菌、抗氧化、抗癌、美白、保濕、益生元等[4-7]。瓊膠酶作為一種重要的工具酶,可以制備瓊膠寡糖,用于海藻多糖結(jié)構(gòu)研究,水解瓊脂糖凝膠并從中回收DNA和RNA,以及制備海藻單細(xì)胞和原生質(zhì)體,被廣泛應(yīng)用于食品、制藥和日用化工等領(lǐng)域。

      瓊膠酶主要存在于海洋微生物和一些海洋軟體動物的消化道內(nèi)[8]。瓊脂的熱溶液在43℃以下就能凝固形成凝膠[9]。瓊脂溶液具有較高的黏度,其隨著溫度的降低逐漸增加。研究具有良好熱穩(wěn)定性的瓊膠酶,對于瓊膠的利用具有重要意義。

      在先前的研究中,從產(chǎn)微球莖菌AG1(Microbulbifer sp.AG1)中克隆得到瓊膠酶基因[10],它的GenBank登錄號為KU049031。為獲得熱穩(wěn)定性高的瓊膠酶,本文采用理性設(shè)計方法獲得瓊膠酶突變體。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      1.1.1 菌株 含菌株AG1瓊膠酶基因的重組質(zhì)粒和大腸桿菌(E.coli)BL21由實驗室保存;原核表達(dá)載體pGEX-6P-1為Novagen產(chǎn)品。

      1.1.2 主要試劑 Taq DNA聚合酶、dNTPs、限制性內(nèi)切酶BamHI和XhoI,為TaKaRa公司產(chǎn)品;T4DNA連接酶,F(xiàn)ermentas公司產(chǎn)品;柱式DNA膠回收試劑盒、質(zhì)粒DNA小量純化試劑盒,購買自天根生化科技(北京)有限公司;寡核苷酸引物的合成及核酸序列的測定均由華大基因(上海)股份有限公司完成;Glutathione sepharose 4B,GE Healthcare Life Sciences公司產(chǎn)品;瓊脂糖,購于美國Hydragene公司;其余化學(xué)試劑均為國產(chǎn)分析純產(chǎn)品。

      1.1.3 主要儀器與設(shè)備 ZHWY-2102雙層全溫度恒溫?fù)u床,上海智城分析儀器制造有限公司;Mastercycler gradient PCR儀,德國Eppendorf公司;5810R冷凍離心機(jī),德國Eppendorf公司;UV-5200紫外可見分光光度計,上海元析儀器有限公司;XMTD-8222數(shù)顯恒溫水浴鍋,上海精宏實驗設(shè)備有限公司。

      1.2 方法

      1.2.1 提高產(chǎn)微球莖菌AG1瓊膠酶熱穩(wěn)定性位點的選取 使用PoPMuSiC-2.1在線分析工具[11](http://dezyme.com/)分析菌株AG1瓊膠酶序列,在線計算瓊膠酶每個突變氨基酸的去折疊自由能變化,選擇去折疊自由能顯著減少的氨基酸作為突變位點。經(jīng)分析選擇D136N作為突變位點,設(shè)計擴(kuò)增D136N基因的引物,序列如表1所示。

      表1 突變體D136N的特異性引物Table1 The specific primers for mutant D136N

      1.2.2 突變體D136N基因的獲得 采用重疊延伸PCR獲得突變體基因。分別以P1和P4、P2和P3為引物,以含有瓊膠酶基因的重組質(zhì)粒為模板,進(jìn)行PCR,條件為95℃5 min預(yù)變性;94℃45 s,50℃45 s,72℃60 s,30 個循環(huán);72℃延伸5 min,回收并純化PCR產(chǎn)物。取上述兩輪PCR純化產(chǎn)物,加入引物P1和P2擴(kuò)增全基因片斷。最后回收并純化PCR產(chǎn)物,獲得突變體基因。

      1.2.3 含突變體D136N基因重組質(zhì)粒的構(gòu)建 將突變基因和質(zhì)粒PGEX-6P-1分別進(jìn)行BamHI和XhoI的雙酶切反應(yīng),酶切后的基因片段和表達(dá)載體進(jìn)行連接反應(yīng)后,轉(zhuǎn)化至E.coli BL21感受態(tài)細(xì)胞,將其涂布于含氨芐青霉素的LB固體培養(yǎng)基。37℃過夜培養(yǎng),選取菌落PCR陽性的克隆子,并進(jìn)行測序,確認(rèn)插入序列。

      1.2.4 突變瓊膠酶在大腸桿菌(E.coli)中的誘導(dǎo)表達(dá)與純化 將含有突變體基因的陽性克隆單菌落37℃過夜培養(yǎng),轉(zhuǎn)接培養(yǎng)至OD600為0.8,加入IPTG至終濃度0.05 mmol/L,22℃誘導(dǎo)表達(dá)16 h后,4℃、5 000×g離心 20 min,棄上清,菌體用預(yù)冷的PBS緩沖液 (140 mmol/L NaCl,2.7 mmol/L KCl,10 mmol/L Na2HPO4,1.8 mmol/L KH2PO4,pH 7.3)重懸,在冰浴條件下超聲破菌后,4℃、12 000×g離心20 min,獲得的上清液即粗酶液。參照Glutathione sepharose 4B的使用說明書,采用親和層析純化重組蛋白。蛋白質(zhì)的純度及分子質(zhì)量利用SDS-PAGE分析。利用BCA蛋白定量法進(jìn)行蛋白質(zhì)濃度測定。

      1.2.5 瓊膠酶活力的測定 酶活力測定采用DNS法[12]。取580 μL含 0.3%瓊脂糖的50 mmol/L Tris-HCl緩沖液(pH 7.5),加入 20 μL 瓊膠酶(質(zhì)量濃度為0.5 mg/mL),60℃反應(yīng)30 min后,沸水浴10 min終止反應(yīng)。加入900 μL DNS試劑,混勻后沸水浴10 min,冷卻后加蒸餾水定容至5 mL,于540 nm波長下測定吸光值。瓊膠酶活力定義為,在上述條件下,每分鐘能夠水解底物釋放1 μmoL還原糖(以D-半乳糖計)所需的酶量。

      1.2.6 溫度對瓊膠酶的影響 分別在不同溫度(30,40,50,60,70和 80℃)下檢測酶的活力,并以最高酶活力為100%,研究酶的最適反應(yīng)溫度。將酶分別置于不同溫度(40,50,60和70℃)下分別放置10~60 min后,測定酶的殘余活力,以未經(jīng)處理的酶活力為100%,研究酶的熱穩(wěn)定性。

      1.2.7 pH對瓊膠酶的影響 分別用不同pH緩沖液配置0.3%的瓊脂糖底物溶液,并測定酶的活力,以最高酶活力為100%,研究酶的最適反應(yīng)pH。所用的緩沖液為50 mmol/L C6H8O7-Na2HPO4緩沖液(pH 4.0~7.0),50 mmol/L Tris-HCl緩沖液(pH 7.0~9.0),50 mmol/L 甘氨酸-NaOH 緩沖液(pH 9.0~10.0)。將酶分別置于不同pH的緩沖液中,25℃放置1 h后,測定酶的殘余活力,以未經(jīng)處理的酶活力為100%,研究酶的pH穩(wěn)定性。

      1.2.8 動力學(xué)參數(shù)的測定 分別配制不同濃度的瓊脂糖溶液 (0.1,0.15,0.2,0.3,0.4,0.6和 0.8 mg/mL),測定酶在不同底物濃度下的酶活力。利用Lineweaver-Burk雙倒數(shù)作圖法,計算酶的動力學(xué)參數(shù),包括 Km,Vmax,kcat和 kcat/Km。

      1.2.9 酶的結(jié)構(gòu)分析 利用SWISS-MODEL進(jìn)行瓊脂酶的三維模建,使用PyMOL軟件顯示并分析酶的結(jié)構(gòu)。

      2 結(jié)果

      2.1 溫度對突變體D136N活性及穩(wěn)定性的影響

      在不同溫度下測定酶的活力,結(jié)果(圖1)顯示,突變體D136N與野生型同樣在60℃下表現(xiàn)出最大活力。突變酶在40~70℃的溫度范圍內(nèi)呈現(xiàn)70%以上的相對活力,與野生型相比,突變體D136N在較低溫度下表現(xiàn)出更高的酶活力。

      酶的熱穩(wěn)定性分析結(jié)果見圖2。突變體D136N在40,50和60℃熱處理1 h后還能保持相對穩(wěn)定,能夠保持超過85%的活力。野生型在50和60℃處理1 h,能分別保持約66%和19%的相對酶活力。突變酶與野生型在70℃下溫育10 min都基本失去活力。這些結(jié)果表明,突變體D136N相比野生型瓊膠酶具有更好的熱穩(wěn)定性。

      圖1 突變體D136N和野生型瓊膠酶的最適作用溫度Fig.1 The optimum temperature of the mutant D136N and wild-type agarase

      圖2 溫度對突變體D136N和野生型瓊膠酶熱穩(wěn)定性的影響Fig.2 Effect of temperature on the thermostability of the mutant D136N and wild-type agarase

      2.2 pH對突變體D136N活性及穩(wěn)定性的影響

      突變體D136N與野生型酶的最適反應(yīng)pH均為7.5(圖3a)。突變酶在pH 6.0~9.0之間保持了較高的活力,具有最高活力的60%以上,在pH 4.0和10.0條件下,酶活力基本喪失。pH穩(wěn)定性分析結(jié)果(圖3b)顯示,與野生型酶相似,突變體D136N在pH 6.0~9.0范圍內(nèi)具有良好的穩(wěn)定性,25℃處理1 h后仍能夠保持高于80%的活力,但是在pH 10.0的條件下處理后酶穩(wěn)定性迅速下降。

      圖3 pH對突變體D136N和野生型瓊膠酶的活性(a)和穩(wěn)定性(b)的影響Fig.3 Effect of pH on the activity (a) and thermostability (b) of the mutant D136N and wild-type agarase

      2.3 突變體D136N的動力學(xué)參數(shù)

      以瓊脂糖為底物測定酶的動力學(xué)參數(shù)。結(jié)果如表2所示,與野生型相比,突變體D136N的Km值和kcat值增大,Vmax值略微增加,kcat/Km值降低。說明突變體D136N對瓊脂糖的親和能力下降,催化效率也有所降低。

      表2 野生型和突變體D136N的動力學(xué)參數(shù)Table2 Kinetic parameters for wild-type enzyme and mutant enzyme of D136N

      2.4 瓊膠酶的結(jié)構(gòu)分析

      酶的結(jié)構(gòu)分析顯示,野生型瓊膠酶的Asp136與Asn255形成兩個氫鍵,與Tyr282形成一個氫鍵(圖4a)。突變后的Asn136和Asn255形成3個氫鍵,與Tyr282形成一個氫鍵,還與Ala134形成一個氫鍵(圖4b)。因此突變后的136位氨基酸能夠與周圍氨基酸形成更多的氫鍵。

      圖4 突變位點引起的氫鍵變化Fig.4 Hydrogen bonds changes caused by the mutant site

      3 討論

      蛋白質(zhì)的理性設(shè)計是在對蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)與功能認(rèn)識的基礎(chǔ)上,采用定點突變技術(shù)改變蛋白質(zhì)中的個別氨基酸殘基,使蛋白質(zhì)的性質(zhì)向著既定的方向改變[13-14]。本文基于理性設(shè)計,采用重疊延伸PCR技術(shù),通過將Asp136突變?yōu)锳sn136,獲得熱穩(wěn)定性預(yù)計提高的突變體D136N。

      將突變體D136N進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá)和純化,得到突變瓊膠酶,并對其酶學(xué)性質(zhì)進(jìn)行研究。與野生型酶相比,突變體D136N對瓊脂糖的親和能力下降,催化效率也有所降低。突變酶的最適反應(yīng)溫度和最適反應(yīng)pH與野生型相同。突變體D136N在pH 6.0~9.0范圍內(nèi)穩(wěn)定,在 40,50和 60℃,該突變酶的熱穩(wěn)定性好于野生型酶。這些性質(zhì)提高了該突變酶在工業(yè)應(yīng)用上的價值,使其在實際生產(chǎn)應(yīng)用中具有良好前景。

      蛋白質(zhì)的熱穩(wěn)定性與帶電荷殘基、疏水氨基酸殘基、鹽鍵、氫鍵、疏水相互作用等因素有關(guān)[15-18]。氫鍵是通過氫原子參與成鍵的特殊形式的化學(xué)鍵,是維持蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)的主要作用力之一。Zhu等[19]和Zhou等[20]通過定向進(jìn)化獲得了熱穩(wěn)定性的酶,對于這些酶突變位點的微觀結(jié)構(gòu)分析發(fā)現(xiàn),突變體相較于野生型在突變位點附近都產(chǎn)生了新的氫鍵。本文中,相較于野生型酶,突變體D136N在136位的氨基酸形成的氫鍵增加2個。增加的氫鍵可能更有利于維持產(chǎn)微球莖菌AG1瓊膠酶的結(jié)構(gòu),使其具有更好的熱穩(wěn)定性。

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