• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看

      ?

      多粘菌素B對脂多糖誘導(dǎo)的大鼠肝星狀細胞自噬的影響

      2022-07-11 07:59:38王美嬌徐軍全宋維芳劉曉玲
      中國醫(yī)藥科學(xué) 2022年11期
      關(guān)鍵詞:自噬內(nèi)毒素

      王美嬌 徐軍全 宋維芳 劉曉玲

      [摘要]目的探討Toll-樣受體4(TLR4)信號通路阻斷劑多粘菌素B(PMB)對脂多糖(LPS)誘導(dǎo)的大鼠肝星狀細胞系(HSC-T6)自噬的影響并探討自噬在肝纖維化(HF)中的意義。方法將常規(guī)培養(yǎng)的HSC-T6分為對照組、LPS組、PMB組、LPS+PMB組,各組細胞經(jīng)相應(yīng)處理后,以Westernblot法檢測各組微管相關(guān)蛋白輕鏈II(LC3II)及TLR4表達水平;免疫熒光法檢測各組LC3在細胞內(nèi)的分布情況;ELISA法檢測各組細胞培養(yǎng)上清中層黏蛋白(LN)、透明質(zhì)酸(HA)、III型前膠原蛋白(PCIII)及IV型膠原蛋白(CIV)含量。結(jié)果LPS組HSC-T6中LC3含量、LC3II蛋白表達水平及細胞培養(yǎng)上清中LN、HA、PCIII及CIV含量均高于對照組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);LPS+PMB組HSC-T6細胞中LC3含量、LC3II蛋白表達水平及細胞培養(yǎng)上清中LN、HA、PCIII及CIV含量均低于LPS組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。結(jié)論LPS可能通過活化TLR4信號通路進而促進HSC-T6細胞自噬及纖維化。

      [關(guān)鍵詞]肝星狀細胞;TLR4;自噬;內(nèi)毒素

      [中圖分類號]R363

      [文獻標識碼]A

      [文章編號]2095-0616(2022)11-0035-04

      肝纖維化(hepatic fibrosis,HF)是由各種致肝損傷因素作用引起慢性肝損傷并最終發(fā)展形成肝硬化的必經(jīng)階段[1-2],以細胞外基質(zhì)(exrta cellular matrix,ECM)合成降解失衡導(dǎo)致其過度在肝臟中沉積為顯著病理變化,其中肝星狀細胞(hepatic stellate cells,HSCs)的活化并轉(zhuǎn)化為肌成纖維細胞仍被認為是HF形成過程中ECM的主要來源[3-4]。自噬(autophagy)是在真核生物中普遍存在的一種高度保守的物質(zhì)循環(huán)利用的過程,對于維持細胞內(nèi)穩(wěn)態(tài)具有十分重要的意義[5-6]。近年來,已有越來越多的研究表明細胞自噬在HF的發(fā)生及發(fā)展中具有十分重要的作用[7]。本實驗室先前已有研究表明[8]LPS可以誘導(dǎo)HSC-T6自噬,但其可能并非通過NF-κB通路。Toll樣受體4(Toll-like receptors4,TLR4)作為LPS引起肝臟炎癥反應(yīng)以及最終引起HF等過程中的關(guān)鍵信號通路之一,是否會影響HSC-T6自噬也有待進一步研究。本實驗旨在探討多粘菌素B(polymyxinB,PMB)預(yù)處理對LPS誘導(dǎo)的HSC-T6自噬的影響并探討其可能機制。

      1材料與方法

      1.1實驗材料

      HSC-T6細胞(齊氏生物科技有限公司);高糖DMEM培養(yǎng)基細(武漢博士德生物工程有限公司);胎牛血清(浙江天杭生物科技有限公司);LPS、兔抗微管相關(guān)蛋白輕鏈(microtubule-associated protein light chain,LC3)抗體(SIGAM公司);小鼠抗TLR4抗體(Abcam公司);大鼠層黏蛋白ELISA試劑盒、大鼠透明質(zhì)酸ELISA試劑盒(上海西塘生物科技有限公司);III型前膠原蛋白(PCIII)及IV型膠原蛋白(CIV)檢測試劑盒(南京建成生物工程研究所);PMB(Solarbio 生物科技有限公司)。EonTM型微孔板分光光度計(美國BioTek公司);DM4000BLED型熒光顯微鏡(德國Leica公司);超凈工作臺(上海智誠公司);HF90型細胞培養(yǎng)箱(Heal Force公司);DYY-7C型電泳儀(北京六一機器廠);化學(xué)發(fā)光成像儀(美國Alpha Innotech公司)。

      1.2方法

      1.2.1細胞培養(yǎng)與傳代HSC-T6接種于含10%胎牛血清、1%青鏈霉素的高糖DMEM培養(yǎng)基中,于37°C含5%CO2培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng),每1~2天更換新鮮培養(yǎng)基,待細胞匯合度大于80%時,用含EDTA胰酶消化并傳代。

      1.2.2實驗分組接種于6孔板的HSC-T6分為對照組(不做特殊處理)、LPS組(0.1mg/LLPS處理12h)、PMB組(10mg/LPMB處理12h)及LPS+PMB組(10mg/LPMB預(yù)處理1h后立即給予終濃度為0.1mg/L的LPS處理12h)。各組細胞經(jīng)相應(yīng)處理后提取蛋白、固定或收集培養(yǎng)上清備用。

      1.2.3Westernblot法各組細胞經(jīng)EDTA溶液處理后收集離心并裂解,經(jīng)BCA法測定后調(diào)整蛋白濃度,加入5×loadingbuffer煮沸變性后收集蛋白樣品。每孔30μg總蛋白上樣后經(jīng)電泳、轉(zhuǎn)膜、封閉后分別加入抗LC3(1∶4000)和抗TLR4(1∶500)抗體4°C過夜,TBST洗滌后分別加入HRP標記的羊抗兔(1∶20000)和羊抗小鼠(1∶1000)二抗于37°C恒溫氣浴70min,TBST洗滌后通過加入ECL化學(xué)發(fā)光液,X膠片曝光后通過顯影定影并根據(jù)目的條帶與內(nèi)參β-actin積分光密度比值行半定量分析,重復(fù)三次平行實驗,結(jié)果取平均值。

      1.2.4免疫熒光法HSC-T6接種于無菌載玻片,經(jīng)相應(yīng)處理12h后棄培養(yǎng)基,用4°CPBS洗滌后再用預(yù)冷后的丙酮固定30min,PBS洗滌后經(jīng)免疫熒光封閉液孵育30min,加入抗LC3抗體(1∶100),于4°C孵育冰箱過夜,經(jīng)PBS洗滌后再加入熒光二抗(1∶100)37°C避光孵育1h,經(jīng)PBS洗滌后對細胞核進行DAPI染色,封片處理后于熒光顯微鏡下觀察,重復(fù)三次平行實驗并通過Image-ProPlus分析各組綠通道平均灰度值。

      1.2.5細胞培養(yǎng)上清非膠原蛋白如層黏蛋白(Laminin,LN)、蛋白多糖如透明質(zhì)酸(hyaluronicacid,HA)、PCIII及CIV含量的檢測接種于6孔板的各組HSC-T6經(jīng)相應(yīng)處理12h后收集培養(yǎng)上清,每孔需分別加入標準品或各組待測樣品各100μl,輕輕搖晃使其充分混勻后37°C孵育20min,充分洗滌3~5次并用潔凈濾紙充分印干多余液體;加入一抗工作液和ddH2O各50μl后37°C孵育20min,經(jīng)洗滌后每孔各加酶標抗體工作液100μl,37°C孵育10min;繼續(xù)洗滌后加底物工作液各100μl,37°C孵育10min。洗滌后各加入100μl終止液并輕輕搖晃使其充分混勻,通過酶標儀在波長450nm處測OD值,重復(fù)三次平行實驗,結(jié)果取平均值。

      1.3統(tǒng)計學(xué)處理

      采用SPSS25.0統(tǒng)計學(xué)軟件進行統(tǒng)計分析。計量資料以均數(shù)±標準差(x±s)表示,組間差異采用單因素方差分析(ANOVA),兩兩比較用t檢驗,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

      2結(jié)果

      2.1各組HSC-T6中LC3、LC3II及TLR4含量比較

      免疫熒光結(jié)果顯示LPS組LC3熒光灰度值高于對照組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);LPS+PMB組LC3熒光灰度值低于LPS組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),見圖1。

      Westernblot結(jié)果顯示LPS組LC3II蛋白表達水平高于對照組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);LPS+PMB組LC3II蛋白表達水平低于LPS組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),見圖2。

      PMB組TLR4表達水平低于對照組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);LPS+PMB組TLR4表達水平低于LPS組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),見圖2。

      2.2各組HSC-T6培養(yǎng)上清LN、HA、PCIII及CIV含量比較

      LPS組培養(yǎng)上清LN、HA、PCIII及CIV含量高于對照組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);LPS+PMB組LN、HA、PCIII及CIV含量低于LPS組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),見表1。

      3討論

      我國是各種肝病的高發(fā)地區(qū),在“肝炎-肝纖維化-肝硬化及肝癌”三部曲中,對肝纖維化的防治顯得極為關(guān)鍵。各種急、慢性肝臟疾病多數(shù)伴有內(nèi)毒素血癥,目前已經(jīng)公認腸源性內(nèi)毒素血癥可促進HF的發(fā)生與發(fā)展[9],LPS可通過LPS-LBP-CD14三元復(fù)合物作用于TLR4,由此將胞外的各種信號傳遞到胞內(nèi)[10-11]。TLR4是識別LPS的關(guān)鍵受體之一,TLR4是自噬相關(guān)的先天性免疫的傳感器,且自噬和TLR4介導(dǎo)的免疫反應(yīng)具有共同的信號通路[12-13]。近年來已有大量研究提示TLR4信號通路可促進自噬,Xu等[14]通過研究發(fā)現(xiàn)LPS可誘導(dǎo)巨噬細胞自噬,而抑制TLR4信號通路可引起自噬體數(shù)量顯著減少;Wang等[15]也發(fā)現(xiàn)用LPS刺激人腹膜間皮細胞系后自噬體數(shù)量增加,采用siRNA或用PMB阻斷TLR4信號通路,LPS誘導(dǎo)的自噬被顯著抑制。上述研究均提示TLR4信號通路與自噬密切相關(guān)且TLR4信號通路可促進自噬,但也不乏相反的報道,有研究顯示,TLR信號通路中的Myd88死亡結(jié)構(gòu)域與Beclin1相互作用中具有重要意義,MyD88過表達會抑制自噬[16],TLR反過來也可通過PI3K-AKT軸直接激活mTOR,從而對自噬產(chǎn)生影響。本研究基于HF的發(fā)生發(fā)展機制推測,LPS可能通過TLR4信號通路促進HSC-T6自噬并促進HF。

      本實驗中所用的HSC-T6細胞是由SV40轉(zhuǎn)染SD大鼠HSC而成,具有活化HSC的表型。PMB為多肽類抗生素,具有抗菌和滅活LPS的作用,因此常作為TLR4信號通路阻斷劑[17]。ECM主要由膠原(如PCIII和CIV)、LN、HA三類成分組成,因此常作為臨床上監(jiān)測HF程度的有效指標[18-20]。LC3是自噬的特異性標志物,當自噬發(fā)生時,LC3I被激活,轉(zhuǎn)變成LC3II并附著于自噬體膜上,因此LC3II被作為反應(yīng)自噬水平的有效指標[7],本研究采用LC3II/β-actin的積分光密度比值來衡量自噬水平。本實驗采用PMB預(yù)處理HSC-T6細胞,Westernblot結(jié)果提示PMB可有效阻斷TLR4信號通路,自噬相關(guān)蛋白LC3含量顯著下降,提示阻斷TLR4抑制了LPS誘導(dǎo)的HSC-T6自噬。為進一步探討HSC-T6自噬在肝纖維化中的意義。本研究檢測了HSC-T6培養(yǎng)上清中LN、HA、PCIII及CIV含量,結(jié)果顯示LPS組上述指標含量顯著增加,阻斷TLR4信號通路后其含量下降(P<0.05),提示HSC-T6自噬在肝纖維化中起到改善或保護作用。自噬是一種高度保守的物質(zhì)循環(huán)利用的過程,對于維持細胞內(nèi)穩(wěn)態(tài)具有十分重要的意義,在靜止的HSCs中自噬可能通過激活HSCs并通過降解脂滴為其提供能量,進而促進HF的形成,而對于HSC-T6來說,自噬反而可以作為一種存活機制,通過提高細胞自噬水平維持細胞內(nèi)外穩(wěn)態(tài)平衡,從而達到逆轉(zhuǎn)肝纖維化的目的[21-22]。

      綜上所述,本實驗提示LPS可能通過活化TLR4信號通路進而促進HSC-T6自噬及肝纖維化。但本實驗也存在不足之處,TLR活化后信號通路與自噬關(guān)鍵分子之間的相互作用錯綜復(fù)雜,具體機制仍需進一步研究,更為重要的是本實驗為體外研究,無法準確反映在體內(nèi)的情況,有待于接下來進一步的動物實驗或原代HSC等研究。

      [參考文獻]

      [1] Ezhilarasan D,E Sokal,M Najimi.Hepatic fibrosis: It is time to go with hepatic stellate cell-specific therapeutic targets[J].Hepatobiliary Pancreat Dis Int,2018,17(3): 192-197.

      [2] Haiyin,Zheng,Xiaoying,et al.Pien-Tze-Huang ameliorates hepatic fibrosis via suppressing NF-κB pathway and promoting HSC apoptosis[J].Journal of Ethnopharmacology,2019,244:111856.

      [3] H Kojiro,K Nakamura,JW Kupiec-Weglinski,et al. Therapeutic targets for liver regeneration after acute severe injury: a preclinical overview[J].Expert Opinion on Therapeutic Targets,2020,24(1):13-24.

      [4] Jian-Bin Qiao,Qian-Qian Fan,Cheng-Lu Zhang,et al. Hyperbranched lipoid-based lipid nanoparticles for bidirectional regulation of collagen accumulation in liver fibrosis[J].Journal of Controlled Release,2020,321: 629-640.

      [5] Deretic V.Autophagy in inflammation, infection, andimmunometabolism[J].Immunity,2021,54(3): 437-453.

      [6] Alsousi, AA,O.J. Igwe.Autophagy protects against redox-active trace metal-induced cell death in rabbit synovial fibroblasts through Toll-like receptor 4 activation[J].Exp Cell Res,2019,374(1):19-28.

      [7] Qian H,Chao X,Williams J,et al.Autophagy in liver diseases: A review[J].Molecular Aspects of Medicine, 2021,82:100973.

      [8]王美嬌,徐軍全,王明亮,等.脂多糖促進大鼠肝星狀細胞系HSC-T6細胞自噬[J].基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)與臨床,2017,37(11):1579-1584.

      [9] Fukui H.Gut-liver axis in liver cirrhosis: How to manage leaky gut and endotoxemia[J].World Journal of Hepatology,2015,7(3):425-442.

      [10] Seifert L,Deutsch M,Alothman S,et al.Dectin-1 Regulates Hepatic Fibrosis and Hepatocarcinogenesis by Suppressing TLR4 Signaling Pathways[J].Cell Rep, 2015,13(9):1909-1921.

      [11]楊坤,田珍珍,王淑華,等.LPS-TLR4信號通路在慢性酒精攝入大鼠模型肝纖維化發(fā)生中的作用及其機制[J].吉林大學(xué)學(xué)報(醫(yī)學(xué)版),2015,41(4):751-755.

      [12] Xu Y,Liu X,Gong X,et al.Signaling pathway of autophagy associated with innate immunity[J]. Autophagy,2008,4(1):110-112.

      [13] Miao J,Benomar Y,Al Rifai Sarah,et al.Resistin inhibits neuronal autophagy through Toll-like receptor 4[J].J Endocrinol,2018,238(1):77-89.

      [14] Xu Y,Jagannath C,Liu X,et al.Toll-like Receptor 4 Is a Sensor for Autophagy Associated with Innate Immunity[J].Immunity,2007,27(1):135-144.

      [15] Wang J,F(xiàn)eng X,Zeng Y,et al.Lipopolysaccharide (LPS)-induced autophagy is involved in the restriction of Escherichia coli in peritoneal mesothelial cells[J].BMC Microbiol,2013,13(1):1-16.

      [16] Shi CS,Kehrl JH.MyD88 and Trif Target Beclin 1 to Trigger Autophagy in Macrophages[J].Journal of Biological Chemistry,2008,283(48):33175-33182.

      [17] Guo YB,Chen LP,Cao HW,et al.Polymyxin B antagonizing biological activity of lipopolysaccharide[J]. Chin J Traumatol,2007,10(3):180-183.

      [18]冼觀秀,張家明,陳聰,等.乙型肝炎肝硬化患者自身抗體檢測及與生化指標和肝纖維化指數(shù)的關(guān)系[J].中國醫(yī)藥科學(xué),2020,10(21):173-175,183.

      [19]余思邈,金亮,朱云,等.中藥軟肝方改善乙型肝炎肝硬化肝纖維化的臨床療效觀察[J].中國中西醫(yī)結(jié)合消化雜志,2019,27(5):330-332.

      [20]林魯飛,王華.復(fù)方甘草酸苷片聯(lián)合雙歧桿菌三聯(lián)活菌膠囊治療兒童非酒精性脂肪性肝病的療效和安全性[J].兒科藥學(xué)雜志,2019,25(12):20-23.

      [21]陳穎,付念,陳學(xué)鳳,等.自噬在肝纖維化中作用的研究進展[J].廣東醫(yī)學(xué),2015,36(20):3244-3246.

      [22] Seki E,Brenner DA.Recent advancement of molecular mechanisms of liver fibrosis[J].Journal of Hepato-Biliary- Pancreatic Sciences,2015,22(7):512-518.

      (收稿日期:2021-12-20)

      猜你喜歡
      自噬內(nèi)毒素
      內(nèi)毒素對規(guī)?;i場仔豬腹瀉的危害
      消退素E1對內(nèi)毒素血癥心肌損傷的保護作用及機制研究
      自噬調(diào)控腎臟衰老的分子機制及中藥的干預(yù)作用
      自噬調(diào)控腎臟衰老的分子機制及中藥的干預(yù)作用
      自噬在糖尿病腎病發(fā)病機制中的作用
      基于“肝脾理論”探討腸源性內(nèi)毒素血癥致繼發(fā)性肝損傷
      亞精胺誘導(dǎo)自噬在衰老相關(guān)疾病中的作用
      科技視界(2016年11期)2016-05-23 08:10:09
      內(nèi)毒素耐受形成過程中TLRs信號通路的作用及其調(diào)控
      自噬在不同強度運動影響關(guān)節(jié)軟骨細胞功能中的作用
      硫辛酸對內(nèi)毒素誘導(dǎo)的SIRS大鼠心肌損傷的保護作用
      乌鲁木齐市| 潮州市| 迁西县| 和平区| 陇南市| 民权县| 大竹县| 天柱县| 阳谷县| 克拉玛依市| 庆阳市| 新宁县| 通城县| 秭归县| 诏安县| 惠来县| 景宁| 镇赉县| 丘北县| 温泉县| 井冈山市| 河津市| 华坪县| 芜湖市| 陆丰市| 颍上县| 天水市| 洪洞县| 新田县| 九龙坡区| 德化县| 衡阳市| 柏乡县| 巴林右旗| 寿阳县| 黔东| 双辽市| 晋中市| 油尖旺区| 景德镇市| 揭阳市|