黎巷汝,陳丹妮,洪永聰*
(1.福建農(nóng)林大學(xué)園藝學(xué)院,福建 福州 350002;2.武夷學(xué)院茶與食品學(xué)院,福建 武夷山 354300)
茶樹是我國廣泛種植的經(jīng)濟(jì)作物之一,2020年其種植面積達(dá)到316.51萬公頃[1]。茶葉的產(chǎn)量和品質(zhì)與品種特性、種植管理緊密聯(lián)系,如何有效利用土壤養(yǎng)分,提高茶樹的養(yǎng)分吸收效率是我國茶葉種植上亟待解決的問題[2]。植物主要通過根部吸收養(yǎng)分來滿足自身生長生理需求,其根系-土壤-微生物形成了復(fù)雜的生態(tài)調(diào)控網(wǎng)絡(luò)。土壤和植物的健康狀況以及土壤養(yǎng)分庫的豐富程度與土壤微生物群落的結(jié)構(gòu)和功能密切相關(guān)[3-7],因此了解我國茶樹根際微生物群落的生態(tài)特征茶園的養(yǎng)分管理有一定指導(dǎo)意義。
目前,已有諸多研究報(bào)道了茶樹根際細(xì)菌群落的種類和作用。茶樹根際存在多種有益菌,如:圓褐固氮菌(Azotobacter chroococcum)、環(huán)狀芽孢桿菌(Bacillus circulans)、固氮梭菌等具有固氮作用[8];纖維素分解細(xì)菌、氨化細(xì)菌、芽孢桿菌(Baciluss)、假單胞菌(Pseudomonsadaceae)利于有機(jī)態(tài)養(yǎng)分的轉(zhuǎn)化,提升土壤肥力[9-10];樹根際中特定微生物菌株也具有提高茶樹的耐脅迫性[11]及防治根腐病的能力[7],從而促進(jìn)茶樹生長和提高生產(chǎn)力。此外,不同技術(shù)手段獲得的茶樹根際微生物菌群有所差異。利用培養(yǎng)法[12-13]獲得的優(yōu)勢菌主要為芽孢桿菌(Baciluss)和假單孢菌(Pseudomonas)。而采用高通量測序技術(shù)[14]研究發(fā)現(xiàn)茶樹根際的優(yōu)勢細(xì)菌類群為變形菌門(Proteobacteria)、擬桿菌(Bacteroidetes)、酸桿菌(Acidobacteria)。這些研究揭示了茶樹群落的共有特征,但目前有關(guān)不同茶樹品種間的微生物群落特征研究卻較少。其中多數(shù)研究[15-16]基于平板培養(yǎng)的方法尋找不同品種的群落差異性,不同茶樹品種間微生物群落存在差異,優(yōu)良的茶樹品種具有更高的群落多樣性和豐度,且有益菌群更多。然而土壤中存在大量不可培養(yǎng)的微生物菌落,需要用新一代技術(shù)才能深入了解茶樹的土壤微生物全貌。隨著測序技術(shù)的發(fā)展,Illumina高通量測序技術(shù)已被廣泛運(yùn)用于土壤微生物組的研究中[17],通過擴(kuò)增細(xì)菌的16S rRNA可明晰土壤樣本中的絕大部分菌落。此技術(shù)在茶樹根際微生物領(lǐng)域中的研究主要集中在樹齡[18]、施肥狀況[19]和栽培措施[20],對于不同品種茶樹根際微生物的影響鮮有報(bào)道。顧松松[21]利用16S rRNA技術(shù)測試了5種茶樹的根際微生物,發(fā)現(xiàn)不同茶樹品種土壤微生物多樣性和群落結(jié)構(gòu)存在差異。
本研究對同一種植條件的地塊中10種茶樹品種的土壤微生物群落進(jìn)行16S rRNA高通量測序測序,旨在探討不同茶樹品種土壤微生物群落特征,為茶園管理提供理論基礎(chǔ)。
樣品采集于福建省武夷學(xué)院的茶樹種質(zhì)資源圃(117°99′E,27°73′N),該資源圃于2015年建成,為平地茶園。每一行栽種1個(gè)茶樹品種,每行長度為20~30 m,大行距2 m,雙行單株種植。所有茶樹為同一時(shí)間移栽,樹齡7年。茶園管理措施一致,于每年10月下旬施復(fù)合肥,3、6、9月進(jìn)行人工除草。
2021年5月,在該種質(zhì)資源圃內(nèi),選取10個(gè)茶樹品種:尖波黃(JBH)、白雞冠(BJG)、大紅袍(DHP)、蜀永1號(hào)(SY1)、白葉1號(hào)(BY1)、中茶302(ZC302)、政和大白茶(ZHDBC)、福安大白茶(FADBC)、佛手(FS)和毛蟹(MX)為調(diào)查對象,其生物學(xué)特性見表1。分別采集10個(gè)茶樹品種的根區(qū)土壤。具體方法:種植行內(nèi)隨機(jī)選取5株茶樹,去除土壤表面凋落物及雜物,近根處采集深度為0~20 cm的土壤樣本。每5株茶樹根區(qū)土壤混合為一個(gè)樣品,每個(gè)茶樹品種土壤樣品進(jìn)行3次生物學(xué)重復(fù)。每個(gè)樣品用無菌自封袋封裝,放入冰盒運(yùn)送回實(shí)驗(yàn)室,-80℃冰箱儲(chǔ)存,直至檢測。
表1 10個(gè)茶樹品種的生物學(xué)特性Table 1 Biological characteristics of 10 tea cultivars
(接表1)
使用FastDNA Spin試劑盒(MP Biomedicals,Solon,USA)提取土壤樣品中的總DNA,在1%瓊脂糖凝膠上檢測DNA的完整性,使用NanoDrop 2000紫外分光光度計(jì)(Thermo Scientific,MA,USA)測量DNA質(zhì)量和濃度。采用Illumina測序技術(shù),測序由凌恩生物科技有限公司完成,使用引物為341F(5’-CCTAYGGGRBGCASCAG-3’) 和 806R(5’-GGACTACHVGGGTWTCAAT-3’),擴(kuò)增 16S rRNA的V3-V4區(qū)。
QIIME 軟件包分析原始的 Illumina HiSeq測序數(shù)據(jù),去除低20的質(zhì)量分?jǐn)?shù)和低于300 bp的序列長度,獲得有效序列。并生成OTU表,從該表獲得Resample OTU表以標(biāo)準(zhǔn)化總序列。使用Usearch的唯一序列來定義操作分類單元(OTUs),將相似性為97%的序列分類為同一OTU。使用SILVA數(shù)據(jù)庫和QIIME中實(shí)現(xiàn)的RDP分類器進(jìn)行物種分類注釋?;跍y序深度最低數(shù)據(jù)量對OTU表進(jìn)行抽平,利用R和Mothur程序進(jìn)行微生物種群多樣性分析。使用EXCEL進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì),R和R中的Vegan、ggplot2程序包進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析和圖表繪制。
對10個(gè)茶樹品種根際土壤樣品進(jìn)行高通量測序,共獲得512504條有效序列和3566個(gè)OTU分類單元。從每個(gè)樣本中抽取一定數(shù)量OTU序列繪制稀疏曲線(圖1A)和物種累計(jì)曲線(圖1B),曲線趨于平緩,表明測序深度和抽樣量足夠,足以反應(yīng)樣品中絕大部分物種的信息,可進(jìn)行下一步分析。
圖1 10個(gè)茶樹品種土壤細(xì)菌測序的稀釋曲線(A)和物種累計(jì)曲線(B)Fig. 1 Bacterial sequencing dilution curve (A) and species accumulation curve (B) on soils planted with 10 tea cultivars
在R中使用Vegan包對OTUs表進(jìn)行抽平,每個(gè)樣本抽取至34350條優(yōu)化序列,進(jìn)行α-多樣性分析。Chao、Shannon指數(shù)反應(yīng)了細(xì)菌群落的豐度和多樣性,結(jié)果如表2所示。Chao指數(shù)代表微生物群落的豐富度,指數(shù)越高群落則物種越豐富。Shannon指數(shù)反映群落多樣性,指數(shù)越高則群落多樣性越多。10個(gè)品種的物種豐度和群落多樣性有明顯差異,其中JBH的Chao和Shannon指數(shù)均為最高,為2644和6.39,具有最高的物種豐度和群落多樣性。而ZC302的物種豐度和多樣性均為最低,為 1964.59和 5.73。
表2 10個(gè)茶樹品種根際土壤樣品測序結(jié)果各分類單元數(shù)量及Alpha多樣性分析Table 2 Quantity and alpha diversity of bacteria in rhizosphere soils planted with 10 different tea cultivars
為進(jìn)一步了解不同品種的細(xì)菌群落組成,根據(jù)OTU表的注釋結(jié)果,在門、屬水平上進(jìn)行分析。在門分類上(圖2A),10個(gè)茶樹品種的優(yōu)勢微生物種群結(jié)構(gòu)相似,豐度前11位分別為變形菌門(Proteobacteria)、酸桿菌門(Acidobacteriota)、綠彎菌門(Chloroflexi)、放線菌門(Actinobacteriota)、浮霉菌門(Planctomycetota)、擬桿菌門(Bacteroidota)、wps-2門、藍(lán)細(xì)菌門(Cyanobacteria)、芽單胞菌門(Gemmatimonadota)、粘球菌門(Myxococcota)、Armatimonadota門。10個(gè)茶樹品種的組成差異表現(xiàn)在豐富度上,其中ZC302的綠彎菌門(Chloroflexi)的豐度相比最大(30.67%);芽單胞菌門(Gemmatimonadota)的豐度最少(0.14%)。屬分類水平上,各品種群落組成相似(圖2B)。
圖2 10個(gè)茶樹品種細(xì)菌群落在不同分類(A. 門分類水平;B. 屬分類水平)上的相對豐度Fig. 2 Relative abundance of bacterial communities at phylum level (A) and genus level (B) in soils planted with 10 tea cultivars
在有注釋的優(yōu)勢菌屬中,豐度排名前的5個(gè)菌屬分別為酸桿菌屬(Acidobacteriales)、顆粒菌(Granulicella)、羅河桿菌屬(Rhodanobacter)、節(jié)桿菌屬(Arthrobacter)、慢生根瘤菌屬(Bradyrhizobium)。其中酸桿菌屬是JBH、MX、SY1、BY1的主要優(yōu)勢菌屬,ZHDBC的優(yōu)勢菌屬為羅河桿菌屬(10.04%),F(xiàn)S的優(yōu)勢菌屬為JG30-KF-AS9(7.51%)。
為綜合比較不同茶樹品種間的組成相似性和差異性,采用花瓣圖對特有OTU和共有OTU進(jìn)行分析(圖3)。不同品種的共有和特有物種占各自群落的比例不同,10個(gè)品種共有物種為582個(gè),其中ZC302共有OTU比例最多(37.45%),DHP、BJG、BY1、ZHDBC、FADBC、SY1、JBH、MX、FS分別占29.74%、28.20%、28.91%、32.14%、27.86%、29.83%、26.81%、34.77%、30.83%。茶樹的共有核心菌群為變形菌門、酸桿菌門、綠彎菌門、放線菌門。進(jìn)一步挖掘不同品種間的特有菌群,對各品種的特有OTU進(jìn)行屬水平上的分析。在有注釋的屬類中,DHP的優(yōu)勢特有菌屬為Microcoleus SAG 1449-1a和Cylindrospermum PCC-7417,JBH的特有菌屬為Candidatus Solibacter。
圖3 10個(gè)茶樹品種OTUs花瓣圖分析Fig. 3 Analysis of petal map of OTUs of 10 tea cultivars
為研究不同茶樹品種細(xì)菌群落的結(jié)構(gòu)差異,基于屬分類水平(豐度前30)的Bray-Crutis距離,使用類平均法(average)對10個(gè)品種的物種組成進(jìn)行層級聚類分析(圖4A)。結(jié)果發(fā)現(xiàn),BY1和SY1、ZHDBC和FADBC、DHP和BJG分別聚為一支,細(xì)菌群落組成最相似。ZC302單獨(dú)一支,與其他9個(gè)品種差異較大,9個(gè)品種歸為一個(gè)類群。酸桿菌屬(Acidobacteriales)主要分布于SY1、BY1、JBH、BJG、MX、DHP中。NMDS分析結(jié)果顯示(圖4B),stress<0.2,其模型較可靠地能反映樣本排序的真實(shí)分布。10個(gè)茶樹品種的NMDS樣本排序分布結(jié)果與聚類分析結(jié)果相應(yīng),ZC302與其他樣本距離較遠(yuǎn),仍差距較大。
圖4 基于屬水平分類不同品種根際細(xì)菌的層級聚類分析和NMDS分析Fig. 4 Composition and clustering of dominant bacteria at genus level in soils planted with 10 tea cultivars
本研究在同一地塊、管理相對一致的種質(zhì)資源圃中采集了10個(gè)不同品種茶樹的根區(qū)土壤進(jìn)行Illumina高通量測序,對不同茶樹品種的土壤細(xì)菌群落多樣性進(jìn)行研究。α-多樣性指數(shù)顯示,10個(gè)茶樹品種的多樣性有所差異,JBH的菌群具有最高的多樣性,ZC302的多樣性最低。β-多樣性分析10個(gè)品種間的群落相似性和差異,基于Bray-Crutis距離的層級聚類分析和NMDS分析都顯示,10個(gè)品種根據(jù)菌屬豐度可分為兩個(gè)類群,ZC302與其他品種距離最遠(yuǎn),差異較大;BY1、SY1和MX相似度最高。根際分泌物顯著影響跟土壤微生物的種類和數(shù)量,而植物基因型對根際分泌物的產(chǎn)生有重要影響[22]。同一生境下,遺傳背景相距較大的ZC302的細(xì)菌群落與其他品種差異較大。通過遺傳背景調(diào)查發(fā)現(xiàn),ZC302是以‘格魯吉亞6號(hào)’為母本、‘福鼎大白茶’為父本育成的品種,而其他9個(gè)均為在我國本土生長繁育的品種。ZC302的母系來源于‘格魯吉亞6號(hào)’,這可能是造成其根系土壤細(xì)菌群落與其他9個(gè)品種差異大的主要原因。在另外一個(gè)類群中,DHP和BJG、ZHDBC和FADBC群落相似度最高。DHP和BJG均為武夷山本地品種,ZHDBC和FADBC為均生長于福建北部,起源地相近或相同的兩個(gè)品種具有相似的微生物群落結(jié)構(gòu),這可能與植物的環(huán)境適應(yīng)相關(guān)[22]。
本研究中10個(gè)品種的細(xì)菌群落組成結(jié)構(gòu)相似,其差異主要表現(xiàn)在群落豐度。在較大分類上,茶樹的優(yōu)勢核心菌為變形菌門、酸桿菌門、綠彎菌門、放線菌門等,變形菌門和醋桿菌門占幅較大,與前人研究相似[14-21]。變形菌門、放線菌門、酸桿菌門是植物微生物群落的主要組成部分,只在不同物種中的表現(xiàn)不同豐度。變形菌門中包含了許多與土壤養(yǎng)分轉(zhuǎn)化、光能營養(yǎng)相關(guān)的細(xì)菌種類。在所研究的茶樹品種中,該門類下的羅河桿菌(Rhodanobacter)、慢生根瘤菌(Bradyrhizobium)、醋桿菌(Acidibacter)占據(jù)優(yōu)勢(圖2B),其中羅河桿菌是反硝化菌菌群,慢生根瘤菌具有固氮作用,這兩種菌均與營養(yǎng)轉(zhuǎn)化和吸收相關(guān)[23-24]。在所有品種中酸桿菌屬(Acidobacteriales)和顆粒菌屬(Granulicella)占很大比例,兩者均與植物凋零物的碳降解相關(guān)[25-26],說明茶樹菌群功能偏向營養(yǎng)吸收和轉(zhuǎn)化方面。各品種的特有菌屬占各自總菌群的比例極低,且多為稀有菌群。
在同一生境下,來自不同地區(qū)的茶樹品種根際細(xì)菌群落呈現(xiàn)出一定差異,地理起源及特征相近的品種群落多樣性和豐度相似,茶樹品種對根際細(xì)菌的組成結(jié)構(gòu)和豐度有一定影響,但造成這些差異的原因還需要結(jié)合根系代謝組及基因組等其他信息進(jìn)一步深入研究。