侯彩云,趙靜,劉瑩,王旭,黃昕
(中國農(nóng)業(yè)大學功能乳品教育部北京市共建重點實驗室,北京100083)
乳品真蛋白率的提出及測定
侯彩云,趙靜,劉瑩,王旭,黃昕
(中國農(nóng)業(yè)大學功能乳品教育部北京市共建重點實驗室,北京100083)
利用三氯乙酸-雙縮脲比色法對添加乳清蛋白乳粉的蛋白質(zhì)量分數(shù)進行測定。結(jié)果表明,乳清蛋白的加標回收率在89.2%~99%之間,重現(xiàn)性在0.26%~0.98%之間,表明三氯乙酸-雙縮脲比色法可以較好地檢測出乳中的真蛋白。提出了真蛋白率的概念,并測定出乳粉的真蛋白率范圍在78.06%~89.90%之間;液態(tài)乳的真蛋白率范圍在90.03%~96.25%之間。
三氯乙酸-雙縮脲比色法;凱氏定氮法;蛋白質(zhì)質(zhì)量分數(shù);真蛋白率
蛋白質(zhì)是乳品質(zhì)量優(yōu)劣的重要指標[1]。我國現(xiàn)行國家標準規(guī)定乳制品中蛋白質(zhì)質(zhì)量分數(shù)的測定方法為凱氏定氮法(簡稱K法)[2]。根據(jù)其測定原理,K法的測定值為樣品中粗蛋白的質(zhì)量分數(shù)[3]。正常情況下,乳粉中的非蛋白氮質(zhì)量分數(shù)在總氮中所占比例是基本穩(wěn)定的[4,5]。然而,一旦在樣品中添加了非蛋白含氮物,就會對K法的測定結(jié)果產(chǎn)生影響。K法的這一漏洞曾經(jīng)給一些不法廠商的制假售劣提供了可乘之機。
與粗蛋白相對,真蛋白質(zhì)量分數(shù)可以較好地反映乳的真實營養(yǎng)價值[6]。為此,本研究室提出了一種三氯乙酸-雙縮脲比色法(簡稱T+B法)[7],在此基礎上,提出了真蛋白率的概念,以期找到一種可以較為有效地排除包括尿素、三聚氰胺和水解蛋白在內(nèi)的多種非蛋白含氮物對乳品中蛋白質(zhì)量分數(shù)測定影響的方法,為鑒別非蛋白含氮物的非法添加提供必要的技術(shù)依據(jù)。
12種市購液態(tài)乳;15種市購乳粉。
酪蛋白標準品,牛血清蛋白(Bovine Serum Albumin,BSA)標準品,乳清蛋白(質(zhì)量分數(shù)為60%),雙縮脲試劑,四氯化碳,三氯乙酸,體積分數(shù)為95%乙醇。
雙縮脲試劑:將濃度為10 mol/L氫氧化鉀10 mL和質(zhì)量濃度為250 g/L酒石酸鉀鈉溶液20 mL加到約800 mL蒸餾水中,劇烈攪拌,同時緩慢加入質(zhì)量濃度為40 g/L的硫酸銅溶液30 mL,定容至1 000 mL。
硼酸-指示劑混合液:溴甲酚綠0.5 g,甲基紅0.1 g溶解于體積分數(shù)為95%乙醇中,稀釋至100 mL即為硼酸指示劑混合液。
催化劑:五水合硫酸銅10 g,硫酸鉀100 g,在研缽中研磨,過40目篩。
濃度為0.01 mol/L鹽酸標準溶液,質(zhì)量分數(shù)為2%硼酸,質(zhì)量分數(shù)為35%氫氧化鈉,濃硫酸,亞甲基蘭-甲基紅指示劑。
分析天平,電子天平,752型分光光度計,高速冷凍離心機(GL220G2Ⅱ),超聲波清洗器(KQ1002DB),消煮爐(KXL-1010),定氮儀(KDY-9820)。
1.3.1 現(xiàn)行國標蛋白質(zhì)測定方法
分別精確稱取15種乳粉0.2000 g,編號為1~16,順序加入0.5~0.55 g的催化劑,5 mL的濃硫酸,放在消煮爐上消化;消化完全并待樣品冷卻后,用凱氏定氮儀蒸餾,并用已標定的濃度為0.1 mol/L的鹽酸滴定,計算得到樣品蛋白質(zhì)量分數(shù)。樣品平行測定3次[8]。
分別精確稱取12種液態(tài)乳1.5000 g,編號為1~12,順序加入0.5~0.55 g的催化劑,5 mL的濃硫酸,放在消煮爐上消化;消化完全并待樣品冷卻后,用凱氏定氮儀蒸餾,并用已標定的濃度為0.2 mol/L的鹽酸滴定,計算得到樣品蛋白質(zhì)量分數(shù),記為Pk。樣品平行測定3次[8]。
1.3.2 T+B法測定各種乳的蛋白質(zhì)量分數(shù)
1.3.2.1 標準曲線的繪制
按表1加入酪蛋白標準品和雙縮脲試劑,充分混勻。繪制酪蛋白標準曲線。樣品平行測定3次。
表1 酪蛋白標準曲線的制作
1.3.2.2 樣品蛋白質(zhì)量分數(shù)的測定
精確稱取乳粉0.2000 g,置于50 mL離心管中,加入2 mL水溶解均勻。加入15%三氯乙酸溶液5 mL混勻,靜置10 min,10 000 r/min下離心10 min。棄去上清液,加入體積分數(shù)為95%無水乙醇10 mL混勻,10 000 r/min下離心5 min。棄去上清液,加入四氯化碳2 mL和雙縮脲試劑20 mL,用超聲波清洗器震蕩均勻,使蛋白溶解,靜置顯色10 min,10 000 r/min下離心20 min。以0管調(diào)零,540 nm下測定表1配制的標準溶液的吸光度值。以各管真蛋白濃度為縱坐標,吸光度值為橫坐標,繪制標準曲線。同時測定上述提取蛋白液的吸光度值,并根據(jù)標準曲線的線性回歸方程讀取試液的真蛋白質(zhì)量濃度c。樣品平行測定3次。
精確稱取液態(tài)乳1.5000 g,置于50 mL離心管中。加入質(zhì)量分數(shù)為15%三氯乙酸溶液5 mL混勻,靜置10 min,10 000 r/min下離心10 min。棄去上清液,加入體積分數(shù)為95%無水乙醇10 mL混勻,10 000 r/min下離心5 min。棄去上清液,加入四氯化碳2 mL和雙縮脲試劑20 mL,用超聲波清洗器震蕩均勻,使蛋白溶解,靜置顯色10 min,10 000 r/min下離心20 min。以0管調(diào)零,540 nm下測定表1配制的標準溶液的吸光度值。以各管真蛋白濃度為縱坐標,吸光度值為橫坐標,繪制標準曲線。同時測定上述提取蛋白液的吸光度值,并根據(jù)標準曲線的線性回歸方程讀取試液的真蛋白質(zhì)量濃度c。樣品平行測定3次[7]。
按下式計算乳品試樣的蛋白質(zhì)量分數(shù)P0:
式中:P0為乳品中真蛋白的質(zhì)量分數(shù);c為試液蛋白質(zhì)量濃度;m0為取樣量。
1.3.2.3 乳清蛋白的添加對T+B法測定結(jié)果的影響
精確稱取乳粉0.2000 g 7份,編號為1-7;按照表2所示分別向其中7份添加乳清蛋白,置于50 mL離心管中,加入2 mL水溶解均勻。加入15%三氯乙酸溶液5 mL混勻,靜置10 min,10000 r/min下離心10 min。棄去上清液,加入95%無水乙醇10 mL混勻,10000 r/min下離心5 min。棄去上清液,加入四氯化碳2 mL和雙縮脲試劑20 mL,用超聲波清洗器震蕩均勻,使蛋白溶解,靜置顯色10 min,10 000 r/min下離心20 min。以0管調(diào)零,540 nm下測定表1配制的標準溶液的吸光度值。以各管真蛋白濃度為縱坐標,吸光度值為橫坐標,繪制標準曲線。同時測定上述提取蛋白液的吸光度值,并根據(jù)標準曲線的線性回歸方程讀取試液的真蛋白質(zhì)量濃度c。樣品平行測定3次。按1.3.2.2中的公式計算P0。
表2 乳粉中添加乳清蛋白的配制
1.3.3 乳品真蛋白率的提出與計算
按下式計算三氯乙酸-雙縮脲法(T+B法)和凱氏定氮法所測定乳品蛋白質(zhì)量濃度的比率,記為δP,該值稱為真蛋白率,表示乳品中真實的蛋白質(zhì)量分數(shù)在粗蛋白質(zhì)量分數(shù)中所占的比率。
式中:δP為真蛋白率;P0為真蛋白的質(zhì)量分數(shù);Pk為樣品中粗蛋白的質(zhì)量分數(shù)。
2.1.1 乳清蛋白的添加對T+B法測定乳粉蛋白質(zhì)量分數(shù)的影響
圖1是不同添加量的乳清蛋白對乳粉的蛋白質(zhì)量分數(shù)的影響。可以看出,隨著乳清蛋白添加量的增加,乳粉的蛋白質(zhì)量分數(shù)也相應增加,表明T+B法測定乳粉的蛋白質(zhì)量分數(shù)時,乳清蛋白被三氯乙酸沉淀了,并且乳清蛋白和酪蛋白一起與雙縮脲試劑發(fā)生顯色反應。
圖1 乳粉的蛋白質(zhì)量分數(shù)
2.1.2T+B法測定乳粉蛋白質(zhì)量分數(shù)時乳清蛋白的回收率和重現(xiàn)性
通過加入乳清蛋白進行定性,可以檢測到乳清蛋白的加標回收率在89.2%~99%之間,重現(xiàn)性在0.26%~0.98%之間。說明T+B法測定添加乳清蛋白的乳粉的蛋白質(zhì)量分數(shù)時,乳清蛋白可以被較好的定量檢測出來。
表3和表4為凱氏定氮法和T+B法分別測定的12種液態(tài)乳和15種乳粉的蛋白質(zhì)量分數(shù)。
表3 12種液態(tài)乳的蛋白質(zhì)量分數(shù)%
表4 15種乳粉的蛋白質(zhì)量分數(shù)%
由表3和表4可以看出,凱氏定氮法和T+B法測定的乳粉和液態(tài)乳的蛋白質(zhì)量分數(shù)具有一致性。通過成對t檢驗,|t|<t(0.05,n)(n=12,15),說明T+B法與凱氏定氮法測定乳粉和液態(tài)乳蛋白質(zhì)量分數(shù)時,兩者不存在顯著性的差異。
圖2和圖3分別是液態(tài)乳和乳粉的真蛋白率測定結(jié)果。由圖2可以看出,液態(tài)乳的真蛋白率范圍在90.03%~96.25%之間,表明液態(tài)乳中非蛋白含氮物在粗蛋白中所占的比例并非定值,可能會因各種因素的影響,在一定的范圍內(nèi)有所波動。由圖3可以看出,乳粉的真蛋白率范圍在78.06%~89.90%之間,表明乳粉的真蛋白率普遍低于液態(tài)乳。之所以如此,一方面可能是因為加工工藝的需要,另一方面也可能是存在人為添加非蛋白含氮物的結(jié)果。與粗蛋白相比,真蛋白可以更加直觀地反映乳品的真實營養(yǎng)價值。對于市售乳品而言,真蛋白率應該穩(wěn)定在一定的范圍內(nèi)。如果某種乳品的真蛋白率過低,表明有可能存在人為添加外源含氮物質(zhì)的情況,應通過對其中的乳蛋白甚至氨基酸的構(gòu)成進行進一步分析的方式,以確認其質(zhì)量是否名實相符。
圖2 液態(tài)乳的真蛋白率
圖3 乳粉的真蛋白率
利用T+B法對添加乳清蛋白乳粉的蛋白質(zhì)量分數(shù)進行測定時,乳清蛋白的加標回收率在89.2%~99%之間,重現(xiàn)性在0.26%~0.98%之間,重現(xiàn)性較好,表明T+B法可以較好地檢測出乳中的真蛋白。
凱氏定氮法和T+B法測定乳品的蛋白質(zhì)量分數(shù)具有一致性。提出了真蛋白率的概念,對于不同乳品而言,真蛋白率應穩(wěn)定在一定的范圍內(nèi),如果某種乳品的真蛋白率測定值與其合理的范圍偏差過大,則說明該乳品可能存在人為添加非蛋白含氮物的情況。對所收集樣品的測定,表明乳粉的真蛋白率在78.06%~89.90%之間;液態(tài)乳的真蛋白率在90.03%~96.25%之間。
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Determination on the ratio of true protein in milk products
HOU Cai-yun,ZHAO Jing,LIU Ying,WANG Xu,HUANG Xin
(College of Food Science and Nutritional Engineering,China Agricultural University,Beijing 100083,China)
The protein content is determined by trichloroacetic acid-biuret method in milk powder.The recovery of whey protein is 89.2%~99%and the detection limit is 0.26%~0.98%,which shows the true protein can be well determined by trichloroacetic acid-biuret method.The concept of true protein ratio is proposed,and the true protein ratio in the milk powder and raw milk is 78.06%~89.90%and 90.03%~96.25%respectively.
trichloroacetic acid-biuret method;Kjeldahl nitrogen method;the protein content;true protein ratio
TS252.1,TS252.7
A
1001-2230(2011)02-0056-03
2010-11-15
農(nóng)業(yè)科技成果轉(zhuǎn)化資金項目(2009GB23600525)。
侯彩云(1963-),女,教授,從事食品質(zhì)量安全方面的研究。