• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看

      ?

      生物技術在干酪加工中的應用

      2011-10-19 03:21:10張健張莉楊貞耐
      中國乳品工業(yè) 2011年2期
      關鍵詞:凝乳酶酪蛋白乳清

      張健,張莉,楊貞耐,

      (1.吉林農業(yè)大學食品科學與工程學院,長春130118;2.吉林省農業(yè)科學院農產品加工研究中心,國家乳品加工技術研發(fā)分中心,長春130033)

      生物技術在干酪加工中的應用

      張健1,張莉2,楊貞耐1,2

      (1.吉林農業(yè)大學食品科學與工程學院,長春130118;2.吉林省農業(yè)科學院農產品加工研究中心,國家乳品加工技術研發(fā)分中心,長春130033)

      綜述了生物技術在原料乳品質改進、凝乳酶、干酪發(fā)酵劑、干酪促熟、干酪包裝及乳清處理等不同干酪加工環(huán)節(jié)中的應用。

      干酪加工;生物技術;凝乳酶;乳酸菌

      0 引言

      幾千年前,人們用自然發(fā)酵乳制作原始的新鮮干酪。后來用動物胃臟或植物等的提取物作凝乳劑,使干酪經自然發(fā)酵成熟獲得各種風味的產品。其制作過程從人們學會做干酪就伴隨著生物技術的使用,如凝乳劑中酶的作用和發(fā)酵過程中微生物的作用等。近幾十年來,生物技術的快速發(fā)展,基因工程、發(fā)酵工程和細胞工程等新技術在干酪加工中的廣泛應用,極大地促進了干酪種類、風味和功能性的多樣化、干酪品質的改進及干酪產量的提高,從而滿足不同消費者對干酪品質的特殊需求及干酪需求量的增加。本文重點綜述了近年來不同干酪加工環(huán)節(jié)包括原料乳品質改進、凝乳處理中微生物酶和功能乳酸菌的應用、乳清處理、干酪成熟和包裝等有關生物技術的應用進展。

      1 原料乳組分的調控

      原料乳的成分組成和衛(wèi)生質量直接影響干酪的品質。隨著牛全基因組測序完成,利用生物技術通過改造乳畜泌乳相關基因對乳成分進行調控從而獲得更適于干酪生產的原料乳,已成為當前乳品科學的研究熱點之一。如表一所示,對酪蛋白基因磷酸化位點、酪蛋白分子有關凝乳酶或血纖維蛋白溶酶的酶切位點進行修飾,可以改變酪蛋白的酶解特性,改進干酪的品質。Brophy等[1]通過轉染將解碼κ,β-酪蛋白基因的DNA轉入母牛纖維細胞內,增加母牛體內解碼κ,β-酪蛋白基因量,使所產乳中β-酪蛋白的含量增加8%~20%,κ-酪蛋白的含量增加一倍,用該乳制作的干酪與普通牛乳干酪品質基本相同。據Van Slyke&Price公式,100 kg該牛乳比普通牛乳干酪產量提高0.7 kg左右。通過基因調控手段減少乳畜的乳糖分泌,可提高乳中干物質含量及干酪產率,據報道,如果乳中αs1酪蛋白含量增加20%,干酪的年產值將增加2億美元[2]。

      一般來說,遺傳性狀優(yōu)良的奶牛產乳量較高,所產乳中固形物含量以及乳中蛋白和脂肪含量也高于普通牛乳[3]。Lipkin等[4]發(fā)現牛乳產量與蛋白產量兩個性狀間關聯較大。但乳中過高的干物質含量在擠奶時會給乳畜帶來痛苦,原料乳處理時也容易“糊鍋”。高產奶牛的篩選應在遺傳選育的基礎上結合飼養(yǎng)條件等指標綜合考慮,單一利用遺傳手段篩選,會出現牛乳產量提高,牛的成活率和生育能力下降,總體經濟效益變差的情況[5]。Shalloo等[6]實驗表明,低產奶牛減量精料飼養(yǎng),高產奶牛加量精料飼養(yǎng)可以獲得最大經濟回報。

      Scharfen等[7]利用轉基因山羊生產含有溶菌酶的羊乳,該酶不影響乳酸菌生長,但能有效地減少乳中有害菌數量,延長產品的貨架期。通過給母羊注射轉基因牛生長激素(100 mg/14 d),母羊產乳量顯著增加,無不良副作用。通過凝乳前在原料乳中加入真菌磷酸脂酶,可減少排乳清過程中脂肪的流失,增加了Mozzarella干酪的產量[8]。

      2 凝乳酶的研究開發(fā)

      凝乳酶是干酪加工的必需酶制劑。傳統從未斷奶小牛皺胃中提取的皺胃酶已無法滿足干酪生產發(fā)展的需要。目前約有80%的干酪生產使用微生物或基因工程凝乳酶,大大地緩解了凝乳劑短缺的局面?;蚬こ棠槊妇哂挟a量高、純度高、成本低和生產周期短等優(yōu)點,用其生產的干酪在風味和質地上與牛皺胃酶無差別。目前常用的商品凝乳酶包括黑曲霉凝乳酶和乳酸克魯維酵母工程菌產的基因工程牛凝乳酶等。

      凝乳酶基因(牛、羊和真菌等)已在不同宿主中得到成功表達。牛凝乳酶和微小毛霉凝乳酶在畢赤酵母中得到了表達[9]。將凝乳酶基因轉入羊體,使此轉基因羊分泌的乳中含有凝乳酶[10],該酶與牛凝乳酶有相似特性,適于干酪加工[11]。為了提高凝乳酶表達量,可對酶進行糖基化修飾、改變目的蛋白引導肽、增加目的基因拷貝數量或采用高密度發(fā)酵技術等。通過對目的蛋白糖基化,可以使低表達菌株的產酶量提高10倍[12],但同時也會降低酶的凝乳活性[13]。在凝乳酶原的N端連接糖基化位點,既利用糖基化增加凝乳酶的表達量,又可在凝乳酶活化過程中去除糖基,獲得較高酶活力[14]。以乳酸克魯維酵母為宿主時,用α-Factor作信號肽比其它信號肽的凝乳酶表達量高8倍左右[15]。高密度培養(yǎng)草酸青霉菌時,以蔗糖為碳源,酵母提取物和蛋白胨等為氮源,可獲得較高產量的凝乳酶。米黑毛霉發(fā)酵過程中連續(xù)補料可使粗酶液酶活提高到1.24 IU/mL[16]。微小毛霉凝乳酶C端Tyr75、Phe111、Vai110等對酶活性和穩(wěn)定性有較大影響,通過基因定點突變可以降低凝乳酶的失活溫度,提高凝乳活性[17-19]。此外,已在一些傳統發(fā)酵食物中分離到產凝乳酶的菌株,如中國米酒中的霉菌,日本納豆中的枯草芽孢桿菌。從土壤中分離的嗜堿擬諾卡氏菌也能夠產生具有凝乳活性的物質[20]。

      3 乳酸菌的代謝調控

      干酪發(fā)酵劑乳酸菌的功能特性是影響干酪品質的重要因素之一。乳酸菌糖代謝的主要產物是乳酸,通過代謝調控,可將乳糖轉化成低甜度糖或胞外多糖等具有保健功能或對干酪質地有改善作用的物質。通過對乳酸菌有關功能基因如lacZ、aldB、mtlD等的調控,可以使其代謝途徑朝著有利于功能產物如雙乙酰、山梨醇和B族維生素等形成的方向進行(見表2)。在乳糖操縱子中插入6-磷酸山梨醇酶合成基因后,干酪乳桿菌能夠利用乳糖產生山梨醇[21],將該基因轉入乳糖水解酶缺陷植物乳桿菌內,可使該菌高效地將葡萄糖轉化為山梨醇(轉化率61%~65%)和甘露糖醇(轉化率9%~13%)[22]。利用產胞外多糖菌株制作低脂切達干酪可使干酪產量增加8.17%,水分質量分數增加9.49%[23],制作的墨西哥Panela干酪質地柔軟,涂抹性更好。同時通過乳酸菌基因工程改造,可以增強其對噬菌體的抵抗作用,提高干酪成熟過程中乳酸菌的存活數量,縮短干酪成熟時間。Pillidge等[24]把含有抗噬菌體基因的質粒轉入乳酸菌中,獲得了一株具有可傳代噬菌體抗性的乳酸菌。基因組重組后,鼠李糖乳桿菌抗酸能力增強,能夠在pH 3.6條件下生長,發(fā)酵密度提高了26%[25]。

      表2 乳酸菌功能基因調控

      將蛋白酶、肽酶、氨基酸轉移酶等基因轉入乳酸菌,可增強其對干酪風味的改善作用。把枯草芽孢桿菌的蛋白酶基因轉入乳酸乳球菌后用于制作切達干酪,可明顯加快干酪的成熟。增加干酪中乳酸菌肽酶的表達量如氨肽酶、脯氨酰二肽酶等,可減少干酪成熟中產生的苦味[26]。Smit等[27]在20多株常用干酪乳酸菌中發(fā)現2株高產3-甲基丁醛,可增加干酪麥香味。通過構建高產3-甲基丁醛菌株的基因敲除庫,確定了3-甲基丁醛的解碼基因,將該基因轉入3-甲基丁醛缺陷型菌株中,成功得到表達。Rijnen等[28]把谷氨酸代謝酶的基因轉入乳酸菌,使干酪中谷氨酸高效轉化為α酮戊二酯,并使羧酸產量提高,增強了干酪的風味。增加干酪中乳酸菌氨基酸轉移酶的表達量可以促進干酪風味的形成。但有些氨基酸酶如胱硫醚酶對干酪的風味促進作用有限。此外,Roberts等[29]用2株產nisin的乳酸菌制成的混合發(fā)酵劑,可有效抑制干酪成熟過程中有害菌的生長。

      4 干酪促熟技術的應用

      天然干酪的成熟期較長。隨著干酪需求量的不斷增加,如何縮短干酪成熟時間是提高干酪生產效率的關鍵。常見干酪的促熟方法及其優(yōu)缺點見表3。在干酪加工過程中添加外源酶類如凝乳酶、脂酶、蛋白酶和纖溶酶等,可以促進酪蛋白的水解,加快干酪成熟。近年來微膠囊及其緩釋技術的發(fā)展,為解決添加外源酶的均一性和避免干酪過度成熟提供了新方法。把中性細菌蛋白酶、酸性真菌蛋白酶和脂酶組成的酶類混合物,用脂膜包裹加入切達干酪,2個月就具有成熟切達干酪的風味。用脫水脂膜包裹Cyprosin加入牛乳中制作Manchego干酪,15天后干酪風味明顯增強,苦味并未增加。纖溶酶適用于加工過程中有高溫處理環(huán)節(jié)的干酪的促熟。高溫處理易使凝乳酶失活,減緩干酪成熟,而纖溶酶可與乳中酪蛋白微粒結合,耐熱性較好,而且可均勻分布于乳和干酪中,有利于干酪成熟。

      表3 常見干酪促熟方法

      采用乳糖利用缺陷型(Lac-)或乳糖利用緩慢型(Lacs)乳酸菌作為干酪輔助發(fā)酵劑,既可保持干酪成熟過程中較高的活菌數,加快干酪風味物質產生,縮短成熟時間,同時不會由于活菌數增加而導致干酪過度酸化。采用乳糖利用缺陷型兼抗噬菌體缺陷性乳酸菌(Lac-Prt-)作為發(fā)酵劑,由于其菌體易于死亡,其中大量酶類物質釋放,從而促進干酪成熟。采用物理方法如熱處理(60~70℃,15 s)乳酸菌,在不影響其蛋白水解活力的前提下,可降低其產酸能力。冷凍后解凍也可以使乳酸菌死亡,釋放菌體活性酶。在干酪成熟初期,用高壓處理干酪,可以加快干酪的蛋白水解速度和干酪成熟[30]。高壓處理也可使綿羊乳干酪的短鏈脂肪酸數量增加,改善干酪質地,使Mozzarella干酪的成熟時間縮短,融化溫度降低,改善其流變學特性。此外,通過添加溶菌酶,可促進菌體釋放蛋白酶和脂酶,或添加氨基酸促進風味物質的形成。開菲爾酵母、酵母混合菌株等非干酪發(fā)酵菌株也被用作輔助發(fā)酵菌株來增加干酪的風味。

      5 乳清的生物加工處理

      干酪生產過程中會產生大量的乳清。通??蓪⑷榍鍑婌F干燥制成乳清粉,或經過濃縮進一步分離制成乳糖和乳清濃縮蛋白。乳清濃縮蛋白經不同蛋白酶處理可獲得具有不同功能特性的蛋白水解物。乳糖作為碳源可用于發(fā)酵生產附加值更高的單細胞蛋白和其它代謝產物如乙醇、乳酸、維生素和青霉素等,乳糖經進一步酸解或酶解還可以生產葡萄糖和半乳糖。

      近年來生物技術的快速發(fā)展大大拓寬了乳清的用途。目前乳清還可用來生產運動功能食品、保健類食品和藥品等。將乳清或脫蛋白乳清用于益生菌高密度發(fā)酵,可生產益生菌產品。用開菲爾酵母發(fā)酵乳清,并加入1%的黑葡萄提取物使乳清中的乳糖轉化率提高6倍[31]。用乳酸克魯維酵母發(fā)酵乳清生產乙醇,質量濃度可達63 g/L[32]。把嗜熱鏈球菌中的β-半乳糖水解酶基因轉入大腸桿菌,所產酶可以用來高效分解乳清中乳糖[33]。

      乳清蛋白可用來加工可食用包裝材料,制作凝膠保護劑;經過酸化、擠壓或者酶解后也可以做乳化劑;通過膜分離和蛋白水解可以得到很多具有生物活性的物質。在干酪制作過程中,乳清經微濾處理后可得到不含凝乳酶而富含活性蛋白的濃縮物,其中固形物蛋白質量分數高達89%,富含β-乳球蛋白,α-乳清蛋白,乳鐵蛋白,糖多肽等,有些組分具有降血壓、緩解疼痛、抗菌免疫等功能。小鼠實驗證明乳清蛋白對黃曲霉素中毒有明顯緩解作用[34],還能激活小鼠體內的tp53抗癌基因。喂食乳清提取物會增加牛的紅細胞數量,激活臨產牛的免疫系統[35]。乳清蛋白經堿性蛋白酶水解生成的短肽具有一定保健功能。利用糜蛋白酶和羧基肽酶可以水解乳清蛋白制備苯丙氨酸,用于治療苯丙酮尿癥。

      6 生物包裝材料的應用

      為了提高干酪保藏或成熟過程中品質的穩(wěn)定性,具有除氧、除二氧化碳、除濕、抑菌、可降解、可食用等多種功能的生物材料在干酪包裝中得到了越來越多的應用。這類材料通過吸收、分散、半透膜等作用,控制包裝內氣體,創(chuàng)造適于干酪成熟和保存的環(huán)境。

      除氧材料可以避免干酪中脂肪被氧化后產生的異味。用加入8 mg/g丁羥甲苯的聚乙烯膜包裝Asadero干酪時,干酪保存100天后氧化氣味未增加[36]。Jakobsen等[37]建立了半硬質干酪包裝內二氧化碳平衡數學模型。抑菌材料主要是通過在材料中添加食品級抑菌物質,抑制干酪表面有害菌生長。在干酪包裝材料中添加乳酸球菌細菌素和那他霉素,使其持續(xù)釋放,可有效地抑制有害菌在Blat’ácké zlato干酪表面的生長,但該材料不適合表面成熟干酪。用添加那他霉素的PVC材料包裝Kasha干酪,保存5個月后,未檢測到大腸桿菌和沙門氏菌等有害菌[38]。在新鮮干酪Fior di Latte表面涂抹表面保護劑(8%海藻酸鈉,質量濃度為0.25 g/L的溶菌酶,50 mmol/L乙二胺四乙酸二鈉鹽),結合頂空充氣可使干酪的貨架期延長3 d。用檸檬提取物、鹽水和海藻酸鈉制成膠狀物,涂抹于Mozzarella干酪表面,可抑制腐敗菌生長,延長貨架期。此外,有些干酪包裝材料通過添加指示劑,在貨架期內根據包裝材料的變色情況,讓消費者可以很容易判斷干酪的剩余保存時間或污染情況。例如由加拿大Mississauga公司生產的Toxin Alert包裝材料可以通過顏色變化來確定干酪的細菌污染狀況。

      7 展望

      隨著干酪生產的發(fā)展和干酪需求量的不斷增加,生物技術將在干酪加工各個環(huán)節(jié)得到越來越廣泛的應用。近年來牛全基因組測序的完成,使很多重要的泌乳基因序列被確定,如控制牛κ-酪蛋白表達的基因,乳腺炎治愈物的合成基因等。功能性基因序列結合分子標記輔助篩選和基因輔助篩選等技術,不僅使原有的乳畜選育周期大大縮短,也使按需設計乳的組分成為可能。未來生物技術將在原料乳蛋白組分調控、適于不同種類干酪的專用凝乳酶和功能性干酪發(fā)酵劑的開發(fā)等方面進一步得到應用,并將進一步提高干酪產率,縮短干酪成熟周期,改善干酪口感和風味,開發(fā)出更多具有特殊功能和滿足不同消費者個性化需求的干酪新品種。隨著乳清蛋白組分對人體保健功能的確證,乳清蛋白將得到進一步加工利用,如功能性乳清蛋白和活性肽的進一步開發(fā),將使乳清的產值大大超過干酪產品本身,從而改變干酪產業(yè)內部格局?!爸悄芑鄙锇b材料和在線快速生物檢測技術的開發(fā)將使干酪產品更安全,品質更穩(wěn)定。生物修復技術應用于干酪生產中廢液和廢物的處理如用來生產單細胞蛋白和培養(yǎng)濕地等,將進一步減輕干酪生產造成的環(huán)境污染,提高干酪的生產效益。

      [1] BROPHY B,SMOLENSKI G,WHEELER T,et al.Cloned Transgenic Cattle Produce Milk with Higher Levels of Beta-Casein and Kappa-Casein.[J].Nat Biotechnol.2003,21(2):157-162.

      [2] HENNIGHAUSEN L,RUIZ L,WALL R.Transgenic Animals--Production of Foreign Proteins in Milk[J].CurrentOpinion in Biotechnology.1990,1(1):74-78.

      [3] COLEMAN J,PIERCE K M,BERRY D P,et al.Increasing Milk Solids Production Across Lactation through Genetic Selection and Intensive Pasture-Based Feed System[J].Journal of Dairy Science.2010,93(9):4302-4317.

      [4] LIPKIN E,BAGNATO A,SOLLER M.Expected Effects On Protein Yield of Marker-Assisted Selection at Quantitative Trait Loci Affecting Milk Yield and Milk Protein Percentage[J].Journal of Dairy Science.2008,91(7):2857-2863.

      [5] DILLON P,BERRY D P,EVANS R D,et al.Consequences of Genetic Selection for Increased Milk Production in European Seasonal Pasture Based Systems of Milk Production[J].Livestock Science.2006,99(2-3):141-158.

      [6] SHALLOO L,KENNEDY J,WALLACE M,et al.The Economic Impact of Cow Genetic Potential for Milk Production and Concentrate Supplementation Level On the Profitability of Pasture Based Systems Under Different Eu Milk Quota Scenarios[J].The Journal of A-gricultural Science.2004,142(03):357-369.

      [7] SCHARFEN E C,MILLS D A,MAGA E A.Use of Human Lysozyme Transgenic Goat Milk in Cheese Making:Effects On Lactic Acid Bacteria Performance[J].Journal of Dairy Science.2007,90(9):4084-4091.

      [8] LILB H M,BROE M L,HER E,et al.Improving the Yield of Mozzarella Cheese by Phospholipase Treatment of Milk[J].Journal of Dairy Science.2006,89(11):4114-4125.

      [9] 張莉,姜媛媛,張健,等.牛凝乳酶基因在畢赤酵母中的重組表達[J].2009.

      [10] ROGELJ I,PERKO B,FRANCKY A,et al.Recombinant Lamb Chymosin as an Alternative Coagulating Enzyme in Cheese Production[J].Journal of Dairy Science.2001,84(5):1020-1026.

      [11] MEZINA M N,LAVRENOVA G I,PROKOF'EV M I,et al.Isolation of Milk-Clotting Enzyme From Transgenic Sheep Milk and its Comparison with Calf Chymosin[J].Biochemistry(moscow).2001,66(4):378-383.

      [12] BERKA R M,BAYLISS F T,BLOEBAUM P,et al.Aspergillus Niger Var.Awamor1 as a Host for the Expression of Heterologous Genes[J].Applications of enzyme biotechnology.1991:273.

      [13] AIKAWA J,YAMASHITA T,NISHIYAMA M,et al.Effects of Glycosylation On the Secretion and Enzyme Activity of Mucor Rennin,an Aspartic Proteinase of Mucor Pusillus,Produced by Recombinant Yeast.[J].Journal of Biological Chemistry.1990,265(23):13955.

      [14] van den BRINK H J M,PETERSEN S G,RAHBEK-NIELSEN H,et al.Increased Production of Chymosin by Glycosylation[J].Journal of Biotechnology.2006,125(2):304-310.

      [15] van den BERG J A,van der LAKEN K J,van OOYEN A,et al.Kluyveromyces as a Host for Heterologous Gene Expression:Expression and Secretion of Prochymosin[J].Nature Biotechnology.1990,8(2):135-139.

      [16] SEKER S,BEYENAL H,AYHAN F,et al.Production of Microbial Rennin From Mucor Miehei in a Continuously Fed Fermenter[J].Enzyme and Microbial Technology.1998,23(7-8):469-474.

      [17] CHITPINITYOL S,GOODE D,CRABBE M J C.Site-Specific Mutations of Calf Chymosin B Which Influence Milk-Clotting Activity[J].Food Chemistry.1998,62(2):133-139.

      [18] YAMASHITA T,HIGASHI S,HIGASHI T,et al.Mutation of a Fungal Aspartic Proteinase,Mucor Pusillus Rennin,to Decrease Thermostability for Use as a Milk Coagulant[J].Journal of Biotechnology.1994,32(1):17-28.

      [19] PARK Y N,AIKAWA J,NISHIYAMA M,et al.Site-Directed Mutagenesis of Conserved Trp39 in Rhizomucor Pusillus Pepsin:Possible Role of Trp39 in Maintaining Tyr75 in the Correct Orientation for Maximizing Catalytic Activity[J].Journal of biochemistry.1997,121(1):118.

      [20] CAVALCANTI M T H,TEIXEIRA M F S,LIMA FILHO J L,et al.Partial Purification of New Milk-Clotting Enzyme Produced by Nocardiopsis Sp.[J].Bioresource Technology.2004,93(1):29-35.

      [21]NISSEN L,PEZ-MARTEZ G,YEBRA M J.Sorbitol Synthesis by an Engineered Lactobacillus Casei Strain Expressing a Sorbitol-6-Phosphate Dehydrogenase Gene within the Lactose Operon[J].FEMS Microbiology Letters.2005,249(1):177-183.

      [22] COSTA-FONT M,GIL J M,TRAILL W B.Consumer Acceptance,Valuation of and Attitudes Towards Genetically Modified Food:Review and Implications for Food Policy[J].Food Policy.2008,33(2):99-111.

      [23] JIMEZ-GUZM J,FLORES-NERA A,CRUZ-GUERRERO A E,et al.Use of an Exopolysaccharide-Producing Strain of Streptococcus Thermophilus in the Manufacture of Mexican Panela Cheese[J].LWT-Food Science and Technology.2009,42(9):1508-1512.

      [24] PILLIDGE C J,COLLINS L J,WARD L J H,et al.Efficacy of Four Conjugal Lactococcal Phage Resistance Plasmids Against Phage in Commercial Lactococcus Lactis Subsp.Cremoris Cheese Starter Strains[J].International Dairy Journal.2000,10(9):617-625.

      [25] WANG Y,LI Y,PEI X,et al.Genome-Shuffling Improved Acid Tolerance and L-Lactic Acid Volumetric Productivity in Lactobacillus Rhamnosus[J].Journal of Biotechnology.2007,129(3):510-515.

      [26] EXTERKATE F A,ALTING A C.The Role of Starter Peptidases in the Initial Proteolytic Events Leading to Amino Acids in Gouda Cheese[J].International Dairy Journal.1995,5(1):15-28.

      [27] SMIT B A,ENGELS W,WOUTERS J,et al.Diversity of LLeucine Catabolism in Various Microorganisms Involved in Dairy Fermentations,and Identification of the Rate-Controlling Step in the Formation of the Potent Flavour Component 3-Methylbutanal[J].Applied microbiology and biotechnology.2004,64(3):396-402.

      [28] RIJNEN L,COURTIN P.Expression of a Heterologous Glutamate Dehydrogenase Gene in Lactococcus Lactis Highly Improves the Conversion of Amino Acids to Aroma Compounds[J].Applied&Environmental Microbiology.2000,66(4):1354.

      [29] ROBERTS R F,ZOTTOLA E A,MCKAY L L.Use of a Nisin-Producing Starter Culture Suitable for Cheddar Cheese Manufacture[J].Journal of Dairy Science.1992,75(9):2353-2363.

      [30] SALDO J,MCSWEENEY P,SENDRA E,et al.Proteolysis in Caprine Milk Cheese Treated by High Pressure to Accelerate Cheese Ripening[J].International dairy journal.2002,12(1):35-44.

      [31] KOUTINAS A A,ATHANASIADIS I,BEKATOROU A,et al.Kefir-Yeast Technology:Industrial Scale-Up of Alcoholic Fermentation of Whey,Promoted by Raisin Extracts,Using Kefir-Yeast Granular Biomass[J].Enzyme and Microbial Technology.2007,41(5):576-582.

      [32] AGUIRRE-EZKAURIATZA E J,AGUILAR-Y EZ J M,RAM REZ-MEDRANO A,et al.Production of Probiotic Biomass(Lactobacillus Casei)in Goat Milk Whey:Comparison of Batch,Continuous and Fed-Batch Cultures[J].Bioresource Technology.2010,101(8):2837-2844.

      [33] RHIMI M,BOISSON A,DEJOB M,et al.Efficient Bioconversion of Lactose in Milk and Whey:Immobilization and Biochemical Characterization of a[Beta]-Galactosidase From the Dairy Streptococcus Thermophilus Lmd9 Strain[J].Research in Microbiology.2010,161(7):515-525.

      [34] SALEH Z A,EL-GARAWANY G A,ASSEM F,et al.Evaluation of the Efficacy of Whey Protein to Ameliorate the Toxic Effects of Aflatoxins in Rats[J].International Dairy Journal.2007,17(7):854-859.

      [35] ROTH J A,FRANK D E,WEIGHNER P,et al.Enhancement of Neutrophil Function by Ultrafiltered Bovine Whey[J].Journal of Dairy Science.2001,84(4):824-829.

      [36] SOTO-CANT C D,GRACIANO-VERDUGO A Z,PERALTA E,et al.Release of Butylated Hydroxytoluene From an Active Film Packaging to Asadero Cheese and its Effect On Oxidation and Odor Stability[J].Journal of Dairy Science.2008,91(1):11-19.

      [37] JAKOBSEN M,RISBO J.Carbon Dioxide Equilibrium Between Product and Gas Phase of Modified Atmosphere Packaging Systems:Exemplified by Semihard Cheese[J].Journal of Food Engineering.2009,92(3):285-290.

      [38] VAR I,ERGINKAYA Z,GEN M,et al.Effects of Antifungal Agent and Packaging Material On Microflora of Kashar Cheese During Storage Period[J].Food Control.2006,17(2):132-136.

      Application of biotechnology in cheese processing

      ZHANG Jian1,ZHANG Li2,YANG Zhen-nai1,2
      (1.College of Food Science and Engineering,Jilin Agricultural University,Changchun 130118 China;2.Center of A-gro-Food Technology of Jilin Academy of Agricultural Sciences,National R&D Center for Milk Processing,Changchun,130033,China)

      The present review focuses on discussing the application of biotechnology in different stages of cheese processing such as improving the raw milk quality,use of recombinant rennet and novel starters,acceleration of cheese ripening,cheese packaging and whey utilization.

      cheese processing;biotechnology;rennet;Lactic acid bacteria

      TS252.53

      B

      1001-2230(2011)02-0048-05

      2010-11-19

      現代農業(yè)產業(yè)技術體系建設專項資金資助(nycytx-0502);吉林省科技廳重點項目(20080228)。

      張?。?979-),男,碩士研究生,從事乳品加工研究。

      楊貞耐

      猜你喜歡
      凝乳酶酪蛋白乳清
      蛋氨酸對奶牛乳腺酪蛋白合成及其上皮細胞自噬的影響
      中國飼料(2022年5期)2022-04-26 13:42:32
      米黑毛霉UV-LiCl-6凝乳酶酶學特性研究
      酪蛋白磷酸肽-鈣絡合物對酸乳貯藏特性的影響
      中國釀造(2016年12期)2016-03-01 03:08:23
      干酪用牛凝乳酶替代品的研究進展*
      透析乳清對雞生長和小腸對養(yǎng)分吸收的影響
      飼料博覽(2014年7期)2014-04-05 15:18:33
      酪蛋白膠束結構和理化性質的研究進展
      牛凝乳酶原基因在畢赤酵母中的表達及其酶學特性的研究
      乳清低聚肽的制備及其抗氧化活性
      乳清生物技術處理研究進展
      米黑毛霉產凝乳酶固體發(fā)酵培養(yǎng)基優(yōu)化
      静海县| 常德市| 法库县| 上饶县| 建宁县| 同江市| 永靖县| 石棉县| 包头市| 贺兰县| 贵阳市| 茌平县| 富锦市| 阿勒泰市| 惠来县| 抚远县| 翼城县| 罗定市| 通城县| 天津市| 新乐市| 富民县| 巴彦淖尔市| 太保市| 进贤县| 天水市| 武义县| 永顺县| 平凉市| 余干县| 镇康县| 西吉县| 沭阳县| 商丘市| 屏山县| 武清区| 南城县| 东阿县| 大足县| 扶风县| 瓮安县|