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      CCK—8法與MTT法檢測兔成纖維細胞活性的比較研究

      2013-03-28 03:58:38劉愛旗夏璐
      中國醫(yī)學創(chuàng)新 2013年2期
      關鍵詞:清液孔板纖維細胞

      劉愛旗 夏璐

      【摘要】 目的:探討CCK-8法和MTT法檢測兔成纖維細胞活性的最佳實驗條件,并比較其優(yōu)略。方法:以傳至第3代的兔成纖維細胞為研究對象,分別用CCK-8法和MTT法檢測兔成纖維細胞的增殖活性。結果:MTT法的最佳檢測波長490 nm,CCK-8法最佳檢測波長為450 nm,兩法的最佳檢測時間均為加入試劑后4 h。適宜檢測的細胞數(shù)量范圍為2×103/ml ~1×105 /ml 個。結論:CCK-8法較MTT法檢測的靈敏度高,準確性好,是一種優(yōu)于MTT法的檢測兔成纖維細胞增殖活性的方法。

      【關鍵詞】 CCK-8; MTT; 兔成纖維細胞; 細胞增殖

      檢測細胞增殖活性的方法很多,如3H放射性同位素摻入法、細胞儀法、臺盼藍染色法、MTT法等。其中以MTT法以其快速而簡便、不需要特殊檢測儀器、無放射性同位素、適合大批量檢測的特點而得到廣泛的應用,但MTT法形成的Formazan為水不溶性的[1],加有機溶劑溶解,由于在去上清液時可能會丟失小部分的Formazan,故有時重復性略差。為了避免Formazan的部分丟失,研究人員又開發(fā)了很多水溶性的四氮唑鹽類:如XTT、CCK-8(WST-8)等[2],本文對CCK-8法和MTT法檢測兔成纖維細胞增殖活性的最佳實驗條件進行探討,并比較其優(yōu)略。

      1 材料與方法

      1.1 實驗對象 以兔筋膜作為成纖維細胞原代培養(yǎng)組織,培養(yǎng)、傳代并培養(yǎng)傳至第3代,以第3代的成纖維細胞為研究對象[3]。

      1.2 材料與儀器 胎牛血清、胰酶、DMEM、雙抗、PBS液。60 mm培養(yǎng)皿、倒置相差顯微鏡、離心機、96孔板、酶聯(lián)免疫檢測儀。

      1.3 方法

      1.3.1 最佳檢測波長和最佳測定時間 取以對數(shù)生長期的第3代兔成纖維細胞,以0.25%胰酶消化、計數(shù)、接種于接種于96孔培養(yǎng)板,每孔加入100 μl的細胞懸液,濃度為1×104個/ml,重復種植5個孔,在空白對照孔加入培養(yǎng)基100 μl,在96孔板的四周加PBS液100 μl,以保持96孔板的濕度。連續(xù)接種6個96孔板,在37 ℃恒溫箱中培養(yǎng)24 h使細胞貼壁。CCK-8組每孔加入10 μl CCK-8試劑,在37 ℃恒溫箱中分別繼續(xù)孵育1、2、3、4、5、6 h后,用酶聯(lián)免疫檢測儀檢測各組的OD值,檢測5個孔的OD值,并取其平均值;檢測MTT組時吸去上清液,并在每孔加入100 μl含MTT試劑的培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)1、2、3、4、5、6 h,檢測前先吸出孔內液體,每孔加入150 μl的DMSO液,振蕩使其溶解,分別檢測其不同波長下的OD值[4]。

      1.3.2 細胞數(shù)量與吸光度的關系 取對數(shù)期生長第3代兔成纖維細胞,以0.25%胰酶消化、計數(shù)、接種于接種于96孔培養(yǎng)板,每個孔細胞濃度從高到低依次為4×104個/ml、

      2×104個/ml、1×104個/ml、5×103個/ml、2.5×103個/ml、1.25×103個/ml、7.5×102個/ml、4×102個/ml、2×102個/ml,每個濃度種5孔,放入37 ℃恒溫箱中培養(yǎng)24 h,細胞貼壁后,分別加入CCK-8試劑和MTT試劑,在酶標儀上測量其OD值。

      2 結果

      2.1 最佳檢測波長的確定 如圖1所示,用CCK-8法檢測兔成纖維細胞活性時,在450 nm處的吸光峰值最高,CCK-8法檢測時的最佳波長為450 nm。由圖2可知,MTT法檢測時的最佳波長為490 nm。

      2.2 最佳測定時間的確定 從圖1、圖2可見,在加入MTT試劑和CCK-8試劑后,孵育1~6 h,用酶聯(lián)免疫檢測儀分別檢測1~6 h的OD值,孵育1~4 h,OD值呈上升趨勢,4~6 h OD值出現(xiàn)下降的趨勢,孵育4 h時檢測OD值最大,靈敏度最高。因此用MTT法和CCK-8法檢測兔筋膜成纖維細胞的活性時,應該在加入MTT試劑和CCK-8試劑孵育后的4 h檢測最佳[5]。

      2.3 細胞數(shù)量與吸光度的關系 用兩種方法檢測細胞數(shù)量與吸光度的關系如圖3所示。從圖3可見,隨著細胞濃度的增加,兩種方法測得的OD值都增大,在103處OD值開始增加較明顯,104處OD值接近峰值,隨著濃度增加,OD值增加的不明顯。

      3 討論

      MTT法的優(yōu)點:簡單、方便、快速、無放射性污染、應用范圍廣。缺點:MTT法的中間代謝產物為不溶于水的結晶物,在加入有機溶劑前需要棄上清液,會造成一定的誤差。而CCK-8法的中間代謝產物為可溶性的,且不需要棄上清液,操作相對較為簡便[6]。

      從圖3可以看出,CCK-8法測得的OD值始終大于MTT法測得的OD值,另CCK-8法比MTT法對細胞濃度變化更敏感,測得的結果更為準確。本實驗還探討了MTT法和CCK-8法在測定兔成纖維細胞的最佳實驗條件,MTT法的最佳檢測波長490 nm,CCK-8法最佳檢測波長為450 nm,兩法的最佳檢測時間均為加入試劑后4 h。適宜的細胞數(shù)量范圍2×103~1×105個。

      綜上所述,CCK-8法較MTT法檢測的靈敏度高,準確性好,是一種優(yōu)于MTT法的檢測兔成纖維細胞增殖活性的方法。

      參考文獻

      [1] Tominaga H,Ishiyama M,Ohseto F,et al.A water-soluble tetrazolium salt useful for colorimetric cell viability assay[J].Anal Commun,1999,36(1):47-50.

      [2] Rassendren F,Buell G,Newbolt A,et al.Identification of amino acidresidues contributing to the pore of a P2X receptor[J].The EMBO Journal,1997,16(2):3446.

      [3] 朱曉弘.兔結膜成纖維細胞的體外培養(yǎng)[J].國際眼科雜志,2005,5(2):253-255.

      [4] 侯春梅,李新穎,葉偉亮,等.MTT法和CCK-8檢測懸浮細胞增殖的比較[J].軍事醫(yī)學科學院刊,2009,8(4):400-401.

      [5] 熊建文,肖化,張鎮(zhèn)西.MTT法和CCK-8法檢測細胞活性之測試條件比較[J].激光生物學報,2007,10(5):559-560.

      [6] 辛陪成,楊圣.CCK-8法檢測兔筋膜成纖維細胞增殖活性之最佳測試條件研究[J]. 中外醫(yī)學研究,2011,9(4):6-8.

      (收稿日期:2012-11-23) (本文編輯:陳丹云)

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