馬迪 嚴(yán)佶祺 彭承宏 施敏敏 陳雪華 王維杰 李宏為
研究表明,骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞 (Bone marrow mesenchymal stem cells,BMSCs)已成為組織工程以及細(xì)胞移植治療中的重要種子細(xì)胞,具有廣闊的應(yīng)用前景[1-2]。但是,由于Hayflick界限的存在,BMSCs會(huì)隨著細(xì)胞的分裂出現(xiàn)衰老現(xiàn)象,嚴(yán)重影響其在組織工程及細(xì)胞移植治療領(lǐng)域的作用。
隨著對(duì)人端粒酶逆轉(zhuǎn)錄酶 (Human telomerase reverse transcriptase,hTERT)的深入研究,導(dǎo)入外源性的hTERT可使細(xì)胞的增殖能力、抗衰老能力得到增強(qiáng),甚至獲得永生化的能力[3]。將本研究前期已成功構(gòu)建并包裝獲得的含hTERT的重組慢病毒液[4],感染大鼠BMSCs,觀察細(xì)胞體外增殖分裂情況及其多向分化潛能,為組織工程及細(xì)胞移植治療建立穩(wěn)定的種子細(xì)胞儲(chǔ)備。
P3大鼠BMSCs(上海消化外科研究所提供);10%FBS、L-DMEM細(xì)胞培養(yǎng)基 (美國Gibco公司);PBS(生工生物工程股份有限公司);PE標(biāo)記CD29抗大鼠抗體、CD90抗大鼠抗體 (美國BD公司);PE標(biāo)記CD34抗大鼠抗體 (美國Santa Cruz公司);PE標(biāo)記CD45抗大鼠抗體(美國Biolegend公司);成脂誘導(dǎo)分化試劑盒、成骨誘導(dǎo)分化試劑盒(廣州賽業(yè)生物科技有限公司);Trizol(美國Life Technologies公司);ReverTra Ace QPCR RT Kit、SYBR Green Realtime PCR Master Mix(日本 TOYOBO公司);polybrene(美國 Sigma 公司)。
臺(tái)式離心機(jī)5810R (德國Eppendorf公司);倒置熒光顯微鏡 IX-71(日本 Olympus公司);BD FACS Calibur流式細(xì)胞儀 (美國BD公司);定量PCR儀(瑞士Roche公司);全光譜微孔板分光光度計(jì)(美國BIOTEK公司)。
1.2.1 重組病毒液感染大鼠BMSCs
參照文獻(xiàn)[4]方法,構(gòu)建并獲取含hTERT基因的重組慢病毒液,胰酶消化并調(diào)整大鼠BMSCs密度為2×104個(gè)/孔,加入24孔板,培養(yǎng)24 h后進(jìn)行病毒感染。一個(gè)24孔板內(nèi)按照每孔10 μL加入重組慢病毒液,另一個(gè)24孔板每孔加入空病毒10 μL,于各孔內(nèi)分別加入polybrene,并調(diào)整終濃度為8 μg/mL,同時(shí)設(shè)置未感染組,分別命名為MSC-hTERT組、MSC-GFP組和MSC組,繼續(xù)培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。感染24 h后更換為含血清完全培養(yǎng)液,待熒光表達(dá)穩(wěn)定后常規(guī)消化收集MSC-hTERT組及MSC-GFP組細(xì)胞,轉(zhuǎn)入6孔板內(nèi)繼續(xù)體外增殖培養(yǎng);同時(shí),收集MSC組細(xì)胞,轉(zhuǎn)入6孔板內(nèi)同期體外增殖培養(yǎng),觀察各組熒光表達(dá)情況、細(xì)胞形態(tài)和傳代情況。
1.2.2 hTERT基因mRNA水平的表達(dá)
收集各組細(xì)胞,分別加入Trizol,抽提總RNA,調(diào)整RNA濃度為0.5 μg/μL,按照 ReverTra Ace qPCR RT Kit說明書進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)。根據(jù)hTERT的基因序列 (NM_198253.2),設(shè)計(jì)引物。F:5'GAGAACAAGCTGTTTGCGGG3';R:5'AAGTTCACCACGCAGCCATA3'。
收集各組細(xì)胞cDNA,按照SYBR Green Realtime PCR Master Mix說明配置反應(yīng)體系,并進(jìn)行Real-Time PCR檢測目的基因的mRNA表達(dá),以2-△Ct作為基因表達(dá)量,分析各組目的基因的表達(dá)情況。
1.2.3 MSC-hTERT組細(xì)胞周期的檢測
取對(duì)數(shù)生長期的MSC-hTERT及MSC組細(xì)胞,常規(guī)胰酶消化收集,4℃離心后棄去上清,PBS適度吹打重懸。加入-20℃預(yù)冷的75%乙醇,吹打均勻,制成單細(xì)胞懸液,4℃固定24 h;隔日1 000 r/min離心5 min后棄去上清,PBS漂洗,適度吹打重懸,加入PI和RNA酶,并調(diào)節(jié)PI終濃度為20 μg/mL,RNA 酶終濃度為 50 μg/mL,37 ℃孵育 30 min,流式細(xì)胞儀檢測分析細(xì)胞周期,并利用自帶軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。
1.2.4 MSC-hTERT組細(xì)胞表型的鑒定
取對(duì)數(shù)生長期的MSC-hTERT組細(xì)胞,消化、離心后, 進(jìn)行 CD29、CD34、CD45、CD90 抗體標(biāo)記,流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞表型。
1.2.5 MSC-hTERT的成脂誘導(dǎo)及檢測
胰酶消化對(duì)數(shù)生長期的MSC-hTERT組細(xì)胞,設(shè)置誘導(dǎo)組及對(duì)照組,誘導(dǎo)組按照成脂誘導(dǎo)試劑盒說明書添加誘導(dǎo)液進(jìn)行成脂誘導(dǎo),對(duì)照組添加含10%FBS的L-DMEM培養(yǎng)液。待細(xì)胞內(nèi)脂滴出現(xiàn)后進(jìn)行油紅O染色,顯微鏡下觀察,鑒定其成脂分化能力。
1.2.6 MSC-hTERT的成骨誘導(dǎo)及檢測
胰酶消化對(duì)數(shù)生長期的MSC-hTERT組細(xì)胞,設(shè)置誘導(dǎo)組及對(duì)照組,誘導(dǎo)組按照成骨誘導(dǎo)試劑盒說明書添加誘導(dǎo)液進(jìn)行成骨誘導(dǎo),對(duì)照組添加含10%FBS的L-DMEM培養(yǎng)液,誘導(dǎo)3周后進(jìn)行茜素紅染色,顯微鏡下觀察,鑒定其成骨分化能力。
1.2.7 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
采用SPSS16.0統(tǒng)計(jì)軟件分析,計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,組間比較采用t檢驗(yàn),兩組以上采用單因素方差分析,P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
感染重組慢病毒液后72 h,在熒光顯微鏡下及倒置相差顯微鏡下,觀察細(xì)胞形態(tài)和熒光表達(dá)情況,熒光表達(dá)率約為75%。光鏡下觀察發(fā)現(xiàn),細(xì)胞仍保持長梭形外觀和貼壁能力(圖1)。
圖1 重組慢病毒液感染后大鼠BMSCs(左:光學(xué)顯微鏡,40×;右:熒光顯微鏡, 40×)Fig.1 Morphological observation of rat BMSCs infected by recombinant virus supernatant.(Left:Light microscope,40×;Right:Fluorescence microscope,40×)
MSC-hTERT組的hTERT基因mRNA表達(dá)明顯高于MSC組和MSC-GFP組,差異顯著(P<0.05)。MSC組與MSC-GFP組hTERT基因表達(dá)量無明顯差異(P>0.05)(圖 2)。
圖2 各組hTERT基因的mRNA相對(duì)表達(dá)量Fig.2 The relative expression of hTERT mRNA in three groups
采用流式細(xì)胞儀進(jìn)行細(xì)胞周期的檢測,比較MSC組及MSC-hTERT組細(xì)胞周期檢測結(jié)果,顯示MSC-hTERT組細(xì)胞G2期和S期細(xì)胞,較MSC組明顯增多,增殖指數(shù)明顯上升,分裂增殖潛力提升。體外傳代觀察發(fā)現(xiàn),MSC-hTERT組細(xì)胞傳代次數(shù)增多,細(xì)胞壽命較MSC組延長,且細(xì)胞形態(tài)得到較好保持(圖 3)。
圖3 MSC組及MSC-hTERT組細(xì)胞周期檢測Fig.3 Cell cycle analysis of MSC group and MSC-hTERT group
MSC-hTERT組CD29及CD90的陽性表達(dá)率分別高達(dá)99.83%和99.53%,而CD34及CD45的陽性表達(dá)率僅為0.05%和0.13%(圖4)。
圖4 MSC-hTERT組細(xì)胞表型的流式細(xì)胞儀檢測結(jié)果Fig.4 The expression of surface markers in MSC-hTERT group detected by FCM
通過成脂、成骨誘導(dǎo)以及特異性染色檢測,MSC-hTERT組細(xì)胞仍然保持了多向分化潛能,在特異性誘導(dǎo)劑的作用下,可向脂肪細(xì)胞以及成骨細(xì)胞方向轉(zhuǎn)化,而對(duì)照組均未見陽性染色結(jié)果(圖5)。
圖5 MSC-hTERT組細(xì)胞成脂及成骨分化誘導(dǎo)結(jié)果(左:油紅O 染色, 200×;右:茜素紅染色, 200×)Fig.5 Histological observation of cells in MSC-hTERT groups after adipogenic and osteogenic induction(Oil red O staining,200×;Alizarin red staining of group,200×)
BMSCs具有很強(qiáng)的自我增殖能力,且能分泌很多細(xì)胞因子,經(jīng)誘導(dǎo)可向成骨細(xì)胞、脂肪細(xì)胞、神經(jīng)樣細(xì)胞[5]、血管內(nèi)皮細(xì)胞[6]等分化,并行使相應(yīng)功能,但由于缺乏端粒酶活性,其生存時(shí)間以及分化能力會(huì)隨著細(xì)胞的增殖分裂而受到影響。hTERT決定著人端粒酶的活性。研究表明,轉(zhuǎn)入外源性的hTERT可以提高細(xì)胞端粒酶活性[7],使細(xì)胞增殖分裂能力增強(qiáng),甚至可使細(xì)胞永生化。因此,通過外源性轉(zhuǎn)入hTERT基因,恢復(fù)或者增加細(xì)胞的端粒酶活性,構(gòu)建穩(wěn)定表達(dá)hTERT的細(xì)胞系,對(duì)于維持BMSCs的分化增殖能力、延長壽命提供了新的方向,有望為組織工程和細(xì)胞移植治療儲(chǔ)備具有旺盛增殖能力的種子細(xì)胞。
本研究運(yùn)用前期實(shí)驗(yàn)獲得的重組慢病毒液和空病毒液,分別感染大鼠BMSCs,發(fā)現(xiàn)MSC-hTERT組能穩(wěn)定表達(dá)綠色熒光,并且其hTERT基因的mRNA表達(dá)明顯高于MSC組及MSC-GFP組,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);而在細(xì)胞周期的檢測中,MSC-hTERT組的細(xì)胞增殖指數(shù)相較于MSC組有明顯上升,提示具有復(fù)制潛力和分裂能力的細(xì)胞明顯增多;而體外傳代次數(shù)的增加,以及細(xì)胞形態(tài)能夠在較長時(shí)間內(nèi)保持原有特征等結(jié)果,也提示了異位表達(dá)hTERT能夠上調(diào)細(xì)胞周期,通過DNA修復(fù)基因,使得細(xì)胞具有繞過危機(jī)期、延長壽命的能力[8]。
實(shí)驗(yàn)中所選用的細(xì)胞是否保持其原有生物學(xué)特性對(duì)于實(shí)驗(yàn)結(jié)果具有重要意義,由于不具備特異性表面標(biāo)記分子,對(duì)MSCs的直接鑒定通常存在一定困難[9],本實(shí)驗(yàn)對(duì)MSC-hTERT組細(xì)胞進(jìn)行了細(xì)胞形態(tài)、細(xì)胞表面標(biāo)記物及定向分化能力的檢測,結(jié)果顯示MSC-hTERT組細(xì)胞仍能保持長梭形外觀,并能夠表現(xiàn)出BMSCs特有的貼壁能力,同時(shí)高表達(dá)CD29及CD90,低表達(dá)CD34及CD45,符合骨髓源性間充質(zhì)干細(xì)胞的特性。在定向分化研究中,轉(zhuǎn)染hTERT的BMSCs在誘導(dǎo)因子作用下能夠顯示出向骨細(xì)胞以及脂肪細(xì)胞分化的特性,提示MSC-hTERT具有與原代培養(yǎng)BMSCs相同的體外分化潛能。
本研究利用慢病毒載體將hTERT基因成功導(dǎo)入大鼠BMSCs并成功構(gòu)建MSC-hTERT,細(xì)胞的增殖分裂能力得到明顯加強(qiáng),且仍然保持與BMSCs相同的生物學(xué)特性,可為組織工程研究及細(xì)胞移植治療提供可靠的種子細(xì)胞。
雖然hTERT介導(dǎo)的永生化細(xì)胞系成瘤風(fēng)險(xiǎn)更低,但是基因改造后細(xì)胞可能存在的潛在致瘤性還是不容忽視的。已有研究提示,端粒酶活性已成為腫瘤檢測的一個(gè)新標(biāo)志[10],同時(shí)異常表達(dá)的hTERT與多項(xiàng)腫瘤成正相關(guān)[11-12]。因此,轉(zhuǎn)染hTERT的大鼠BMSCs的成瘤風(fēng)險(xiǎn)評(píng)估,以及相關(guān)體內(nèi)實(shí)驗(yàn),是進(jìn)一步研究的重點(diǎn)。
[1] 李佳濱,張文杰,崔福齋,等.P17-BMP2多肽促進(jìn)大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞成骨分化的實(shí)驗(yàn)研究[J].組織工程與重建外科雜志,2012,8(2):65-68.
[2] 馬迪,嚴(yán)佶祺,張明鈞,等.骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞促進(jìn)大鼠小體積肝移植后肝再生的實(shí)驗(yàn)研究[J].肝膽外科雜志,2012,20(4):301-303,316.
[3] Yuan J,Yang BM,Zhong ZH,et a1.Upregulation of survivin during immortalization ofnontransformed human fibroblasts transduced with telomerase reverse transcriptase[J].Oncogene,2009,28(29):2678-2689.
[4] 馬迪,嚴(yán)佶祺,彭承宏,等.構(gòu)建攜帶hTERT基因的慢病毒重組載體及其包裝和表達(dá)[J].組織工程與重建外科,2013,9(2):85-88.
[5] Wang Y,Deng Z,Lai X,et al.Differentiation of human bone marrow stromal cells into neural-like cells induced by sodium ferulate in vitro[J].Cell Mol Immunol,2005,2(3):225-229.
[6] 方利君.骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞分化為血管內(nèi)皮細(xì)胞的實(shí)驗(yàn)研究[J].中華燒傷雜志,2003,19(1):22-24.
[7] Li NF,Broad S,Lu YJ,et a1.Human ovarian surface epithelial cells immortalized with hTERT maintain functional pRb and p53 expression[J].Cell Prolif,2007,40(5):780-794.
[8] Liu TM,Ng WM,Tan HS,et al.Molecular basis of immortalization of human mesenchymal stem cells by combination of p53 knockdown and human telomerase reverse transcriptase overexpression[J].Stem Cells Dev,2013,22(2):268-278.
[9] Dominici M,Le BK,Mueller I,et al.POSITION PAPER:Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells.The International Society for Celluar Therapy position statement[J].Cytotherapy,2006,8(4):315-317.
[10] Bzarov AV,Hines WC,Mukhopadhyay R,et al.Telomerase activation by c-Myc in human mammary epithelial cells requires additional genomic changes[J].Cell Cycle,2009,8(20):3373-3378.
[11] 張業(yè)偉,牛堅(jiān),趙何偉,等.干細(xì)胞表面標(biāo)志物CD90及端粒酶逆轉(zhuǎn)錄酶在原發(fā)性肝癌中的表達(dá)及臨床意義[J].中華肝膽外科雜志,2012,18(1):37-39.
[12] Le S,Zhu JJ,Anthony DC,et al.Telomerase activity in human gliomas[J].Neurosurgery,1998,42(5):1120-1124.