張秀英 宋瑞清 理永霞等
摘要[目的] 研究潰瘍病菌誘導(dǎo)下毛白楊防御相關(guān)基因的應(yīng)答反應(yīng)。[方法] 以毛白楊為試驗材料,用潰瘍病菌對7月齡幼苗進行接種,提取誘導(dǎo)前后的毛白楊樹皮mRNA,通過反轉(zhuǎn)錄生成cDNA,構(gòu)建72 h差異表達的SSHcDNA文庫。隨機挑選199個陽性克隆進行測序,將測序結(jié)果與NCBI基因庫中序列進行比較,并對這些EST在dbEST數(shù)據(jù)庫進行同源檢索分析,利用RTqPCR對文庫中7個基因進行進一步分析。[結(jié)果] 172個EST找到了同源序列,其中有32個序列與防御相關(guān)。在毛白楊受到潰瘍病菌誘導(dǎo)時,這些防御基因的表達量明顯上升。[結(jié)論]該研究為開展毛白楊抗?jié)儾≈匾δ芑虻目寺『丸b定奠定了基礎(chǔ)。
關(guān)鍵詞毛白楊;葡萄座腔菌;防御相關(guān)基因;抑制性消減cDNA文庫;實時熒光定量PCR
中圖分類號S763.13文獻標(biāo)識碼A文章編號0517-6611(2014)12-03555-04
基金項目林業(yè)公益性行業(yè)科研專項(201204501);中國林科院院部基金(CAFYBB2011005-4);科技部基礎(chǔ)性工作專項(2009FY210100)。
作者簡介張秀英(1977-),女,山東平原人,講師,在讀博士,從事分子生物學(xué)研究。*通訊作者,研究員,博士,博士生導(dǎo)師,從事森林病理學(xué)研究。
楊樹潰瘍病是一種慢性病,主要危害樹干,分布廣泛,嚴(yán)重影響了楊樹幼苗及幼樹的生長,已成為影響我國楊樹人工林發(fā)展的主要因素之一。目前,對楊樹-病原相互作用的分子機制研究主要集中在楊樹與銹菌[1-2]和楊樹與楊盤二孢菌[3]的相互作用研究,而對楊樹-潰瘍病菌的相互作用的分子機制研究較少[4],從基因組水平上研究病原菌的致病機理和機制更少。由于互作系統(tǒng)本身的復(fù)雜性,要探究植物與病原菌互作的響應(yīng)機制,闡明其中的分子機理,需要進一步深入開展關(guān)于基因調(diào)控機理方面的研究。
Diatchenko等[5]建立以PCR為基礎(chǔ)的差減雜交技術(shù),具有高靈敏性、目的序列富集程度高、操作簡便、豐度相對一致等優(yōu)點。該技術(shù)因其顯著特點受到廣泛關(guān)注,已成為差異表達基因的有效分離方法,迄今為止在林木病害研究中已有許多報道[6-7]。筆者用潰瘍病高抗品種毛白楊作為試驗材料,接種潰瘍病菌(Botryosphaeria dothidea)72 h后構(gòu)建cDNA文庫,同時利用獲得的EST測序結(jié)果進行實時PCR驗證,進一步研究楊樹樹皮在潰瘍病菌誘導(dǎo)后的基因表達情況。
1 材料與方法
1.1 供試材料
1.1.1植物材料。毛白楊(Populus tomentosa Carr.),高抗樹種,15年生,感病指數(shù)為0~6.0[8],生長于中國林業(yè)科學(xué)院內(nèi),采摘1年生健康枝條,扦插1個月苗木生根后,挑選生長狀態(tài)一致的幼苗進行定植,幼苗長至7月齡時用于試驗。
1.1.2 病原菌及接種方法。試驗菌株為Botryosphaeria dothidea菌株,菌株號為CXY001,分離于楊樹潰瘍病斑,經(jīng)單孢培養(yǎng)鑒定,再回接,以此確認(rèn)致病性(致病力中等),保存于中國林科院菌種保藏中心。試驗前,先將病原菌活化,參考趙仕光等的接種方法并稍加修改[9]。接種72 h后取樣,截取病健交界處0.5 cm×1.0 cm長條形樹苗干部樹皮(帶形成層),約每500 mg樣品用錫鉑紙包成1包后,迅速投入液氮中,于-80 ℃下貯存?zhèn)溆茫▓D1)。對照采用接種無菌培養(yǎng)基后72 h取樣。
1.2試驗方法
1.2.1 總RNA提取及mRNA的純化。采用鼎國公司的植物RNA提取試劑盒提取毛白楊樹皮的總RNA,使用Plant RNAzol試劑盒提取真菌的總RNA,使用微量紫外分光光度計進行RNA定量測定,利用Promega公司的mRNA分離純化試劑盒[PolyA Tract SystemsⅢ(Z5300)]分離純化mRNA,通過電泳檢測其完整性。
1.2.2 構(gòu)建抑制差減文庫及重組子的鑒定。利用Clontech公司的抑制性消減雜交文庫構(gòu)建試劑盒(PCRSelectTM cDNA Subtraction Kit)構(gòu)建潰瘍病菌誘導(dǎo)毛白楊72 h的差減文庫。在試驗過程中以真菌接種處理的楊樹樹皮作為試驗方(Tester);參照方(Driver)一部分來源于培養(yǎng)基處理的楊樹樹皮的mRNA,一部分來源于培養(yǎng)基培養(yǎng)的真菌mRNA(圖2)。將消減雜交反應(yīng)后得到的cDNA與 pMD19T載體連接,導(dǎo)入感受態(tài)細(xì)胞,振蕩培養(yǎng),將轉(zhuǎn)化菌涂在含有Amp抗性的LB平板上,37 ℃下培養(yǎng)16 h,通過藍白斑篩選挑出陽性克隆,加入96孔細(xì)胞培養(yǎng)板中(含有Amp/LB液體培養(yǎng)基),搖床培養(yǎng)。吸取菌液,PCR擴增,檢測插入片段的大小。
注:a.B. dothidea菌誘導(dǎo)毛白楊 72 h,作為試驗方;b.培養(yǎng)72 h的菌絲;c.PDA培養(yǎng)基誘導(dǎo)毛白楊72 h。將培養(yǎng)72 h的菌絲與PDA培養(yǎng)基誘導(dǎo)72 h的毛白楊按1∶1(mRNA)的比例混合,作為參照方。
1.2.3 抑制消減雜交文庫測序及序列分析。抑制消減雜交文庫測序由鼎國公司完成,將獲得的EST序列進行EST前處理,剔除不符合要求的序列,然后遞交NCBI網(wǎng)站,通過NCBI網(wǎng)站上的BLAST(或者BLASTN)序列比對工具,在GenBank 的dbEST數(shù)據(jù)庫上對EST序列進行同源檢索分析。
1.2.4 Realtime PCR定量檢測。使用7月齡苗木進行接種試驗。以不接種潰瘍病菌毛白楊苗木作為對照方,以接種潰瘍病菌的毛白楊作為測試方,分別于接種后12、24、48、72、96和144 h取樣,剪取對照和接種材料的樹皮置于液氮中,-80 ℃下保存?zhèn)溆?。每個接種時間處理5株毛白楊,重復(fù)3次。
以EF1α作為內(nèi)參基因,根據(jù)內(nèi)參基因設(shè)計特異性引物,依此來設(shè)計PCR反應(yīng)的循環(huán)數(shù)及目的基因擴增的模板量。使用SYBR GREEN PCR MasterMix(TOYOBO)試劑盒進行熒光實時定量RTPCR,在7500循環(huán)儀(Biorad)進行實時定量PCR反應(yīng)。Realtime PCR 反應(yīng)體系包括2×SYBR Green Supermix(Qiagen)15 μl、正向和反向引物各0.5 μl,cDNA模板2 μl。PCR 反應(yīng)條件為:95 ℃ 10 min;94 ℃ 20 s,60 ℃ 1 min,72 ℃ 1 min,45個循環(huán)。采用2-ΔΔCT法對實時定量PCR結(jié)果進行定量分析,引物見表1。
2結(jié)果與分析
2.1 酶切效果分別取2 μg試驗方和參照方的mRNA,經(jīng)反轉(zhuǎn)錄生成雙鏈cDNA,經(jīng)限制性內(nèi)切酶RsaⅠ酶切,結(jié)果表明RsaⅠ酶切后酶切的cDNA 大小范圍明顯小于未酶切的cDNA,說明酶切完全,符合試驗要求,可以用于差減文庫的構(gòu)建(圖3)。
2.2文庫篩選及插入片段大小 RsaⅠ酶切后進行接頭連接和2輪雜交,接著進行2輪抑制PCR,參照方和試驗方的大部分共有序列已被差減消除,不同表達序列得到進一步富集。隨機挑取100個克隆進行質(zhì)粒抽提,再進行PCR擴增和凝膠電泳,其中有95個存在有效產(chǎn)物??寺〉牟迦肫未笮》秶鸀?00~500 bp,與SSH預(yù)期插入片段的大小吻合。
2.3抑制差減文庫差減效率分析經(jīng)2次差減后的內(nèi)參Tub基因,在經(jīng)過28個循環(huán)后,隱約可見擴增條帶,比未差減對照(經(jīng)23個循環(huán)出現(xiàn)清晰的目的條帶)出現(xiàn)擴增條帶的時間晚,說明了經(jīng)過2次抑制PCR后只保留了試驗方受潰瘍病菌侵染后,誘導(dǎo)表達的基因,試驗方和參照方中共同轉(zhuǎn)錄的基因得到了有效扣除(圖4)。
2.5目標(biāo)基因表達模式的Realtime PCR分析從構(gòu)建的文庫中選取7個基因(蛋白),利用實時定量PCR分析其在6個時間點(12、24、48、72、96 和144 h)的表達情況。從圖5可以看出,CXY1446、CXY0504、CXY1313和CXY142這4個基因在潰瘍病菌菌誘導(dǎo)后表達趨勢基本一致,即誘導(dǎo)12 h后表達水平升高;隨著誘導(dǎo)時間的增長,這4個基因的表達水平也隨之升高;CXY0112、CXY1804和CXY1727這3個基因的變化趨勢基本相同,即在潰瘍病菌菌誘導(dǎo)12 h 后這3個基因的表達水平都下降;誘導(dǎo)24 h 后隨著誘導(dǎo)時間的增加,基因表達量逐漸升高,其中CXY0112基因的表達水平增加了90倍。
3 討論
抑制差減雜交技術(shù)是從基因組水平研究差異表達基因的重要方法之一,已經(jīng)成功應(yīng)用于多種植物中[10-13]。筆者通過抑制差減雜交技術(shù)分析了潰瘍病菌誘導(dǎo)毛白楊后基因的表達情況,從中獲得了一些可能參與防御的候選基因。
在生物體的多種代謝反應(yīng)中,苯丙烷代謝與抗病反應(yīng)有著緊密關(guān)系,而細(xì)胞色素P450恰恰是這個途徑的關(guān)鍵酶。該研究P450(CXY1804)表達水平先升后降,誘導(dǎo)24 h后表達水平持續(xù)穩(wěn)定增長,表明在這個誘導(dǎo)過程中毛白楊接收了脅迫信號,對抗?jié)儾』蜻M行調(diào)控。P450可以通過催化合成與抗病相關(guān)的次生代謝物[14](如木質(zhì)素和植保素),進而產(chǎn)生與病原菌誘導(dǎo)和抗?jié)儾∠嚓P(guān)的基因或物質(zhì)。與病程相關(guān)的另一個重要的蛋白-幾丁質(zhì)酶與植物抗病原微生物有關(guān)[15]。幾丁質(zhì)酶能夠毀壞病原真菌細(xì)胞壁新沉積的物質(zhì),以至病原真菌死亡,并刺激了寄主的抗病反應(yīng),使寄主做出相應(yīng)的防衛(wèi)反應(yīng)。該研究中CXY0415屬于此類蛋白。幾丁質(zhì)酶還可以與β1,3葡聚糖酶協(xié)同作用,激發(fā)植物多種抗病反應(yīng),誘導(dǎo)抗病防衛(wèi)反應(yīng)的產(chǎn)生[16]。該研究中CXY1313屬于此類,其表達水平一直處于上升趨勢,說明當(dāng)潰瘍病菌侵染毛白楊樹皮時,β1,3葡聚糖酶與幾丁質(zhì)酶這2種酶共同作用,發(fā)揮了對病原菌的抵抗,抑制了病原菌的生長。
肌動蛋白(Actin)是真核生物中一種重要的蛋白質(zhì),大量積累在附著胞形成處,可以阻止病原菌侵入[17-18]。該研究中肌動蛋白因子7 (ADF7)(CXY0112)在初始階段表達水平很低,誘導(dǎo)48 h后表達逐漸增加,144 h達到最高,是初始90倍,大量積累,以更好地抵制病原菌侵入。鋅指蛋白(CXY1421)屬于細(xì)胞信號傳遞基因,可以將潰瘍病菌的誘導(dǎo)信號傳遞給寄主毛白楊[19];鈣信使(CXY0504)除了傳遞信號外,還參與并調(diào)節(jié)基因表達,增強Active oxygen的產(chǎn)生,更加有效抵抗外來病菌的入侵[20-21]。鋅指蛋白和Ca2+作為抗病反應(yīng)信號,在生物體內(nèi)是相輔相成、相互作用的,互相接受和傳遞信號。胡豆合酶(CXY0511)是吲哚生物堿合成途徑中注:a.CXY1313;b.CXY1446;c.CXY0504;d.CXY1804;e.CXY1421;f.CXY1727;g.CXY0112。
圖5實時熒光定量RT-PCR 結(jié)果重要的中間產(chǎn)物,也參與植物的防御反應(yīng)[22]。
植物蛋白酶抑制劑[23-24]已在西紅柿、農(nóng)作物大豆及栗屬植物中被發(fā)現(xiàn),且防御功能廣泛存在。在毛白楊被潰瘍病菌誘導(dǎo)后,半胱氨酸蛋白酶抑制劑(CXY1727)的表達持續(xù)升高,主要是抑制葉片中衰老基因的表達,間接延長了寄主毛白楊的壽命,抑制了病原菌的生長繁殖,反映了蛋白抑制劑在植物防御反應(yīng)中的功能;筆者還發(fā)現(xiàn)Kunitz TI3(CXY1446)抑制劑,在銹菌侵染顫楊和雜交楊中寄主表現(xiàn)出對銹菌的抗性[25-26]。隨著潰瘍病菌侵入時間的增長,此抑制劑的表達量也迅速增加。
綜上所述,抑制差減雜交技術(shù)是一種高通量檢測基因差異表達的方法。該研究獲得了一些防御的候選基因,為今后研究楊樹與潰瘍病抗性提供分子依據(jù),為揭示此類病害發(fā)生的機理和病菌的侵染機制具有重要的意義。
參考文獻
[1] DAVID L J,HACQUARD S,F(xiàn)EAU N,et al.Chasing effectors in the secretome of Melampsora laricipopulina[J].Biology of Plantmicrobe Interactions,2010,7:1-6.
[2] HACQUARD S,DUPLESSIS S,DELARUELLE C,et al.Melampsora laricipopulina Transcript Profiling During Germination and Timecourse Infection of Poplar Leaves Reveals Dynamic Expression Patterns Associated with Virulence and Biotrophy[J].MPMI,2011,24:808-818.
[3] 曾友志.楊樹黑斑病病原-楊生褐盤二孢菌分泌蛋白及效應(yīng)因子研究[D].南京:南京林業(yè)大學(xué),2012.
[4] 理永霞.楊樹與潰瘍病菌(Botryosphaeria dothidea)互作機制[D].南京:南京林業(yè)大學(xué),2011.
[5] DIATCHENKO L,LAUY F C,CAMPBELL A P,et al.Suppression subtractivehy bridization:a method for generating differentially regulated or tissue specific cDNA probes and libraries [J].Proc Natl Acad,Sci USA,1996,93(12):6025-6030.
[6] MIRELLA A,VOLKER J,BRIAN B,et al.Identification and monitoring of Ulmus americana transcripts during in vitro interactions with the Dutch elm disease pathogen Ophiostoma novoulmi[J].Physiological and Molecular Plant Pathology,2010,5:1-13.
[7] SIMONA M S,LEONARDO S,ANNALISA D G,et al.Characterization of genes associated with induced resistance against Penicillium expansum in apple fruit treated with quercetin[J].Postharvest Biology and Technology,2010,56(1):1-11.
[8] 楊俊秀,李武漢,符毓秦,等.抗?jié)儾顦浞N類的調(diào)查研究[J].西北林學(xué)院學(xué)報,1990,5(4):1-10.
[9] 趙仕光,朱瑋,岳紅艷.潰瘍病菌在楊樹樹皮組織中的擴展和對寄主細(xì)胞超微結(jié)構(gòu)的影響[J].林業(yè)科學(xué)研究,1999,12(2):118-126.
[10] AGUILARHERNNDEZ H S,SANTOS L,LENGALVN F,et al.Identification of calcium stress induced genes in amaranth leaves through suppression subtractive hybridization[J].Journal of Plant Physiology,2011,168:2102-2109.