• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看 ?

      土壤微生物對黃花蒿凋落物或青蒿素的響應

      2016-01-28 03:35:45李倩袁玲楊水平黃建國
      草業(yè)學報 2015年9期
      關(guān)鍵詞:土壤微生物青蒿素

      李倩,袁玲,楊水平,黃建國

      (西南大學資源環(huán)境學院,重慶 400716)

      土壤微生物對黃花蒿凋落物或青蒿素的響應

      李倩,袁玲,楊水平,黃建國*

      (西南大學資源環(huán)境學院,重慶 400716)

      摘要:黃花蒿主要通過植株殘體向土壤釋放化感物質(zhì),影響土壤肥力和生產(chǎn)力。本試驗開展了土壤微生物對黃花蒿凋落物和青蒿素的響應研究。結(jié)果表明,在土壤中添加黃花蒿凋落物和青蒿素,真菌數(shù)量增加,但顯著降低放線菌、自生固氮菌、硝化細菌和亞硝化細菌的數(shù)量,不利于土壤有機質(zhì)礦化,生物固氮和硝化作用。黃花蒿凋落物和青蒿素降低微生物熵,增大代謝熵,說明土壤微生物代謝受到干擾,活性降低。此外,黃花蒿凋落物和青蒿素還使土壤微生物標記性磷脂脂肪酸總量和種類以及細菌、放線菌和原生動物標記性磷脂脂肪酸減少,選擇性地抑制了土壤微生物的繁殖生長。在黃花蒿凋落物、青蒿素和對照(不加凋落物和青蒿素)的土壤中,微生物種群結(jié)構(gòu)差異顯著,黃花蒿凋落物和青蒿素降低微生物多樣性和均勻度指數(shù)。因此,在大規(guī)模集約化種植黃花蒿的過程中,進入土壤的凋落物抑制有益微生物生長繁殖,改變土壤微生物群落結(jié)構(gòu),種群減少,密度降低,這可能是黃花蒿抑制后茬和周圍植物生長,進而造成減產(chǎn)的重要原因之一。

      關(guān)鍵詞:凋落物;黃花蒿;青蒿素;土壤微生物;磷脂脂肪酸

      Responses of soil microorganisms toArtemisiaannualeaf litter or artemisinin

      LI Qian, YUAN Ling, YANG Shui-Ping, HUANG Jian-Guo*

      CollegeofResourcesandEnvironment,SouthwestUniversity,Chongqing400716,China

      Abstract:Artemisia annua releases many kinds of allelochemicals into soils via dead plant residues, either by rain leaching or root exudation. Dead leaves of A. annua contribute more than 80% of the total artemisinin that enters soils during the growth period of A. annua. Allelochemicals released by the dead leaves reduce the growth and yields of succeeding and adjacent crops. Soil microbes play roles in nutrient transformation, organic matter recycling, toxicant decomposition, and hormone efflux, and thus, are important for plant growth and development. However, little is known about the effects of these allelochemicals on soil microorganisms. In these experiments, artemisinin and A. annua leaf litter were each added to soil and changes in microbial biomass and community structure were evaluated. The growth and reproduction of culturable microorganisms in soils showed wide variations in response to A. annua leaf litter or artemisinin. For example, the number of fungi increased but the numbers of actinomycetes, azotobacteria, nitrobacteria, and nitrite bacteria significantly decreased in soils containing A. annua leaf litter or artemisinin. The results suggested that both leaf litter or artemisinin inhibited organic matter mineralization, nitrogen bio-fixation, mobilization of phosphorus and potassium, and nitrification. The soil microbial quotient decreased, while the metabolic quotient increased, after A. annua and artemisinin were added to soils. This result indicated that artemisinin and other allelochemicals in the leaf litter interfered with the metabolism of soil microorganisms. The types and total contents of signature phospholipid fatty acids of microbes such as actinomycetes and protozoa decreased in soils containing leaf litter or artemisinin. The diversity and evenness indices of the microbial community also decreased, suggesting that the soil microbial ecosystem deteriorated as the densities of various microbial groups decreased. Therefore, artemisinin and allelopathic chemicals released from A. annua leaf litter affect the microbial community structure in soils, and may pose a risk to soil ecosystems in the areas where A. annua is widely cultivated. Further research is required to clarify the mechanisms by which allelopathic chemicals from A. annua change the structure of microbial communities in soil.

      Key words:litter; Artemisia annua; artemisinin; soil microorganism; PLFAs

      黃花蒿(Artemisiaannua)屬菊科草本植物,俗名青蒿,在我國已有兩千多年的藥用歷史,是提取抗瘧疾的首選藥物——青蒿素的唯一原料藥材[1]。在黃花蒿生長過程中,主要通過植株殘體(貢獻率>80%)向土壤生態(tài)系統(tǒng)釋放多種化感物質(zhì),如倍半萜類、黃酮類、香豆素類和揮發(fā)油類等[2-5]。其中,青蒿素和甲氧基黃酮最為豐富,直接或者間接抑制植物生長發(fā)育[3]。因此,大規(guī)模栽培黃花蒿嚴重影響周圍及后茬作物的生長發(fā)育,造成大幅度減產(chǎn)甚至絕收[6]。

      Dhingra等[7]發(fā)現(xiàn),青蒿素及其合成前體——青蒿酸能夠抑制發(fā)根農(nóng)桿菌(Agrobacteriumrhizogenes)、枯草芽孢桿菌(Bacillussubtilis)和銅綠假單胞菌(Pseudomonasaeruginosa)的生長。青蒿油能有效殺滅金黃色葡萄球菌(Staphylococcusaureus)、表皮葡萄球菌(Staphylococcusepidermidis)、銅綠假單胞菌(Pseudomonasaeraginosa)和芽孢桿菌(Bacillus)[8]。將青蒿素加入種植和未種植黃花蒿的土壤中,后者的細菌數(shù)量比前者降低51%,說明青蒿素選擇性地抑制了土壤細菌的生長繁殖[9]。醫(yī)學研究表明,青蒿素干擾細菌生理代謝,其臨界濃度極低,2.4 mg/kg就會產(chǎn)生明顯作用[10]。進入土壤中的青蒿素分解緩慢,35~60 d后仍然高于檢測極限[11],對土壤微生物產(chǎn)生持續(xù)作用??傊?,黃花蒿釋放的化感物質(zhì)影響土壤微生物的群落結(jié)構(gòu),但有關(guān)研究尚待深入。

      土壤是植物生長的場所,亦是土壤微生物天然的培養(yǎng)基,微生物釋放多種土壤酶,驅(qū)動有機質(zhì)降解、腐殖質(zhì)合成、養(yǎng)分循環(huán)、污染物降解等生物化學過程與有機質(zhì)礦化,是土壤肥力和生產(chǎn)力的基本要素之一。在此基礎(chǔ)上,本文研究黃花蒿凋落物和青蒿素對土壤微生物群落結(jié)構(gòu)的影響,為降低黃花蒿的化感效應和保持土地生產(chǎn)力提供理論依據(jù)。

      1材料與方法

      1.1 供試材料

      供試土壤為重慶市典型、具有代表性的灰棕紫泥,中壤質(zhì)地、pH 6.13、有機質(zhì)14.72 g/kg、全氮1.12 g/kg、全磷0.54 g/kg、全鉀16.22 g/kg、堿解氮28.27 mg/kg、有效磷19.07 mg/kg、速效鉀92.57 mg/kg。采集0~20 cm耕作層,揀去雜物,過3 mm 篩,加水至最大田間持水量的(70±2)%。土壤加入葡萄糖6 mg/kg,培養(yǎng)24 h,活化微生物,再加入400 mg 尿素混勻,取500 g土壤置于750 mL聚乙烯盒中。

      田間采集黃花蒿新鮮凋落物(主要為葉片和葉柄,內(nèi)含10.5 mg青蒿素/g),涼干,粉碎過1 mm篩。青蒿素購自重慶市中藥研究院(純度≥95%)。

      1.2 試驗設(shè)計

      2013年,在黃花蒿生育期,進入土壤的凋落物總量可達2.4 g/kg (0~10 cm)~4.8 g/kg (0~5 cm)[12-14], 約等于24~48 mg 青蒿素/kg干土。因此,在每kg供試土壤中,分別加入2.4和4.8 g黃花蒿凋落物,以及24和48 mg 青蒿素,混合均勻,不加凋落物和青蒿素的為對照,依次用A1、A2、A3、A4和CK表示。(28±1)℃恒溫培養(yǎng)20 d(在土壤中,青蒿素的半衰期為0.9~13 d)[11]。備測有關(guān)項目,試驗設(shè)置6次重復。

      1.3 測定項目與方法

      培養(yǎng)結(jié)束后,利用稀釋平板分離計數(shù)法測定土壤中的細菌(牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基)、真菌(馬丁氏培養(yǎng)基)、放線菌(高氏一號培養(yǎng)基),自生固氮菌(Ashby無氮培養(yǎng)基);MPN法測定土壤氨化細菌(蛋白胨瓊脂培養(yǎng)基)、亞硝化細菌(改良Stephenson培養(yǎng)基A)和硝化細菌數(shù)量(Stephenson改良培養(yǎng)基B)[15];土壤微生物生物量采用氯仿熏蒸-0.5 mol/L K2SO4提取,提取液中的微生物生物量碳用K2Cr2O7氧化法測定;土壤基礎(chǔ)呼吸采用室內(nèi)密閉培養(yǎng)-1 mol/L NaOH堿液吸收法測定; 微生物熵為微生物生物量碳與總有機碳的比值, 土壤微生物代謝熵(qCO2)即土壤微生物基礎(chǔ)呼吸與土壤微生物生物量碳之間的比值[16]。

      微生物磷脂脂肪酸(phosphorlipid fatty acids,簡稱PLFAs)的命名、提取和分析參照文獻[17-19]。操作步驟為:每個處理取3個重復,各重復取10 g 的新鮮土樣于50 mL的離心試管中,加入20 mL的0.2 mol/L的KOH甲醇溶液,混勻后 37℃溫育1 h,每10 min渦旋1次,確保磷脂脂肪酸釋放并甲脂化。加入3 mL 1 mol/L的醋酸溶液中和pH值后搖勻。加10 mL正己烷,800 r/min離心15 min后,經(jīng)N2將上層正己烷干燥后,溶解于1 mL體積分數(shù)為1∶1的正己烷甲基丁基醚溶液中,利用氣相色譜(Hewlett-Packard 6890)測定其含量。色譜條件為:HP-5MS(30 mm×0.25 mm×0.25 μm)石英毛細管色譜柱;升溫程序為 70℃ 保持 5 min,20℃/min升至190℃,保持1 min,5℃/min升到200℃,停留2 min,10℃/min升到280℃,保留8 min;進樣口溫度:250℃;載氣:He(0.9 mL/min);分流比:10∶1;離子源溫度:230℃;四極桿:150℃;質(zhì)譜全掃描范圍:30~600 m/z。以甲酯化的 C19:0(non-adecanoate)為內(nèi)標,Bacterial Acid Methyl Esters Mix (47080-U, Sigma-Aldrich)為外標,微生物標記性磷脂脂肪酸的分類見表1。

      表1 微生物標記性PLFAs分類

      注:i、a、cy和Me分別表示異丙基、反異丙基、環(huán)丙基和甲基分支脂肪酸;ω后跟的數(shù)字表示出現(xiàn)雙鍵的碳原子位序;c和t分別表示該雙鍵為順式構(gòu)型和反式構(gòu)型。

      Note: i, a, cy and Me areiso-, anteiso-,cyclopropylandmethylbranchingfattyacids,respectively.ω,candtrefertothealiphaticend, cis-andtrans-configurationsoffattyacids.

      1.4 數(shù)據(jù)處理

      用土壤PLFAs含量計算土壤微生物的種群特征值,包括多樣性指數(shù)、均勻度指數(shù)和優(yōu)勢度指數(shù)等。

      Pielou均勻度指數(shù)J′ 的計算公式為:J′=H′/lnS;

      其中,Pi=Ni/N,Ni為iPLFAs含量,N為微生物的PLFAs總量,S為PLFAs總含量[20]。

      用Excel 2007對試驗數(shù)據(jù)進行基本計算,SPSS 19.0進行統(tǒng)計分析。單因素方差分析(one way-ANOVA)檢驗不同處理間差異顯著性,CANOCO 4.5主成分分析(Principal Component Analysis,PCA)不同處理間土壤微生物群落結(jié)構(gòu)差異,顯著水平設(shè)置為P<0.05。

      2結(jié)果與分析

      2.1 土壤微生物數(shù)量

      由表2可知,加入黃花蒿凋落物后,土壤中的可培養(yǎng)細菌、真菌和氨化細菌數(shù)量增加,但放線菌、自生固氮菌、硝化細菌和亞硝化細菌數(shù)量減少;加入青蒿素后,土壤中的真菌數(shù)量顯著增加,氨化細菌無顯著變化,其余可培養(yǎng)微生物的數(shù)量均顯著下降,當青蒿素的濃度為4.8 mg/kg時,細菌、放線菌、自生固氮菌、硝化細菌和亞硝化細菌的數(shù)量分別下降61.9%,66.2%,77.3%,16.0%和52.6%。

      表2 不同處理對土壤微生物數(shù)量的影響

      注:在同一列中,平均值±標準差后不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05)。下同。

      Note: In each column, the average ± standard error (n=12) followed by different small letters are significantly different atP<0.05. The same below.

      2.2 土壤微生物活性

      由表3可知,加入黃花蒿凋落物之后,土壤呼吸強度相對于CK提高(A2)或無顯著變化(A1),微生物生物量碳和微生物熵顯著降低,微生物代謝熵增加。加入青蒿素之后,土壤微生物生物量碳、土壤呼吸強度和微生物熵相對于CK降低,微生物代謝熵提高。

      表3 土壤微生物活性

      表4 青蒿素和黃花蒿凋落物處理土壤中微生物PLFAs含量

      注:在同一行中,有不同小寫字母者表示差異顯著(P<0.05),下同。

      Note: Data followed by different small letters in the same row are significantly different atP<0.05.The same below.

      2.3 微生物磷脂脂肪酸(PLFAs)

      由表4可知,在CK、A2和A4處理土壤中,分別檢測出33、29和26種標記性PLFAs,包括代表細菌的12:00、a14:0、14:00、i14:0、15:02OH、15:03OH、a15:0、i15:0、i15:1、16:00、10Me16:0、a16:0、i16:0、16:12OH、16:01、16: 1ω9c、17:00、a17:0、cy17:0、i17:0、i17:03OH、18:00、i18:0、11Me18:1w7c、Cy19:0w8c、i19:0、20:00和20:1w9c,代表放線菌的10Me 17:0和10Me18:0,代表真菌的18:1w9c 和18:3w6c (6,9,12),以及代表原生動物的20:4w6,9,12,15c。

      從PLFAs總量看,CK最高,達到920.00 μg/g,A2次之,為668.37 μg/g,A4最低,僅485.00 μg/g。加入黃花蒿凋落物和青蒿素之后,代表G+細菌的PLFAs降低了38.6%~56.3%,代表G-細菌的PLFAs降低了18.1%~44.5%,代表細菌(G-+G+)的PLFAs總量降低了30.5%~54.6%,代表原生動物的PLFAs降低了49.3%~74.7%,代表放線菌的PLFAs降低了34.6%~53.0%,代表真菌的PLFAs提高了47.0%~109.7%。

      在加入黃花蒿凋落物的土壤中,14:00、i14:0、15:0 3OH、i15:0、16:00、a16:0、i16:0、16:12OH、16: 1ω9c、17:00、a17:0、cy17:0、i17:03OH、i18:0、10Me18:0、11Me18:1w7c、20:00、20:1w9c和20:4w6,9,12,15c等PLFAs含量顯著下降,未檢測到a14:0、15:0 2OH、18:3w6c (69,12)和i19:0 4;12:00、 a15:0、i15:1、10Me16:0、16:01和18:00無顯著變化。在加入青蒿素的土壤中,未檢測到12:00、i14:0、15:0 2OH、i15:1、16: 1ω9c、18:3w6c (6,9,12)和i19:0 7;a15:0,i17:0和cy19:0w8c 無顯著變化;其余PLFAs顯著降低。但是,加入黃花蒿凋落物和青蒿素之后,代表真菌的18:1w9c含量顯著增加,G+/G-降低,真菌/細菌增加。

      2.4 微生物群落特征

      表5是利用PLFAs計算獲得的土壤微生物種群特征值。其中,多樣性指數(shù)和均勻度指數(shù)CK顯著高于A2和A4處理;相反,在A2和A4處理的土壤中,微生物的優(yōu)勢度指數(shù)變化于0.920~0.938之間,A2顯著高于CK (0.903)。

      2.5 土壤微生物群落PLFAs結(jié)構(gòu)分析

      圖1是不同處理的土壤中,微生物標記性PLFAs(相對含量大于2%)的主成分結(jié)構(gòu)變異。

      表5 利用PLFAs獲得的土壤微生物種群特征值

      圖1 土壤微生物群落磷脂脂肪酸組成的主成分分析Fig.1 Principal component analysis of PLFAs in soil microorganism communities

      其中,主成分PC1和PC2分別表示不同群落間92.6%和5.2%的變異度。代表CK、A2和A4不同處理的點在主成分坐標體系中分布距離較遠,CK位于右下方(象限IV),A4位于左下方(象限III),A2基本位于正上方。

      3討論

      青蒿素屬于倍半萜類化合物,主要在葉片中合成[21-22]。在黃花蒿生長過程中,葉片的凋落量可達葉片總量的34%,凋落葉片中含有大量的青蒿素及其合成前體——青蒿酸[7,12,23]。將黃花蒿凋落物加進土壤之后,在微生物的作用下分解釋放出青蒿素和青蒿酸。本項研究表明,在土壤中添加黃花蒿凋落物和青蒿素,可以選擇性地抑制或促進土壤微生物的生長繁殖。研究證明,黃花蒿提取物也選擇性地抑殺人畜病原微生物,如大腸桿菌(Escherichiacoli)、金黃色葡萄球菌(Staphylococcusaureus)、糞鏈球菌(Enterococcusfaecalis)、銅綠假單胞菌、肺炎克雷伯菌(Klebsiellapneumoniae)、白色念珠菌(Candidaalbicans)和黑曲霉(Aspergillusniger)等[7,23-27]。此外,黃花蒿凋落物和青蒿素也顯著抑制土壤放線菌、自生固氮菌、硝化細菌和亞硝化細菌的生長繁殖。放線菌參與土壤有機質(zhì)循環(huán),形成土壤結(jié)構(gòu),分泌抗生素[28];自生固氮菌不僅能生物固氮,而且還能分泌生長激素,活化土壤磷鉀[29-30];硝化細菌和亞硝化細菌參與土壤硝化作用,直接影響植物對氮的吸收利用[31]。因此,土壤有益微生物減少不利于植物生長發(fā)育,危害土壤健康功能。

      微生物代謝熵(qCO2)是土壤基礎(chǔ)呼吸強度與微生物生物量碳的比值,反映土壤微生物的碳源利用效率。代謝熵愈大,微生物呼吸消耗的碳源越多,用于構(gòu)造生物體的碳源越少,碳源的利用效率也越低[32]。抗生素和惡劣環(huán)境均能干擾微生物代謝活動,提高或降低呼吸強度,增大代謝熵,降低生長繁殖速率[33-34]。此外,青蒿素類衍生物可以通過抑制線粒體和質(zhì)膜上的電子傳遞呼吸鏈,致使線粒體膜去極化,活性氧及細胞色素C含量增加,最終誘導細胞凋亡[35]。將大量的黃花蒿凋落物(A2)加入土壤之后,提高土壤呼吸強度,高濃度的青蒿素(A4)可以降低土壤呼吸強度,但微生物代謝熵均顯著增加,表明青蒿素干擾了土壤微生物體內(nèi)的物質(zhì)和能量代謝,碳源利用效率降低,細胞構(gòu)建受到抑制,導致生長繁殖速率下降。這可能是加入黃花蒿凋落物和青蒿素之后,土壤放線菌、自生固氮菌、硝化細菌和亞硝化細菌數(shù)量減少,微生物標記性PLFA總量降低的重要原因之一。

      在對照、添加黃花蒿凋落物和青蒿素的土壤中,微生物標記性PLFAs分別為33、29和26種,說明黃花蒿凋落物和青蒿素使土壤微生物種群減少。其中,黃花蒿凋落物和青蒿素對標記性PLFAs的影響因微生物種類不同而異;代表細菌總量,G+/G-細菌、放線菌和原生動物等的標記性PLFAs不同程度地降低,真菌/細菌增加,說明黃花蒿凋落物和青蒿素選擇性地抑制了土壤微生物的生長繁殖,影響微生物的群落結(jié)構(gòu),與前人的研究結(jié)果一致[9]。青蒿素能有效殺滅引起人類瘧疾的原生動物——瘧原蟲,成為治療瘧疾的首選藥物[36],黃花蒿凋落物和青蒿素也使土壤原生動物標記性PLFAs降低。在土壤中,蚯蚓和線蟲等是最重要的原生動物。蚯蚓參與土壤有機質(zhì)轉(zhuǎn)化,結(jié)構(gòu)形成,還能分泌生長活性物質(zhì),與土壤肥力和生產(chǎn)力密切相關(guān),蚯蚓數(shù)量減少意味著土壤肥力和生產(chǎn)力降低。但是,線蟲通常引起植物根系病害,黃花蒿凋落物和青蒿素抑殺土壤線蟲,可以作為生物農(nóng)藥用于防治作物根系病害。因此,取利避害是黃花蒿集約化栽培中尚需研究的課題之一。

      土壤微生物群落PLFAs組成的主成分分析結(jié)果顯示,代表對照、添加黃花蒿凋落物和青蒿素處理的點在主成分坐標體系中分布于不同位置,且距離較遠,說明這3種土壤微生物群落結(jié)構(gòu)差異顯著。從它們的群落特征值來看,黃花蒿凋落物和青蒿素降低微生物群落的多樣性指數(shù)和均勻度指數(shù)。多樣性指數(shù)表示生物群落中的物種數(shù)量,數(shù)值愈大表示生物群落中的物種越豐富;均勻度指數(shù)越大,生物群落中的種群密度越高[37-38]。一般而言,在穩(wěn)定良好的生態(tài)環(huán)境中,有益于微生物的生長繁殖、種群增加、密度增大、多樣性指數(shù)和均勻度指數(shù)較高,反之亦然[39-40]。在加入黃花蒿凋落物和青蒿素的土壤中,微生物多樣性指數(shù)和均勻度指數(shù)降低,說明土壤環(huán)境惡化,微生物種群減少,密度降低。

      總之,黃花蒿凋落物和青蒿素對土壤微生物的影響因種類不同而異,它們的標記性PFLAs含量下降,種類減少,群落結(jié)構(gòu)改變,多樣性指數(shù)和均勻度指數(shù)降低。

      References:

      [1]Wang H Y, Peng R, Cui G L,etal. Study of spatial variability of artemisinin contents ofArtemisiaannuaL. in China. Southwest China of Journal of Agricultural Sciences, 2012, 25(3): 1417-1421.

      [2]Dayan F E, Hernandez A, Allen S N,etal. Comparative phytotoxicity of artemisinin and several sesquiterpene analogues. Phytochemistry, 1999, 50(4): 607-614.

      [3]Tang H Q, Hu J, Yang L,etal. Terpenoids and flavonoids fromArtemisiaspecies. Planta Medica, 2000, 66(4): 391-393.

      [4]Jessing K K, Cedergreen N, Mayer P,etal. Loss of artemisinin produced byArtemisiaannuaL. to the soil environment. Industrial Crops and Products, 2013, 43:132-140.

      [5]Lou S Q, Shi A D, Yuan L,etal. Changes in antimalarial compounds and antioxidation activities ofArtemisiaannuain response to fertilization. Acta Prataculturae Sinica, 2014, 23(1): 339-345.

      [6]Bohren C, Mermillod G, De Joffrey J P,etal. Allelopathy in the field: Artemisinin inArtemisiaannuaas a herbicide in various cash crops[A]. Zeitschrift Fur Pflanzenkrankheiten Und Pflanzenschutz-Journal of Plant Diseases and Protection, 2004: 263-270.

      [7]Dhingra V, Rao K V, Narasu M L. Current status of artemisinin and its derivatives as antimalarial drugs. Life Science, 2000, 66(4): 279-296.

      [8]Emadi F, Yassa N, Hadjiakhoondi A,etal. Sedative effects of IranianArtemisiaannuain mice: Possible benzodiazepine receptors involvement. Pharmaceutical Biology, 2011, 49(8): 784-788.

      [9]Herrmann S, Jessing K K, Jorgensen N O G,etal. Distribution and ecological impact of artemisinin derived fromArtemisiaannuaL. in an agricultural ecosystem. Soil Biology & Biochemistry, 2013, 57:164-172.

      [10]Slade D, Galal A M, Gul W,etal. Antiprotozoal, anticancer and antimicrobial activities of dihydroartemisinin acetal dimers and monomers. Bioorganic & Medicinal Chemistry, 2009, 17(23): 7949-7957.

      [11]Jessing K K, Cedergreen N, Jensen J,etal. Degradation and ecotoxicity of the biomedical drug artemisinin in soil. Environmental Toxicology and Chemistry, 2009, 28(4): 701-710.

      [12]Sun N X, Long L Y, Zhong G Y,etal. Effect of different soil water treatments on physiological characteristics and yield ofArtemisiaannua. China Journal of Chinese Materia Medica, 2009, 34(4): 386-389.

      [13]Wei X, Li F, Xu C Q,etal. The effect of different cultivation measures on yield and arteannuin content ofArtemisiaannuaL. Journal of Guangxi Academy of Sciences, 1999, 15(3): 132-136.

      [14]Yang S P, Yang X, Huang J G,etal. Effects of application of N , P and K and plant density on growth ofArtemisiaannuaand yield of artemisinin. China Journal of Chinese Materia Medica, 2009, 34(18): 2290-2295.

      [15]Zhou D Q. Microbiology Experiment (2nd edition)[M]. Beijing: Higher Education Press, 2006.

      [16]Lin X G. Principles and Methods of Soil Microbiology Research[M]. Beijing: Higher Education Press, 2010.

      [17]Si G H, Wang R, Yuan J F,etal. Effects of green manure application combined with chemical fertilizers on soil microbial community structure of tobacco-planting soil. Soils, 2013, 45(6): 1070-1075.

      [18]Frostegard A, Tunlid A, Baath E. Phospholipid fatty acid composition, biomass, and activity of microbial communities from two soil types experimentally exposed to diferent heavy metals. Applied and Environmental Microbiology, 1993, 59: 3605- 3617.

      [19]Kourtev P S, Ehrenfeld J G, Haggelom M. Exotic plant species alter the microbial community structure and function in the soil. Ecology, 2002, 83(11): 3152-3166.

      [20]Zhang Q F, Liu B, Lin Y Z,etal. The diversity of phospholipid fatty acid (PLFA) biomarker for the microbial community in soil. Acta Ecologica Sinica, 2009, 29(8): 4127-4137.

      [21]Duke M V, Paul R N, Elsohly H N,etal. Localization of artemisinin and artemisitene in foliar tissues of glanded and glandless biotypes ofArtemisia-annuaL. International Journal of Plant Scicences, 1994, 155(3): 365-372.

      [22]Tellez M R, Canel C, Rimando A M,etal. Differential accumulation of isoprenoids in glanded and glandlessArtemisiaannuaL. Phytochemistry, 1999, 52(6): 1035-1040.

      [23]Duke S O, Vaughn K C, Croom E M,etal. Artemisinin, a constituent of annual wormwood (Artemisiaannua), is a selective Phytotoxin. Weed Science, 1987, 35(4): 499-505.

      [24]Lydon J, Teasdale J R, Chen P K. Allelopathic activity of annual wormwood (Artemisiaannua) and the role of artemisinin. Weed Science, 1997, 45(6): 807-811.

      [25]Shoeb H A, Tawfik A F, Shibl A M,etal. Antimicrobial activity of artemisinin and its derivatives against anaerobic-bacteria. Journal of Chemotherapy, 1990, 2(6): 362-367.

      [26]Zhang X R, Peng G H, Chen G X,etal. Chemical constituents of volatile oil fromArtemisiaannuaresidue and their antibacterial activity. Chinese Traditional and Herbal Drugs, 2011, 42(12): 2418-2420.

      [27]Qu X Z, Chen Z A, Jin G Z. Effects of artemisinin on acute inflammation. Editorial Board of Journal of Medicical Science Yanbian University, 2012,35(4): 246-248.

      [28]Xin H M, Guo Z Y, Fan L X,etal. Diversity and antimicrobial activities of actinomycetes from pesticide-contaminated spots in Shandong Peninsula. Acta Microbiologica Sinica, 2012, 52(4): 435-441.

      [29]Meng X F, Long X H, Kang J,etal. Isolation and identification of endogenic nitrogen-fixing bacteria in the roots of Jerusalem artichoke (Helianthustuberosus). Acta Prataculturae Sinica, 2011, 20(6): 157-163.

      [30]Wang G R, Chen X R, Zhang J Z,etal. The temporal and spatial distribution of soil microorganism physiological floras in alpine shrubs of the eastern qilian mountains. Acta Prataculturae Sinica, 2011, 20(2): 31-38.

      [31]Xing X Y, Huang Y M, Shao A S,etal. Characteristics of physiological groups of soil nitrogen-transforming microbes in different vegetation types in the Loess Gully region, China. Acta Ecologica Sinica, 2013, 33(18): 5608-5614.

      [32]Yang X J, Wang Y S, Duan L D,etal. Changes of soil microbial biomass and enzymatic activities among restoration stages of Langshan Forest Park, Hunan Province. Acta Prataculturae Sinica, 2014, 23(1): 142-148.

      [33]Baath E. Effects of heavy-metals in soil on microbial processes and populations (a review). Water Air and Soil Pollution, 1989, 47(3-4): 335-379.

      [34]Ghollarata M, Raiesi F. The adverse effects of soil salinization on the growth ofTrifoliumalexandrinumL. and associated microbial and biochemical properties in a soil from Iran. Soil Biology & Biochemistry, 2007, 39(7): 1699-1702.

      [35]Mercer A E, Copple I M, Maggs J L,etal. The role of heme and the mitochondrion in the chemical and molecular mechanisms of mammalian cell death induced by the artemisinin antimalarials. Journal of Biological Chemistry, 2011, 286(2): 987-996.

      [36]Wang Y N, Zhang Y M, Lin Y X,etal. Plasmodium falciparum resistance to artemisinin drugs-the latest research progress. Chinese Journal of Zoonoses, 2014, 30(2): 195-198.

      [37]Diker K, Heermann D F, Bausch W C,etal. Shannon-Wiener’s diversity index for linking yield monitor and remotely sensed data for corn. Transactions of the ASAE, 2004, 47(4): 1347-1354.

      [38]Wang J, Li G, Xiu W M,etal. Responses of functional diversity of soil microbial communities to nutrient additions inStipabaicalensissteppe, Inner Mongolia, Northern China. Acta Prataculturae Sinica, 2014, 23(4):343-350.

      [39]Zhao Z M, Guo Y Q. Principles and Methods of Community Ecology[M]. Chongqing: Chongqing Scientific Literature Press,1990.

      [40]Jiang H Y, Yan W, Li X T,etal. The diversity of soil microorganism under different vegetations ofLarixgmeliniiforest in great Xingan mountains. Microbiology China, 2010, 37(2): 186-190.

      參考文獻:

      [1]王懷玉, 彭銳, 崔廣林, 等. 黃花蒿的青蒿素含量空間變異研究. 西南農(nóng)業(yè)學報, 2012, 25(3): 1417-1421.

      [5]羅世瓊, 石安東, 袁玲, 等. 黃花蒿抗瘧相關(guān)成分及抗氧化活性對施肥方式的響應. 草業(yè)學報, 2014, 23(1): 339-345.

      [12]孫年喜, 李隆云, 鐘國躍, 等. 不同生長期土壤水分處理對黃花蒿生理特性及產(chǎn)量的影響. 中國中藥雜志, 2009, 34(4): 386-389.

      [13]韋霄, 李鋒, 許成瓊, 等. 不同栽培措施對黃花蒿產(chǎn)量和青蒿素含量的影響. 廣西科學院學報, 1999, 15(3): 132-136.

      [14]楊水平, 楊憲, 黃建國, 等. 氮磷鉀肥和密度對青蒿生長和青蒿素產(chǎn)量的影響. 中國中藥雜志, 2009, 34(18): 2290-2295.

      [15]周德慶. 微生物學實驗教程(第2版) [M]. 北京: 高等教育出版社, 2006.

      [16]林先貴. 土壤微生物研究原理與方法[M]. 北京: 高等教育出版社, 2010.

      [17]佀國涵, 王瑞, 袁家富, 等. 綠肥與化肥配施對植煙土壤微生物群落的影響. 土壤, 2013,45(6): 1070-1075.

      [20]張秋芳, 劉波, 林營志, 等. 土壤微生物群落磷脂脂肪酸PLFA生物標記多樣性. 生態(tài)學報, 2009, 29(8): 4127-4137.

      [26]張曉蓉, 彭光花, 陳功錫, 等. 黃花蒿殘渣揮發(fā)油化學成分及其抑菌活性分析. 中草藥, 2011, 42(12): 2418-2420.

      [27]曲香芝, 陳正愛, 金光洙. 青蒿素對急性炎癥的影響. 延邊大學醫(yī)學學報, 2012, 35(4): 246-248.

      [28]辛紅梅, 郭正彥, 范麗霞, 等. 山東半島農(nóng)藥污染點源放線菌多樣性及抑菌活性. 微生物學報, 2012, 52(4): 435-441.

      [29]孟憲法, 隆小華, 康健, 等. 菊芋內(nèi)生固氮菌分離、鑒定及特性研究. 草業(yè)學報, 2011, 20(6): 157-163.

      [30]王國榮, 陳秀蓉, 張俊忠, 等. 東祁連山高寒灌叢草地土壤微生物生理. 草業(yè)學報, 2011, 20(2): 31-38.

      [31]邢肖毅, 黃懿梅, 安韶山, 等. 黃土丘陵區(qū)不同植被土壤氮素轉(zhuǎn)化微生物生理群特征及差異. 生態(tài)學報, 2013, 33(18): 5608-5614.

      [32]楊賢均, 王業(yè)社, 段林東, 等. 湖南崀山森林公園不同植被條件下土壤微生物量及酶活性研究. 草業(yè)學報, 2014, 23(1): 142-148.

      [36]王穎娜, 張艷梅, 藺應學, 等. 惡性瘧原蟲對青蒿素類藥物抗藥性的最新研究進展. 中國人獸共患病學報, 2014, 30(2): 195-198.

      [38]王杰, 李剛, 修偉明, 等. 貝加爾針茅草原土壤微生物功能多樣性對氮素和水分添加的響應. 草業(yè)學報, 2014, 23(4):343-350.

      [39]趙志模, 郭依泉. 群落生態(tài)學原理與方法[M]. 重慶: 重慶科技文獻出版社, 1990.

      [40]姜海燕, 閆偉, 李曉彤, 等. 大興安嶺不同落葉松林植被土壤微生物多樣性. 微生物學通報, 2010, 37(2): 186-190.

      李倩, 袁玲, 楊水平, 黃建國. 土壤微生物對黃花蒿凋落物或青蒿素的響應. 草業(yè)學報, 2015, 24(9): 121-129.

      LI Qian,YUAN Ling, YANG Shui-Ping, HUANG Jian-Guo. Responses of soil microorganisms toArtemisiaannualeaf litter or artemisinin. Acta Prataculturae Sinica, 2015, 24(9): 121-129.

      通訊作者*Corresponding author. E-mail: huang99@swu.edu.cn

      作者簡介:李倩(1987-),女,河南鄭州人,在讀博士。E-mail:qianqingzi@qq.com

      基金項目:國家973計劃項目(2013CB127405)和中央高?;?SWU113094)資助。

      收稿日期:2014-10-13;改回日期:2014-11-17

      DOI:10.11686/cyxb2014425http://cyxb.lzu.edu.cn

      猜你喜歡
      土壤微生物青蒿素
      《青蒿素:人類征服疾病的一小步》任務學習
      長期施用化肥對土壤微生物多樣性的影響探討
      基于PCR—DGGE的間作油茶林土壤細菌多樣性
      基于PCR—DGGE的間作油茶林土壤細菌多樣性
      切莫盲信所謂的“青蒿素食品”
      華人時刊(2016年1期)2016-04-05 05:56:23
      一種新型的倍半萜內(nèi)酯
      ——青蒿素
      黑汁緣微生物肥料在番茄上的應用
      一個青蒿素品牌的崛起
      中國品牌(2015年11期)2015-12-01 06:20:49
      刈割對不同植物群落特征、土壤微生物和土壤酶活性的影響
      環(huán)糊精對青蒿素的包合工藝研究
      食品科學(2013年8期)2013-03-11 18:21:18
      滦南县| 廉江市| 丰城市| 镇沅| 清远市| 林甸县| 兴宁市| 芜湖县| 潜山县| 稷山县| 嘉峪关市| 行唐县| 高邮市| 渑池县| 阿瓦提县| 大同市| 鹤山市| 哈尔滨市| 菏泽市| 白朗县| 濮阳县| 渝中区| 和政县| 屯昌县| 清涧县| 海口市| 仲巴县| 泗洪县| 华容县| 洪江市| 平武县| 双柏县| 太白县| 亚东县| 长治市| 清水河县| 瑞昌市| 定远县| 额济纳旗| 漠河县| 铅山县|