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      微小隱孢子蟲在HCT-8細(xì)胞內(nèi)的培養(yǎng)

      2016-12-01 05:38:44朱惠麗劉利敏王臣榮張素梅張龍現(xiàn)王榮軍
      關(guān)鍵詞:密度梯度卵囊蟲體

      朱惠麗,劉利敏,王臣榮,張素梅,張龍現(xiàn),王榮軍

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      微小隱孢子蟲在HCT-8細(xì)胞內(nèi)的培養(yǎng)

      朱惠麗1,2,劉利敏1,王臣榮1,張素梅1,張龍現(xiàn)1,王榮軍1

      目的 將人回盲腸癌(HCT-8)細(xì)胞作為微小隱孢子蟲IId亞型體外感染對象,觀察蟲體在細(xì)胞中的生長發(fā)育過程。方法 將純化的隱孢子蟲IId亞型感染HCT-8細(xì)胞,通過Giemsa染色法觀察微小隱孢子蟲IId亞型在HCT-8細(xì)胞中發(fā)育過程,運(yùn)用PCR方法對不同感染時(shí)間點(diǎn)的細(xì)胞樣品DNA進(jìn)行檢測。結(jié)果 在感染后72 h內(nèi),隱孢子蟲出現(xiàn)連續(xù)發(fā)育階段,包括脫囊、子孢子、滋養(yǎng)體、裂殖體、配子體、合子和卵囊;PCR的檢測結(jié)果顯示,在感染細(xì)胞96 h仍能檢測到蟲體DNA。結(jié)論 通過HCT-8細(xì)胞,觀察到微小隱孢子蟲IId亞型的完整的生長發(fā)育過程,為抗隱孢子蟲藥物的篩選提供理論基礎(chǔ),亦可成為微小隱孢子蟲IId亞型卵囊體外擴(kuò)增的方法。

      微小隱孢子蟲;感染模型;HCT-8細(xì)胞;培養(yǎng)

      Invitroculture ofCryptosporidiumparvumin HCT-8

      隱孢子蟲(Cryptosporidium)是一種引起人獸共患病的機(jī)會(huì)性原蟲,其嚴(yán)重威脅免疫功能低下及免疫功能缺陷者的生命安全,特別是艾滋病患者[1]。隱孢子蟲可以感染包括人和其他哺乳動(dòng)物、鳥類、爬行類、兩棲類和魚類的240多種動(dòng)物[2],造成重大經(jīng)濟(jì)影響和社會(huì)影響。同時(shí),隱孢子蟲病也是一種重要的食源/水源性疾病, 從2004年至2010年12月,全球有記錄的水源性隱孢子蟲病暴發(fā)共120起,與飲用水和娛樂水相關(guān)的暴發(fā)占46%和54%[3]。在我國的水體系統(tǒng)中,隱孢子蟲的分布也極其廣泛,在河水、水庫和飲用原水中均檢測到有隱孢子蟲。隱孢子蟲已被我國列為城市用水和飲用水的監(jiān)測指標(biāo)之一。

      盡管相關(guān)的隱孢子蟲的研究報(bào)道有很多,但對該病的致病機(jī)制仍不明晰,亦無有效的藥物或疫苗治療這種原蟲病[1]。近年來,體外培養(yǎng)作為研究隱孢子蟲生活史、感染機(jī)制和藥物篩選的手段已取得了一定的進(jìn)展[4-10]。但是這些研究方法通常需要借助免疫熒光、激光共聚焦和電鏡等技術(shù),這些方法試驗(yàn)周期長,時(shí)常存在假陽性等缺陷。因此,建立一種簡便快捷和易于觀察的隱孢子蟲體外培養(yǎng)方法勢在必行。

      微小隱孢子蟲(Cryptosporidiumparvum)作為人類隱孢子蟲病的重要病原種類,具有感染譜廣,致病性嚴(yán)重,具有重要的公共衛(wèi)生意義。HCT-8細(xì)胞可作為多種隱孢子蟲體外培養(yǎng)的宿主細(xì)胞,可觀察到其各個(gè)發(fā)育階段形態(tài)特征[11-13]。另外,HCT-8細(xì)胞比其他的宿主細(xì)胞更有利于C.parvum的培養(yǎng),因?yàn)镠CT-8細(xì)胞可容許數(shù)量較多的C.parvum感染發(fā)育,增加感染細(xì)胞的數(shù)量而有利于觀察蟲體在細(xì)胞的發(fā)育過程[14]。

      本研究利用HCT-8細(xì)胞體外培養(yǎng)C.parvumIId亞型,運(yùn)用Giemsar染色法觀察C.parvumIId亞型在HCT-8細(xì)胞中的不同發(fā)育階段特征,對不同感染時(shí)間點(diǎn)的細(xì)胞樣品DNA進(jìn)行PCR檢測,以期為隱孢子蟲的藥物篩選和致病機(jī)制的研究打基礎(chǔ)。

      1 材料與方法

      1.1 蟲株和細(xì)胞株 通過飽和蔗糖溶液漂浮法從鄭州某奶牛場奶牛糞便收集到C.parvumIId亞型卵囊,采用Xiao等方法[15]的方法進(jìn)行GP60基因擴(kuò)增測序鑒定為C.parvumIId亞型,用2.5%重鉻酸鉀4 ℃保存。

      HCT-8細(xì)胞購自中科院上海細(xì)胞庫,培養(yǎng)于含10%胎牛血清(FCS)的RPMI1640培養(yǎng)液中,置37 ℃,5% CO2溫箱中培養(yǎng),待細(xì)胞生長融合至單細(xì)胞層后以胰酶消化,計(jì)數(shù),分裝6孔板,并觀察96 h內(nèi)HCT-8細(xì)胞的生長情況,為蟲體感染做準(zhǔn)備。

      1.2 主要試劑與儀器 RPMI 1640液體培養(yǎng)液購自Giboco公司(4 ℃,避光保存),胎牛血清購自杭州四季青公司,Giemsa染料試劑盒,牛黃膽酸鹽和HEPES購自Sigma公司,基因組DNA提取試劑盒和PCR檢測試劑盒購自TOYOBO公司,CO2培養(yǎng)箱購自Thermo公司,低溫高速離心機(jī)Sigma公司,倒置顯微鏡購自LEICA公司。

      細(xì)胞接種C.parvumIId亞型卵囊后,應(yīng)更換為維持培養(yǎng)液,其成分為每100 mL培養(yǎng)基中含0.03 g/L L-谷氨酰胺、0.3 g/L碳酸氫鈉、0.02 g/L牛黃膽酸鹽、0.1 g葡萄糖、25 μg葉酸,100 μg對氨基苯甲酸、50 μg泛酸鈣、875 μg葉酸、2%FCS、15-20 mmol/L HEPES緩沖液、100單位/mL青霉素和0.01 g/mL鏈霉素,37 ℃,5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

      1.3 實(shí)驗(yàn)方法

      1.3.1C.pavumⅡd亞型卵囊大量收集與純化 從鄭州某奶牛場奶牛糞便收集到C.parvumIId亞型卵囊,通過未食初乳的4日齡犢牛進(jìn)行卵囊的傳代擴(kuò)增,收集排卵囊期間的犢牛糞便溶于蒸餾水,經(jīng)80目銅篩過濾,濾液3 500 r/min離心10 min,棄上清,加入等體積的乙醚去除糞便中的脂肪,3 500 r/min離心10 min用清水洗3遍,去上清,沉淀加入飽和蔗糖溶液,充分混勻,3 500 r/min離心10 min,用金屬吊環(huán)收取上層卵囊,加入10倍稀釋的蒸餾水混勻,3 500 r/min離心10 min,棄上清,用適量蒸餾水混勻。

      卵囊純化:取50 mL離心管,加入25 mL 1∶1蔗糖溶液30 mL,在蔗糖溶液上層小心加入上述收取卵囊液5 mL,3 600 r/min離心15 min,吸取卵囊?guī)в跓?;每次吸取的卵囊?guī)в靡欢康恼麴s水稀釋并充分混勻之后,離心留沉淀,用適量蒸餾水均勻;根據(jù)Arrowood等[16]方法,配制氯化銫(CsCl)工作液,采用離心的方法收取卵囊?guī)コs質(zhì)對卵囊作進(jìn)一步的純化;然后純化的卵囊用5%次氯酸鈉4 ℃作用10 min進(jìn)行無菌化處理,蒸餾水清洗5次,去除殘留的次氯酸鈉。最后卵囊沉淀用含2% FCS的RPMI 1640維持培養(yǎng)液重懸,用于感染細(xì)胞。1.3.2C.pavumIId亞型在細(xì)胞中的發(fā)育過程觀察 將無菌化處理的20 mm蓋玻片置6孔板中,在每個(gè)蓋玻片上中加入10%FCS的RP MI1640培養(yǎng)液,內(nèi)含有1×105個(gè)HCT-8細(xì)胞,置37 ℃、5%CO2溫箱中培養(yǎng)。待細(xì)胞生長融合至85%時(shí),棄掉培養(yǎng)液, 以無菌PBS洗滌2次,每個(gè)玻片上接種2×105個(gè)處理后的卵囊培養(yǎng)液。2.5 h后棄去未結(jié)合細(xì)胞的卵囊,換上維持培養(yǎng)液(2% FCS)。分別取感染后2 h、5 h、12 h、18 h、24 h、36 h、48 h、60 h、72 h、96 h、108 h玻片樣品,以無菌PBS緩沖液洗滌2次,各個(gè)時(shí)間點(diǎn)共6份玻片樣品,取其中3份樣品用微分干涉顯微鏡觀察蟲體形態(tài),另外3份樣品用甲醇固定后,用Giemsa染色試劑盒進(jìn)行染色,觀察蟲體發(fā)育情況并照相。同時(shí)設(shè)空白對照。

      1.3.3 用PCR法檢測不同時(shí)間點(diǎn)細(xì)胞樣品DNA的GP60基因

      1.3.3.1C.pavumIId亞型的細(xì)胞培養(yǎng) 細(xì)胞培養(yǎng)及卵囊感染同1.3.2,孔板中不加蓋玻片。待培養(yǎng)6 h、12 h、24 h、48 h、72 h、96 h后收集上清與細(xì)胞后,上清沉淀物保存于-20 ℃用于制備模板DNA,每個(gè)時(shí)間點(diǎn)設(shè)3次重復(fù),同時(shí)加空白對照。

      每個(gè)時(shí)間點(diǎn)設(shè)3次重復(fù),同時(shí)加空白對照。

      1.3.3.2 基于GP60基因的PCR檢測GP60基因是隱孢子蟲基因組中最具多態(tài)性的標(biāo)記基因,是應(yīng)用最廣泛的隱孢子蟲亞型靶基因。根據(jù)GenBank發(fā)表的C.pavumGP60基因序列,應(yīng)用Primer 5.0生物信息軟件設(shè)計(jì)一對巢式PCR引物,擴(kuò)增片段為832 bp。引物序列:gp60-F1,5′-ATA GTC TCC GCT GTA TTC-3′,gp60-R1,5′-GGA AGG AAC GAT GTA TCT-3′,gp60-F2,5′-TCC GCT GTA TTC TCA GCC-3′,gp60-R2,5′-GCA GAG GAA CCA GCA TC-3′,由北京鼎國昌盛生物技術(shù)有限責(zé)任公司合成。

      樣品DNA提取方法參照Mag Extractor基因組提取試劑盒說明書進(jìn)行,提取DNA后,-20 ℃保存?zhèn)溆?。以上述制備的DNA為模板,用kold plus酶擴(kuò)增GP60基因,PCR產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖電泳后,在凝膠成像系統(tǒng)下觀察結(jié)果,拍攝照片保存。

      3 結(jié) 果

      3.1 Giemsa染色法觀察細(xì)胞 隱孢子蟲感染HCT-8細(xì)胞,經(jīng)Giemsa染色,見HCT-8細(xì)胞呈紅色或紫紅色,各發(fā)育階段隱孢子蟲呈藍(lán)色或藍(lán)紫色。隱孢子蟲感染細(xì)胞2 h~12 h,大部分的隱孢子蟲脫囊,釋放出子孢子(圖1B,1b);感染12 h~24 h,子孢子侵入HCT-8細(xì)胞,發(fā)育為滋養(yǎng)體(圖1C,1c);感染36 h,可見HCT-8細(xì)胞內(nèi)含有6個(gè)裂殖子的裂殖體(圖1D,1d);感染48 h,HCT-8細(xì)胞內(nèi)見小配子及其殘?jiān)?圖1E,1e)、配子體(圖1F,1f)和合子(圖1G,1g);感染60 h,HCT-8細(xì)胞內(nèi)見卵囊(圖1H,1h),收集的細(xì)胞培養(yǎng)上清中,除見到大量的游離卵囊,還有大量細(xì)胞碎片。

      A-H:微分干涉顯微鏡;a-h:吉姆薩染色;A、a:未感染蟲體的細(xì)胞對照;B、b:隱孢子蟲脫囊階段;C、c:滋養(yǎng)體階段;D、d:裂殖體階段;E、e:大配子階段;F、f:小配子階段;G、g:合子階段;H、h:卵囊階段

      A-H: differential interference microscope, a-h: Giemsa staining. A,a: uninfected cell control; B,b: Cryptosporidium excystation; C,c: trophozoites; D,d: schizont; E,e: megagametophyte; F,f: microgametocyte; G,g: zygote; H,h: oocyst

      圖1 微小隱孢子蟲IId亞型在HCT-8細(xì)胞中各發(fā)育階段蟲體的形態(tài)觀察(×1000)

      Fig.1 Observation of various development stage ofCryptosporidiumparvumIId in HCT-8 cells (×1000)

      3.2 不同時(shí)間點(diǎn)HCT-8細(xì)胞DNA的PCR檢測

      將提取的不同時(shí)間點(diǎn)的上清與細(xì)胞樣品DNA,分別進(jìn)行GP60基因的PCR擴(kuò)增反應(yīng)。電泳結(jié)果顯示:細(xì)胞上清DNA樣品在6 h、12 h、24 h、48 h未能擴(kuò)增出832 bp特異型性片段,而在72 h和96 h擴(kuò)增出832 bp的特異性片段,細(xì)胞樣品在不同時(shí)間點(diǎn)的細(xì)胞樣品中均能擴(kuò)增出832 bp的特異性片段。詳見圖2,圖3。

      M:DL2000 分子marker;1:空白細(xì)胞對照,2-7:卵囊接種6 h,12 h,24 h,48 h,72 h,96 h的細(xì)胞樣品,8:陰性對照(無菌蒸餾水)M: DL 2000 molecular marker; 1: blank cell control, 2-7: cell samples post inoculated hours 6, 12, 24, 48, 72, and 96, 8: negtive control(distilled water)圖2 微小隱孢子蟲IId亞型在HCT-8細(xì)胞不同時(shí)間點(diǎn)細(xì)胞中卵囊DNA檢測Fig.2 Detection of C. parvum IId DNA at different times in HCT-8 cell

      M:DL2000 分子marker;1:空白細(xì)胞對照,2-7:卵囊接種6 h,12 h,24 h,48 h,72 h,96 h的細(xì)胞上清樣品,8:陰性對照(無菌蒸餾水)M: DL 2000 molecular marker; 1: blank cell control, 2-7: cell supernatant post inoculated hours 6, 12, 24, 48, 72, and 96, 8: negtive control(distilled water)圖3 微小隱孢子蟲IId亞型在HCT-8細(xì)胞不同時(shí)間點(diǎn)細(xì)胞上清中卵囊DNA檢測Fig.3 Detection of C. parvum IId DNA at different times in HCT-8 cell supernatant

      4 討 論

      純化隱孢子蟲卵囊主要用于體外培養(yǎng)、抗原制備和隱孢子蟲DNA提取研究。本實(shí)驗(yàn)采用1∶1的蔗糖溶液純化隱孢子蟲卵囊,收到的卵囊量大而且較為純凈,此時(shí)的卵囊可用于提取隱孢子蟲DNA。由于本文的卵囊的用途是感染細(xì)胞,要求細(xì)胞純凈,無雜質(zhì),所以要對卵囊作進(jìn)一步的純化。文獻(xiàn)報(bào)道,對于卵囊的純化,一般采用Percoll密度梯度離心和CsCl密度梯度離心和免疫磁性分離法(IMS)等。Hadfield等[17]用IMS和CsCl的密度梯度離心對比試驗(yàn)顯示IMS法適用于小量的卵囊純化,而CsCl密度梯度離心法適用于量大樣品的純化。陳甫等[18]用Percoll密度梯度離心和CsCl密度梯度離心法處理卵囊的對比實(shí)驗(yàn)表明,兩者雖都存在卵囊丟失,但是CsCl密度梯度離心卵囊丟失率低,且純化的卵囊純度明顯高于Percoll密度梯度離心,而且不用做任何滅菌處理,直接可以感染細(xì)胞。由于本實(shí)驗(yàn)細(xì)胞感染需要大量的卵囊,因此使用CsCl密度梯度離心的方法純化卵囊,而Arrowood[16]的方法簡便,可操作性強(qiáng),回收率高。本實(shí)驗(yàn)根據(jù)Arrowood等[16]的試驗(yàn)方法進(jìn)行純化卵囊,做了些改動(dòng),即離心機(jī)的轉(zhuǎn)速和時(shí)間與文獻(xiàn)報(bào)道不太一致,我們采取的離心機(jī)轉(zhuǎn)速與時(shí)間比文獻(xiàn)報(bào)道要高,否則的話,形成的卵囊?guī)?,容易造成卵囊的大量丟失。

      研究表明,用于感染細(xì)胞的卵囊必須是新鮮的,一般是3個(gè)月以內(nèi)的卵囊,越早越好。在感染之前要用次氯酸鈉處理以除去卵囊液中的病原微生物,而且采用次氯酸鈉處理可使卵囊壁變薄(特別是新鮮卵囊壁更容易變薄),有助于子孢子的溢出又可以防止微生物污染[7]。加之細(xì)胞培養(yǎng)基內(nèi)含有定量的牛黃膽酸鹽的刺激,更有利于子孢子的溢出。因此本研究中的卵囊在感染前并未進(jìn)行脫囊而直接感染細(xì)胞。

      采用PCR方法從分子方面確認(rèn)了C.parvumⅡd亞型在HCT-8細(xì)胞中生長發(fā)育過程以及遺傳穩(wěn)定性。細(xì)胞樣品在不同的感染時(shí)間點(diǎn)均能擴(kuò)增出832 bp的GP60基因片段,測序結(jié)果分析顯示均為C.parvumIId亞型。而細(xì)胞上清樣品在6 h、12 h、24 h、48 h未能檢測出C.parvumIId亞型蟲體DNA,卻在72 h和96 h檢測出C.parvumIId亞型蟲體DNA。說明感染早期,卵囊在細(xì)胞中進(jìn)行生長發(fā)育,在上清中檢測不到蟲體DNA,但在感染后期(72 h后),隨著細(xì)胞的不斷崩解,導(dǎo)致C.parvumIId亞型卵囊脫離細(xì)胞,游離于上清中,因而細(xì)胞上清中能夠檢測到蟲體DNA。因此,通過HCT-8細(xì)胞體外培養(yǎng)C.parvumIId亞型卵囊時(shí),我們還需對細(xì)胞的培養(yǎng)條件、特別是細(xì)胞感染后血清濃度、感染蟲體數(shù)量和細(xì)胞數(shù)量的比例以及培養(yǎng)環(huán)境等方面的問題需要進(jìn)一步的摸索,為建立微小隱孢子的體外培養(yǎng)模型奠定基礎(chǔ)。

      [1] Karanis P, Aldeyarbi HM. Evolution ofCryptosporidiuminvitroculture[J]. Int J Parasitol, 2011, 41(12): 1231-1242.

      [2] Plutzer J, Karanis P. Genetic polymorphism inCryptosporidiumspecies: an update[J]. Vet Parasitol, 2009, 165: 187-199.

      [3] Baldersson S, Karanis P. Waterborne transmission of protozoan parasites: review of worldwide outbreaks-an update 2004-2010[J]. Water research, 2011, 45(20): 6603-6614.

      [4] Morada M, Lee S, Gunther-Cummins L, et al. Continuous culture ofCryptosporidiumparvumusing hollow fiber technology[J]. Int J Parasitol, 2016, 46(1): 21-29.

      [5] Aldeyarbi HM, Karanis P. Electron microscopic observation of the early stages ofCryptosporidiumparvumasexual multiplication and development ininvitroaxenic culture[J]. Eur J Protistol, 2015, 52: 36-44.

      [6] Jenkins MC, O'Brien CN, Santin M, et al. Changes in the levels of Cryspovirus duringinvitrodevelopment ofCryptosporidiumparvum[J]. Parasitol Res, 2015, 114(6): 2063-2068.

      [7] Dibao-Dina A, Follet J, Ibrahim M, et al. Electrical impedance sensor for quantitative monitoring of infection processes on HCT-8 cells by the waterborne parasiteCryptosporidium[J]. Biosens Bioelectron, 2015, 66: 69-76.

      [8] Schupfner M, Greif G, Lendner M, et al. Evaluation of putative anti-cryptosporidial drugs in aninvitroculture system[J].Parasitol Res, 2013, 112(Suppl 1): 149-162.

      [9] Castellanos-Gonzalez A, Cabada MM, Nichols J, et al. Human primary intestinal epithelial cells as an improvedinvitromodel forCryptosporidiumparvuminfection[J]. Infect Immun, 2013, 81(6): 1996-2001.

      [10] Yang R, Elankumaran Y, Hijjawi N, et al. Validation of cell-free culture using scanning electron microscopy (SEM) and gene expression studies[J]. Exp Parasitol, 2015, 153: 55-62.

      [11] Morada M, Pendyala L, Wu G, et al.Cryptosporidiumparvuminduces an endoplasmic stress response in the intestinal adenocarcinoma HCT-8 cell line[J]. J Biol Chem, 2013, 288(42): 30356-30364.

      [12] Johnson AM, Giovanni GD, Rochelle PA. Comparison of assays for sensitive and reproducible detection of cell culture-infectiousCryptosporidiumparvumandCryptosporidiumhominisin drinking water[J]. Appl Environ Microbiol, 2012, 78(1):156-162.

      [13] Wu L, Jiang XG, Shen YJ, et al. Efficacy of ginkgolic acids againstCryptosporidiumandersoni in cell culture[J]. Parasitol Res, 2011, 109(5): 1475-1479.

      [14] Hijjawi N.Cryptosporidium: new developments in cell culture[J]. Exp Parasitol, 2010, 124(1): 54-60.

      [15] Xiao L, Fayer R, Ryan U, et al.Cryptosporidiumtaxonomy: recent advances and implications for public health[J]. Clin Microbiol Rev, 2004, 17: 72-97.

      [16] Arrowood MJ, Donaldson K. Improved purification methods for calf-derivedCryptosporidiumparvumoocysts using discontinuous sucrose and cesium chloride gradients[J]. J Eukaryot Microbiol, 1996, 43(5): 89S.

      [17] Hadfield SJ, Pachebat JA, Swain MT, et al. Generation of whole genome sequences of newCryptosporidiumhominisandCryptosporidiumparvumisolates directly from stool samples[J]. BMC Genomics, 2015, 16: 650.

      [18] Chen P, Huang KH. Study on methods for isolation and purification ofCryptosporidiumparvum oocysts in feces from mouse feces[J]. China Journal of Parasitology and Parasitic Diseases, 2006, 24(3): 219-222.(in Chinese)

      陳甫,黃克和.從鼠糞中分離純化微小隱孢子蟲卵囊方法的研究[J]. 中國寄生蟲學(xué)與寄生蟲病雜志, 2006, 24(3): 219-222.

      ZHU Hui-li1,2, LIU Li-min1, WANG Cheng-rong1, ZHANG Su-mei1,ZHANG Long-xian1,WANG Rong-jun1

      (1.CollegeofAnimalScienceandVeterinaryScience,HenanAgriculturalUniversity,Zhengzhou450002,China;2.CollegeofAnimalScienceandVeterinaryScience,HenanInstituteofScience

      andTechnology,Xinxiang453003,China)

      In order to developinvitroinfected model forCryptosporidiumparvumand to observe its developmental stages in the cells, the human ileocecal cancer (HCT-8) cells were selected to culture the parasite. The purified oocysts ofC.parvumIId subtype infected HCT-8 cellsinvitro, the developmental processes ofC.parvumIId subtype in HCT-8 cells were observed using Giemsa staining, and the DNA ofC.parvumIId subtype from different time points of infection were detected by Polymerase Chain Reaction (PCR). Following 72 h co-culture, excystation, sporozoites, trophozoites, meronts, microgametocytes, macrogametocytes, zygote and oocyst appeared orderly. Furthermore, the DNA ofC.parvumIId subtype in cells were still detected at 96 h post-infection. The complete developmental processes ofC.parvumIId subtype can be observed in HCT-8 cells, which provides a theoretical basis for the screening of anti-Cryptosporidiumdrugs and becomes a method forC.parvumIId oocyst amplification byinvitroculture.

      Cryptosporidiumparvum; infection model; HCT-8 cell; culture

      國家自然科學(xué)基金重點(diǎn)項(xiàng)目(No.31330079)、國家自然科學(xué)基金青年項(xiàng)目(No.31302079)和河南省高校科技創(chuàng)新人聯(lián)合資助

      王榮軍,email:wrj-1978@163.com

      1.河南農(nóng)業(yè)大學(xué)牧醫(yī)工程學(xué)院,鄭州 450002;

      2.河南科技學(xué)院動(dòng)物科學(xué)學(xué)院,新鄉(xiāng) 453003

      10.3969/j.issn.1002-2694.2016.08.005

      R382

      A

      1002-2694(2016)08-0706-05

      2016-01-20;

      2016-01-20

      Supported by the National Natural Science Foundation of China (No. 31330079) and (Grant No.31302079) and Science and technology innovation talents in Colleges and Universities in Henan Province(No.16HASTIT018)

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