林凌,張更,邱榮暉,羅道樞,林清
(福建醫(yī)科大學基礎(chǔ)醫(yī)學院人體解剖學與組織學胚胎學系,神經(jīng)生物學研究中心,福州 350122)
新生期缺氧缺血大鼠腦白質(zhì)損傷及腦內(nèi)Fyn、p-ERK和MBP下調(diào)
林凌,張更,邱榮暉,羅道樞,林清*
(福建醫(yī)科大學基礎(chǔ)醫(yī)學院人體解剖學與組織學胚胎學系,神經(jīng)生物學研究中心,福州 350122)
目的 檢測新生大鼠缺氧缺血后腦內(nèi)酪氨酸蛋白激酶Fyn、p-ERK及髓鞘堿性蛋白(myelin basic protein, MBP)表達的變化,探討Fyn-ERK通路在缺氧缺血腦白質(zhì)損傷中的作用。方法 新生3日齡SD大鼠24只,隨機分為對照組和缺氧缺血(HⅠ)組。缺氧缺血后4周,應(yīng)用HE染色法觀察腦組織病理學改變;應(yīng)用免疫熒光染色法和Western blot法觀察Fyn、p-ERK及MBP在大鼠腦內(nèi)的定位定量表達變化。結(jié)果 HE染色顯示缺氧缺血大鼠出現(xiàn)缺氧缺血腦白質(zhì)損傷病理改變;免疫熒光染色和Western blot檢測顯示腦內(nèi)Fyn、p-ERK和MBP水平均明顯下調(diào)。結(jié)論 新生期缺氧缺血損傷4周后,可能通過Fyn與p-ERK水平的下調(diào)而使MBP減少,進而使少突膠質(zhì)細胞成熟障礙,引起腦白質(zhì)損傷。
新生期缺氧缺血;Fyn蛋白;髓鞘堿性蛋白;腦白質(zhì)
缺氧缺血腦白質(zhì)損傷(hypoxic-ischemic white matter injury,WMⅠ)是早產(chǎn)兒腦損傷的重要類型,可致患兒出現(xiàn)腦癱、智力低下、視聽障礙等多種后遺癥,給社會和家庭帶來沉重的負擔[1]。缺氧缺血WMⅠ的主要病理改變是髓鞘生成障礙,腦白質(zhì)變稀疏甚至軟化。WMⅠ中髓鞘生成障礙的具體機制仍未明確,目前依舊是國內(nèi)外研究的熱點。
Src蛋白酪氨酸激酶(protein tyrosine kinases, PTKs)家族成員共有10 種,具有高度同源性,分別由不同基因編碼,通過調(diào)節(jié)蛋白酪氨酸磷酸化,參與調(diào)節(jié)細胞增殖、分化、遷移和細胞形態(tài)的維持[2]。Fyn 是該家族的一員,是細胞內(nèi)一種非受體型酪氨酸激酶[3]。大量研究表明,F(xiàn)yn信號通路可通過激活髓鞘堿性蛋白(myelin basic protein, MBP)基因而在髓鞘形成中發(fā)揮不可或缺的作用[4,5]。當新生大鼠腦白質(zhì)發(fā)生炎癥后Fyn表達量降低,髓鞘形成障礙[6]。那么,F(xiàn)yn信號通路在新生大鼠發(fā)生缺氧缺血損傷中是否發(fā)揮同樣的作用?目前未見文獻報道。對這一問題的研究將有助于進一步明確缺氧缺血WMⅠ的發(fā)病機制,具有重要意義。故本研究擬通過結(jié)扎新生3日齡SD大鼠雙側(cè)頸總動脈及缺氧法建立缺氧缺血(hypoxia-ischemia, HⅠ)損傷模型,應(yīng)用HE染色法觀察腦組織病理學改變,采用免疫熒光組織化學染色法和Western blot法檢測HⅠ后4周大鼠Fyn、p-ERK及MBP在腦內(nèi)的變化,探討Fyn-ERK 通路在缺氧缺血腦白質(zhì)損傷中的作用。
1 實驗動物及試劑
新生3日齡SD大鼠24只,體質(zhì)量8.00~11.00g,雌雄不拘,由福建醫(yī)科大學實驗動物中心提供[SCXK(閩)2012-0001],應(yīng)用隨機數(shù)字表法隨機分為對照組和缺氧缺血HⅠ組。小鼠抗大鼠MBP抗體(美國abcam公司);兔抗大鼠Fyn抗體(美國Santa Cruz公司);兔抗大鼠ERK、p-ERK抗體(美國cst公司);Alexa Fluor488標記的山羊抗小鼠ⅠgG;Alexa Fluor555標記的山羊抗兔ⅠgG(美國invitrogen公司);小鼠抗大鼠GAPDH抗體,辣根過氧化物酶標記的山羊抗兔ⅠgG、山羊抗大鼠ⅠgG及免疫印跡相關(guān)試劑(碧云天生物技術(shù)研究所) 。
2 缺氧缺血損傷模型制作
參照本實驗室原有方法[7]稍加改進。無水乙醚麻醉大鼠,無菌條件下作長約0.5cm頸腹側(cè)正中切口,分離雙側(cè)頸總動脈,以8-0顯微外科手術(shù)縫線完全結(jié)扎雙側(cè)頸總動脈后縫合皮膚;術(shù)后在37℃水浴箱內(nèi)放置10min,至體溫和活動恢復正常,返籠飼養(yǎng)。返籠恢復2h后,將大鼠置于低壓氧倉全自動控制儀(南京柏曼信息科技服務(wù)中心,XF-XC06-Ⅰ)以8%的氧氣缺氧30min。對照組大鼠僅分離雙側(cè)頸總動脈,不予結(jié)扎及缺氧。
3 組織切片標本制備
缺氧缺血后4周分別取對照組和HⅠ組大鼠各6只,10﹪水合氯醛(3ml/kg)麻醉后,通過左心室插管灌注生理鹽水;待流出清亮液體后續(xù)以4﹪多聚甲醛灌注固定。每組取3只大鼠行石蠟包埋HE染色,另3只行冰凍切片用于免疫熒光染色。
4 免疫熒光染色
對腦組織進行冰凍切片,片厚25μm,行漂片染色。以免疫熒光顯色封閉液室溫封閉2h;傾去封閉液,分別滴加小鼠抗大鼠MBP抗體(1:200)、兔抗大鼠Fyn抗體(1:200)和兔抗大鼠p-ERK抗體(1:200),4℃孵育過夜;用0.01mol/L PBS清洗后,分別滴加Alexa Fluor488標記的山羊抗小鼠ⅠgG和AlexaFluor555標記的山羊抗兔ⅠgG(1:200),37℃孵育2h;DAPⅠ(1mg/L)染核5min,抗熒光淬滅封片劑封片。激光掃描共聚焦顯微鏡(德國,Leica SP8)下觀察,綠色激發(fā)波長為488nm,發(fā)射波長為500~530nm;紅色激發(fā)波長為543nm,發(fā)射波長為560~600nm;藍色激發(fā)波長為405nm,發(fā)射波長為420~450nm。陰性對照組以PBS代替一抗進行染色。
5 Western blot檢測
缺氧缺血后4周分別取對照組和HⅠ組大鼠各6只,以RⅠPA裂解液提取大鼠腦組織總蛋白,BCA法測定蛋白濃度。每孔上樣量為50μg蛋白,SDS-PAGE凝膠電泳,濕轉(zhuǎn)于PVDF膜。脫脂奶粉封閉,加入兔抗大鼠Fyn、ERK、p-ERK抗體(1:1000)4℃孵育過夜和辣根過氧化物酶標記的山羊抗兔ⅠgG、抗小鼠ⅠgG(1:1000)室溫孵育1h或加入小鼠抗大鼠MBP(1:1000)4℃孵育過夜,辣根過氧化物酶標記的山羊抗小鼠ⅠgG(1:1000)室溫孵育1h,清洗后進行化學發(fā)光、顯影和定影,生物分子成像儀(日本,LAS 4000 mini)成像。以GAPDH作為內(nèi)參蛋白。
6 統(tǒng)計學分析
用ⅠmageJ 2.1圖像分析系統(tǒng)對Western blot結(jié)果進行光密度分析,以各組目的蛋白條帶光密度值對內(nèi)參蛋白光密度值計算相對比值(均數(shù)±標準差),采用SPSSl9.0統(tǒng)計軟件對結(jié)果進行分析。以P<0.05時差異有統(tǒng)計學意義。
1 缺氧缺血使腦白質(zhì)纖維排列紊亂
于缺氧缺血后4周取腦組織行HE染色,結(jié)果顯示:對照組腦白質(zhì)(胼胝體)纖維排列致密、整齊(圖1A),缺氧缺血組腦白質(zhì)纖維排列稀疏、紊亂(圖1B)。
2 缺氧缺血降低腦組織內(nèi)Fyn、p-ERK和MBP水平
免疫熒光染色顯示,缺血缺氧組Fyn免疫反應(yīng)陽性物較相應(yīng)對照組少(圖2),且在胼胝體部位,F(xiàn)yn表達于細胞胞體和突起(圖2A2,圖2B2),而在海馬則表達于神經(jīng)元胞核(圖2A3,圖2B3)。缺氧缺血組p-ERK表達量亦較相應(yīng)對照組下降(圖3),并且p-ERK表達于胼胝體細胞突起(圖3A2,圖3B2)和海馬神經(jīng)元胞體(圖3A3,圖3B3)。缺氧缺血組MBP免疫反應(yīng)陽性物較相應(yīng)對照組減少(圖4);局部放大后可見對照組腦白質(zhì)MBP免疫反應(yīng)陽產(chǎn)性物排列整齊、致密、突起較長(圖4A2),而缺氧缺血組MBP免疫反應(yīng)陽性物排列較紊亂、稀疏、突起變短(圖4B2)。
圖1 缺氧缺血腦白質(zhì)病理學變化的HE染色檢測。cc,胼胝體;A2和B2分別為A1和B1中方框內(nèi)cc的高倍像;比例尺:A1和B1,100μm;;A2和B2,10μmFig. 1 The pathological changes in hypoxic-ischemic rat brain. The corpus callosum (cc) region was examined using HE staining. A1: Control rat; B1: Hypoxia-ischemic rat; A2and B2 Boxed regions at higher magnification from A1 and B1 respectively. Scale bar: 100μm in A1 and B1; 10μm in A2 and B2
提取各組大鼠腦組織總蛋白,以Western blot檢測Fyn、ERK、p-ERK及MBP水平。結(jié)果顯示,與對照組相比,缺氧缺血組Fyn和MBP水平顯著下降、p-ERK與總ERK的比例明顯降低(圖5)。
本研究通過永久性結(jié)扎雙側(cè)頸總動脈聯(lián)合缺氧法致使新生大鼠發(fā)生缺氧缺血損傷,應(yīng)用HE染色法觀察腦組織病理學改變,應(yīng)用免疫熒光組織化學染色法和Western blot 法觀察Fyn、p-ERK和MBP在腦內(nèi)水平變化。我們發(fā)現(xiàn),在缺氧缺血后4周,腦白質(zhì)纖維變稀疏,F(xiàn)yn、p-ERK及MBP的表達量均較對照組明顯減少,并且Fyn在胼胝體與海馬的表達部位不同。
Fyn在海馬表達于細胞核,參與神經(jīng)元的活動,缺氧缺血后其水平顯著下降,這與廖家萬[8]等的研究結(jié)果相一致。他們認為低氧可使大鼠海馬神經(jīng)元Fyn表達降低。而在胼胝體Fyn主要表達于細胞質(zhì)和突起,由于胼胝體主要成分是少突膠質(zhì)細胞和神經(jīng)元突起,故筆者推測,胼胝體中Fyn可能主要作用于少突膠質(zhì)細胞,但Fyn在海馬與胼胝體表達部位不同的具體原因及機制尚不清楚,有待進一步研究證實。
圖2 免疫熒光檢測缺氧缺血對腦組織Fyn水平的影響。cc,胼胝體;HP,海馬;A2和B2,分別為A1和B1中方框內(nèi)CC的高倍像;A3和B3,分別為A1和B1中方框內(nèi)HP的高倍像;比例尺:A1和B1,100μm;A2、A3和B2、B3,25μm。Fig. 2 The effects of hypoxia-ischemia on brain Fyn level. cc, corpus callosum; HP, hippocampus; A2 and B2, the images of cc at higher magnification from A1 and B1, respectively; A3 and B3, the images of HP at higher magnification from A1 and B1, respectively; scale bar: 100μm in A1 and B1; 25μm in A2, A3, B2 and B3
圖3 免疫熒光檢測缺氧缺血對腦組織p-ERK水平的影響。cc,胼胝體;HP,海馬;A2和B2,分別為A1和B1中方框內(nèi)CC的高倍像;A3和B3,分別為A1和B1中方框內(nèi)HP的高倍像;比例尺:A1和B1,100μm;A2、A3和B2、B3,25μm。Fig. 3 The effects of hypoxia-ischemia on the brain p-ERK level. cc, corpus callosum; HP, hippocampus; A2 and B2, the high magnification images of cc in A1 and B1; A3 and B3, the high magnification images of HP in A1 and B1; scale bar: 100μm in A1 and B1; 25μm in A2, A3, B2 and B3
圖4 免疫熒光檢測缺氧缺血對腦白質(zhì)MBP水平的影響。A2和B2,分別為A1和B1中方框內(nèi)白質(zhì)的高倍像;比例尺:A1和B1,100μm;A2和B2,25μm。Fig.4 The effect of hypoxia-ischemia on MBP level in the white matter of brain; A2 and B2, the high magnification images of the white matter in the frames from A1 and B1; scale bar: 100μm in A1 and B1; 25μm in A2 and B2
圖5 缺血缺氧下調(diào)腦白質(zhì)Fyn、p-ERK、MBP水平。A,F(xiàn)yn、p-ERK、MBP水平代表性Western blot檢測;B,F(xiàn)yn水平的統(tǒng)計學分析;C,p-ERK水平的統(tǒng)計學分析;D,MBP水平的統(tǒng)計學分析; *,與對照組相比,0.01<P<0.05Fig.5 The effect of hypoxia-ischemia on the Fyn, p-ERK, MBP level of brain white matter. A, levels of Fyn, p-ERK, MBP were determined by western blot; B, statistic analysis for Fyn level; C, statistic analysis for p-ERK level; D, statistic analysis for MBP level; *, 0.01<P< 0.05, compared with the control
由于WMⅠ患兒認知和行為學障礙通常在幼兒期才明顯固定化,而1月齡大鼠在神經(jīng)發(fā)育上相當于人類2~5歲幼兒[9]。且研究表明,新生大鼠缺氧缺血后4周可見早期少突膠質(zhì)前體細胞大量增殖,但新生的早期少突膠質(zhì)前體細胞雖可向晚期少突膠質(zhì)前體細胞發(fā)育,卻無法進一步分化為成熟少突膠質(zhì)細胞及產(chǎn)生髓鞘蛋白[10,11]。因此,為明確少突膠質(zhì)細胞無法分化成熟是否與Fyn相關(guān),本實驗選擇缺氧缺血后4周作為觀測點。結(jié)果發(fā)現(xiàn),新生大鼠缺氧缺血后4周,腦組織中的Fyn和MBP水平下降,并且組織學顯示腦白質(zhì)纖維排列疏松,說明Fyn水平下降可能引起髓鞘生成障礙,這與其它報道大致吻合。已有的研究證實,F(xiàn)yn可誘導少突膠質(zhì)細胞發(fā)生遷移[12],促進少突膠質(zhì)細胞和施萬細胞的成熟和發(fā)育[13,14],在中樞神經(jīng)系統(tǒng)髓鞘形成過程中具有不可或缺的作用。Goto等的研究則顯示,F(xiàn)yn基因敲除小鼠與野生型小鼠相比,少突膠質(zhì)細胞的數(shù)量減少且形態(tài)發(fā)生改變,胼胝體稀疏[15]。Xie等發(fā)現(xiàn),新生大鼠腦白質(zhì)發(fā)生炎癥后Fyn含量降低,髓鞘形成障礙[6]。這些研究共同提示Fyn在髓鞘生成中發(fā)揮重要作用,這有賴于Fyn的特性。Fyn為細胞內(nèi)非受體型酪氨酸激酶,為Src家族蛋白酪氨酸激酶中的一員,可通過促使酪氨酸磷酸化發(fā)揮作用,酪氨酸激酶磷酸化級聯(lián)反應(yīng)參與髓鞘形成過程中信號的傳導,其中包括 MAPK/ERK 等信號傳導通路[16]。因此,本研究進一步觀察了ERK的磷酸化水平,結(jié)果顯示缺氧缺血后4周p-ERK的表達降低,由此我們推測,ERK磷酸化水平下降可能與Fyn水平下調(diào)有關(guān)。
缺氧缺血腦白質(zhì)損傷為早產(chǎn)兒腦損傷的常見類型,主要病理表現(xiàn)為髓鞘合成障礙,腦白質(zhì)變疏松甚至軟化。WMⅠ可致存活患兒出現(xiàn)腦癱、認知障礙、視覺異常等嚴重的神經(jīng)系統(tǒng)后遺癥,其發(fā)病機制尚未完全明確,至今仍缺乏有效的防治措施。本研究發(fā)現(xiàn)新生大鼠缺氧缺血后,F(xiàn)yn水平下調(diào)、ERK磷酸化水平降低,同時MBP水平也明顯下調(diào)。由此提示,新生期腦缺氧缺血后可能通過Fyn-ERK通路蛋白的下調(diào)而使MBP水平降低,進而使髓鞘生成障礙,少突膠質(zhì)細胞成熟障礙,最終導致腦白質(zhì)損傷。但缺氧缺血如何誘導Fyn表達下降有待進一步的研究加以證實。
[1] Munck P, Haataja L, Maunu J, et a1. Cognitive outcome at years of age in Finnish infants with very low birth weight born between 2001 and 2006. Acta Paediatr, 2010, 99(3): 359-366.
[2] Thomas SM, Brugge JS. Cellular functions regulated by Src family kinases. Annu Rev Cell Dev Biol, 1997, 13: 513-609. [3] Colognato H, Ramachandrappa S, Olsen ⅠM, et a1. Ⅰntegrins direct Src family kinases to regulate distinct phases of oligodendrocyte development. J Cell Biol, 2004, 167(2): 365-375.
[4] Sperber, BR, Boyle-Walsh EA, Engleka MJ, et al. A unique role for Fyn in CNS myelination. J Neurosci, 2001, 21(6): 2039-2047.
[5] Umemori H, Kadowaki Y, Hirosawa K, et al. Stimulation of myelin basic protein gene transcription by Fyn tyrosine kinase for myelination. J Neurosci, 1999, 19(4):1393-1397. [6] Xie D, Shen F, He S, et al. ⅠL-1beta induces hypomyelination in the periventricular white matter through inhibition of oligodendrocyte progenitor cell maturation via FYN/MEK/ ERK signaling pathway in septic neonatal rats. Glia, 2016, 64(4): 583-602.
[7] 林凌,張更,林巧梅,等. 新生大鼠缺氧缺血腦白質(zhì)損傷模型學習記憶能力的變化.解剖學報,2016,47(6):738-743.
[8] 廖家萬,鐘敬亮,胡煜輝,等. 低氧對大鼠海馬神經(jīng)元酪氨酸蛋白激酶Fyn表達的影響.解剖學雜志,2011,34(4): 511-513.
[9] Jiang W, Duong TM, de Lanerolle NC. The neuropathology of hyperthermic seizures in the rat. Epilepsia, 1999, 40(1): 5-19.
[10] Back SA, Miller SP. Brain injury in premature neonates: A primary cerebral dysmaturation disorder? Ann Neurol, 2014, 75(4): 469-486.
[11] Buser JR, Maire J, Riddle A, et al. Arrested preoligodendrocyte maturation contributes to myelination failure in premature infants. Ann Neurol, 2012, 71(1): 93-109.
[12] De Avila M, Vassall KA, Smith GS, et al. The proline-rich region of 18.5 kDa myelin basic protein binds to the SH3-domain of Fyn tyrosine kinase with the aid of an upstream segment to form a dynamic complex in vitro. Biosci Rep, 2014, 34(6): 775-788.
[13] Czopka T, Ffrench-Constant C, Lyons DA. Ⅰndividual oligodendrocytes have only a few hours in which to generate new myelin sheaths in vivo. Dev Cell, 2013, 25(6):599-609.
[14] Yamauchi J, Miyamoto Y, Torii T, et al. Phosphorylation of cytohesin-1 by Fyn is required for initiation of myelination and the extent of myelination during development. Sci Signal, 2012, 5(243): 1-15.
[15] Goto J, Tezuka T, Nakazawa T, et al. Loss of Fyn tyrosine kinase on the C57BL/6 genetic background causes hydrocephalus with defects in oligodendrocyte development. Mol Cell Neurosci, 2008, 38(2):203-212.
[16] Haley Peckham, Lauren Giuffrida, Rhiannon Wood, et al. Fyn is an intermediate kinase that BDNF utilizes to promote oligodendrocyte myelination. Glia, 2016, 64(2): 255-269.
Hypoxic-ischemic white matter injury and down-regulation of Fyn, p-ERK and MBP in neonatal rat brain
Lin Ling, Zhang Geng, Qiu Ronghui, Luo Daoshu, Lin Qing*
(Department of Human Anatomy, Histology and Embryology, School of Basic Medical Science, Research Center for Neurobiology, Fujian Medical University, Fuzhou 350122, China)
Objective To understand the role that Fyn-ERK pathway plays in hypoxic-ischemic white matter injury in neonatal rats. Methods 3-day-old new born SD rats were randomly divided into control and hypoxic-ischemic groups. The histology of rat brain tissues 4 weeks after operation was examined using HE staining. The distribution and expression level of Fyn, p-ERK and MBP protein were detected by immunocytochemistry and western blotting. Results The white matter injury was observed in hypoxic-ischemic rats. The levels of Fyn, p-ERK and MBP protein significantly decreased in the brains of hypoxic-ischemic rats, compared to the control group. Conclusion The results suggest that hypoxia-ischemia may decrease MBP level in neonatal rats through downregulating Fyn and p-ERK protein levels, which may lead to oligodendrocyte maturation disorder and white matter injury.
Neonatal hypoxia-ischemia; Fyn protein; myelin basic protein; white matter
R722.6
A DOⅠ:10.16705/ j. cnki. 1004-1850.04.004
2017-04-25
2017-08-02
國家自然科學基金青年科學基金項目(81501305);福建省教育廳重點項目(JA13135)
林凌,女(1982 年),漢族,碩士,實驗師
*通訊作者(To whom correspondence should be addressed):linqing522@126.com