劉嬌鳳,胡建安
(中南大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院勞動衛(wèi)生與環(huán)境衛(wèi)生學(xué)系,湖南長沙 410078)
細(xì)胞色素P450(cytochrome P450,CYP450)不僅參與外源化學(xué)物代謝解毒過程,還可代謝活化體內(nèi)的間接致癌物,造成不良后果。另一方面,間接致癌物也可能誘導(dǎo)或抑制CYP450的活性,調(diào)節(jié)代謝轉(zhuǎn)化。間接致癌物等環(huán)境因素作用于人體時,可引起遺傳學(xué)改變,造成致癌致畸等毒作用。近年來的研究表明,環(huán)境因素也可以引起機(jī)體的表觀遺傳學(xué)改變,導(dǎo)致基因調(diào)節(jié)區(qū)破壞和染色質(zhì)結(jié)構(gòu)改變,與致癌等毒效應(yīng)有關(guān)。目前,CYP450相關(guān)的表觀遺傳學(xué)調(diào)控機(jī)制備受關(guān)注。本文對CYP450的DNA甲基化、組蛋白修飾和微RNA(micro RNA,miRNA)調(diào)控等表觀遺傳學(xué)改變與其介導(dǎo)的間接致癌物活化和致癌作用進(jìn)行綜述,以期闡明間接致癌物、CYP450表觀遺傳學(xué)改變與致癌物活化及致癌作用之間的關(guān)系。
人CYP450酶系是參與外源化學(xué)物和內(nèi)源物質(zhì)氧化代謝的重要酶系,主要分布于細(xì)胞的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)、微粒體和線粒體上,有的也存在于液泡膜和質(zhì)膜上。涉及大多數(shù)外源性化學(xué)物代謝的CYP450酶系主要有3大家族,分別為CYP1,CYP2和CYP3[1],其中參與代謝的主要成員包括CYP1A1,CYP1A2,CYP1B1,CYP2A6,CYP2B6,CYP2C9,CYP2C19,CYP2D6,CYP2E1和CYP3A4,上述10種CYP450亞型可代謝近95%外源性化學(xué)物[2]。
間接致癌物,是進(jìn)入機(jī)體后必須經(jīng)過代謝轉(zhuǎn)化形成活性代謝產(chǎn)物才具有致癌作用的外源性化學(xué)物,常見的有多環(huán)芳烴(polycyclic aromatic hydro?carbons,PAH){如苯并(a)芘〔benzo(a)pyrene,B(a)P〕}、2,3,7,8-四氯二苯并對二惡英(2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin,TCDD)、4-(甲基亞硝基氨基)-1-(3-吡啶基)-1-丁酮〔4-(N-nitrosomethyl?amino)-1-(3-pyridyl)butan-1-butanone,NNK〕、聯(lián)苯胺、黃曲霉毒素B1(aflatoxin B1,AFB1)、環(huán)磷酰胺(cyclophosphamide,CTX)、N-二甲基亞硝胺和氯乙烯等。CYP450在人體內(nèi)參與間接致癌物酶促反應(yīng)活化,如B(a)P在CYP450催化下生成7,8-環(huán)氧苯并芘,后者再經(jīng)過環(huán)氧化物水化酶生成7,8-二氫二醇苯并芘,最后經(jīng)CYP450催化形成B(a)P-7,8-二氫二醇-9,10-環(huán)氧化物[benzo(a)pyrene 7,8-dihydrodiol 9,10-epoxides,BPDE]等終致癌物,后者在體內(nèi)發(fā)揮致癌作用。
越來越多的證據(jù)表明,癌癥的發(fā)生不僅受遺傳學(xué)的影響,同時也受表觀遺傳修飾的影響。化學(xué)致癌物作用于機(jī)體所致的表觀遺傳學(xué)改變,主要表現(xiàn)為無核苷酸序列改變的基因功能發(fā)生改變,損傷基因調(diào)控區(qū)和(或)改變?nèi)旧|(zhì)結(jié)構(gòu),從而破環(huán)多種基因正常轉(zhuǎn)錄活性[3]。表觀遺傳修飾可以通過細(xì)胞分裂傳給子代細(xì)胞,在癌癥發(fā)生發(fā)展過程中起至關(guān)重要的作用,主要包括DNA甲基化、組蛋白修飾和非編碼RNA(non-coding RNAs,ncRNA)調(diào)控轉(zhuǎn)錄[4]。
DNA甲基化是指DNA甲基轉(zhuǎn)移酶(DNA meth?ylation transferase,DNMT)將甲基從S-腺苷甲硫氨酸(S-adenosylmethionine)轉(zhuǎn)移到胞嘧啶殘基的第5個碳上,形成5-甲基化胞嘧啶的表觀遺傳現(xiàn)象,可在細(xì)胞分裂過程中傳遞給子細(xì)胞[5]。DNA甲基化僅修飾DNA的堿基,并不改變DNA的核苷酸序列,但可直接抑制RNA聚合酶活性進(jìn)而抑制基因的表達(dá),并且甲基化的DNA通過與特異性結(jié)合蛋白結(jié)合,間接阻礙轉(zhuǎn)錄因子與DNA結(jié)合,從而抑制轉(zhuǎn)錄[6],其發(fā)生可以遍布整個基因組。全基因組DNA低甲基化和CpG島局部高甲基化,是許多人體腫瘤細(xì)胞表觀遺傳學(xué)的共同特征[7]。在致癌物作用下,腫瘤細(xì)胞形成早期便出現(xiàn)DNA甲基化異常,有組織或細(xì)胞特異性,能夠長期穩(wěn)定存在[8]。
組蛋白修飾指核小體組蛋白在相關(guān)酶作用下發(fā)生一系列甲基化、磷酸化或乙?;裙矁r修飾的過程[7]。組蛋白是真核生物染色質(zhì)中富含精氨酸和賴氨酸的堿性蛋白質(zhì),組蛋白氨基端有許多可以被共價修飾的氨基酸殘基,稱為修飾位點(diǎn)。單一修飾位點(diǎn)可發(fā)生多種共價修飾,不同修飾位點(diǎn)上的不同修飾,可影響一系列相關(guān)蛋白的物理化學(xué)性質(zhì)與空間構(gòu)象,從而調(diào)控真核生物基因的表達(dá)[9]。組蛋白的多種修飾方式可誘導(dǎo)或沉默基因表達(dá),被修飾的蛋白可能失去活性,或者獲得活性,或者改變功能。常見的組蛋白修飾包括甲基化、磷酸化、乙酰化、泛素化、糖基化、多聚ADP-核糖基化、羰基化和賴氨酸殘基的生物素(酰)化等[4]。在組蛋白的諸多修飾方式中,甲基化是最常見的組蛋白修飾,由多種組蛋白甲基轉(zhuǎn)移酶催化,并可以單獨(dú)或多次被甲基化[10]。組蛋白甲基化異常參與多種腫瘤的發(fā)生[11]。組蛋白H2B的泛素化會降低組蛋白H3K9的雙甲基化,進(jìn)而抑制DNA甲基化[12]。組蛋白乙?;c轉(zhuǎn)錄啟動相關(guān),可調(diào)節(jié)基因的表達(dá)和染色質(zhì)重塑[13]。
非編碼RNA(non-coding RNA,ncRNA)是指不能翻譯為蛋白質(zhì)的功能性RNA分子,分為看家ncRNA和調(diào)控ncRNA。ncRNA可以多水平多途徑地調(diào)控基因的表達(dá),包括轉(zhuǎn)錄前水平調(diào)節(jié)、基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控、轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)節(jié)、基因翻譯調(diào)控和翻譯后水平調(diào)節(jié)[14]。按照在表觀遺傳學(xué)中調(diào)控作用的不同,可分為小干擾RNA(siRNA)、miRNA、新型非編碼小RNA和長鏈ncRNA,其中miRNA最受研究者們的關(guān)注。miRNA指真核生物中一類大小為19~25 nt并具有調(diào)控功能的ncRNA,主要功能是結(jié)合靶基因mRNA的3′UTR,隨后抑制靶基因的表達(dá)。因此,miRNA主要參與基因轉(zhuǎn)錄后的沉默,其生物學(xué)作用包括細(xì)胞生長、細(xì)胞凋亡、細(xì)胞分化和致癌等[15]。
近年來,隨著表觀遺傳學(xué)研究的進(jìn)展,幾種重要的與間接致癌物代謝活化相關(guān)CYP450酶的DNA甲基化、組蛋白修飾以及miRNA與活化致癌相關(guān)領(lǐng)域研究已取得新的進(jìn)展。
CYP1A包括CYP1A1和CYP1A2。CYP1A1是活化化學(xué)物致癌最主要的亞型,廣泛存在于肝外組織,主要為肺和皮膚,在外源物代謝中約占2.5%,多參與烴類致癌物的活化代謝如常見的環(huán)境致癌物PAH等[16]。CYP1A2是肝中重要的CYP450氧化酶之一,含量約為肝總CYP450氧化酶的13%,是肝中主要的AFB1代謝酶[17]。在外源物代謝中約占8.2%,參與許多前致癌物的代謝活化,如芳香胺、雜環(huán)胺和一些含鹵烴化合物。
2.1.1 CYP1A的DNA甲基化與間接致癌物致癌
研究顯示,DNA甲基化是CYP450基因表達(dá)調(diào)控的關(guān)鍵,許多化學(xué)致癌物活化與DNA甲基化有密切聯(lián)系[18]。CYP1A1的高甲基化(活性較低的CYP1A1,改變致癌物的代謝)和低甲基化(活性較強(qiáng)的CYP1A1,活化間接致癌物)均可影響致癌物的致癌作用[19]。B(a)P及其代謝終致癌物BPDE可引起一系列表觀遺傳作用,包括全基因組DNA甲基化降低、DNMT的抑制以及干擾甲基化過程有關(guān)因子的募集,并且胞嘧啶甲基化后,BPDE與CpG結(jié)合的親和力增加,這些異常表觀遺傳模式會導(dǎo)致基因組的不穩(wěn)定,進(jìn)而引發(fā)CYP1A1,CYP1B1和CYP2B6等蛋白的異常表達(dá)[20]。體外實(shí)驗(yàn)表明,小鼠主動脈血管平滑肌細(xì)胞和人子宮頸癌細(xì)胞暴露于B(a)P后,可使長散布核元件-1再激活,從而導(dǎo)致蛋白酶體依賴性細(xì)胞DNMT1表達(dá)的降低和長散布核元件-1啟動子CpG島內(nèi)胞嘧啶甲基化的持續(xù)降低,這說明B(a)P可通過影響DNMT和某些基因的甲基化轉(zhuǎn)錄活性來發(fā)揮致癌作用[21]。煙草煙霧中含有間接致癌物B(a)P等多種致癌物,直接暴露于煙草煙霧,可引起5000多個基因序列發(fā)生突變和DNA甲基化改變,并最終導(dǎo)致癌癥[22]。吸煙可以引起CYP1A1的DNA甲基化改變,使得吸煙者的甲基化水平低于非吸煙者,甲基化與每日抽煙香煙數(shù)量之間存在負(fù)相關(guān),且在戒煙1~7 d后甲基化增加[23]。研究表明,吸煙可導(dǎo)致前列腺癌的發(fā)生。煙草煙霧中的PAH可激活芳香烴受體(aryl hydrocarbon receptor,AhR),AhR復(fù)合物轉(zhuǎn)移到細(xì)胞核并與AhR核轉(zhuǎn)運(yùn)子(AhR nuclear translocator,ARNT)結(jié)合,然后AhR/ARNT異二聚體結(jié)合CYP1A1轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)上游的特異性DNA識別位點(diǎn)-外源性反應(yīng)元件,可導(dǎo)致CYP1A1啟動子低甲基化,誘導(dǎo)CYP1A1的表達(dá),引發(fā)癌癥[24]。將DNA甲基化抑制劑5-氮雜胞苷加入人宮頸癌細(xì)胞和人乳腺癌細(xì)胞中后,CYP1A1基因表達(dá)明顯增加,證實(shí)DNA甲基化可抑制CYP1A1基因表達(dá)[25]。TCDD可結(jié)合并激活A(yù)hR,AhR轉(zhuǎn)位至核并與ARNT相互作用形成活性異源轉(zhuǎn)錄因子-AhR復(fù)合物(AhR complex,AhRC)。AhRC 可與位于CYP1A1增強(qiáng)子上的DNA結(jié)合位點(diǎn)——二噁英應(yīng)答元件(dioxin response element,DRE)相互作用,誘導(dǎo)CYP1A1基因表達(dá)。當(dāng)DRE位點(diǎn)的CpG高甲基化時,可抑制AhRC與DRE結(jié)合,最終抑制CYP1A1表達(dá)[26]。此外,Okino等[27]報道,在人前列腺癌中,CYP1A1增強(qiáng)子異常高甲基化,可抑制TCDD的反應(yīng)。
上述研究結(jié)果表明,B(a)P等致癌物通過改變DNMT活性等機(jī)制,使啟動子區(qū)CpG島內(nèi)胞嘧啶甲基化降低,CYP1A1基因表達(dá)增加,從而可能促進(jìn)間接致癌物活化,增強(qiáng)致癌作用;而CYP1A1的DNA甲基化異常增高,則可能抑制致癌物活化和致癌作用。
2.1.2 組蛋白修飾與CYP1A介導(dǎo)芳烴類間接致癌物致癌
研究表明,間接致癌物會通過影響組蛋白修飾來改變基因的表達(dá),導(dǎo)致癌癥的發(fā)生。用芳烴類化學(xué)物處理小鼠肝癌細(xì)胞(Hepa-1),可明顯誘導(dǎo)CYP1A1基因5′旁側(cè)區(qū)組蛋白H3K9和H3K14的乙?;?1]。B(a)P暴露可引起組蛋白乙?;?、甲基化和泛素化等改變,如人肝癌細(xì)胞(HepG2)經(jīng)B(a)P染毒可使CYP1A1基因啟動子區(qū)域H3K9,H4K16和H3K14乙?;矫黠@增高;B(a)P處理的人乳腺癌細(xì)胞密歇根癌癥基金會〔(Michigan Cancer Foundation)-7,MCF7〕全基因組H3K9組蛋白乙?;撸?0];結(jié)腸上皮細(xì)胞中,組蛋白脫乙酰酶抑制劑丁酸鹽通過調(diào)節(jié)組蛋白乙?;娠@著增強(qiáng)B(a)P誘導(dǎo)CYP1A1表達(dá)[28-29];組蛋白乙?;€參與TCDD誘導(dǎo)大鼠CYP1A1和CYP1A2的表達(dá)[30]。組蛋白的去乙?;矃⑴c調(diào)控CYP1A1和CYP1A2等多種CYP1基因表達(dá)[31]。此外,間接致癌物2-氨基-1-甲基-6-苯基咪唑并[4,5b]吡啶、4-氨基聯(lián)苯、B(a)P和TCDD聯(lián)合作用于人乳腺上皮細(xì)胞,改變單甲基組蛋白H3(Lys 4)特異性脫甲基酶LSD1的定位,導(dǎo)致其脫甲基化,影響CYP1A1轉(zhuǎn)錄活化[32]。
上述間接致癌物改變CYP1A基因H3K9、H3K14、H4K16或單甲基組蛋白H3(Lys 4)等組蛋白的乙?;蚣谆T導(dǎo)CYP1A表達(dá)增強(qiáng),可能有利于間接致癌物活化,促進(jìn)相應(yīng)靶器官癌癥的發(fā)生。
2.1.3 miRNA對CYP1A介導(dǎo)間接致癌物致癌的作用
間接致癌物B(a)P經(jīng)CYP450代謝后,終致癌物BPDE可改變miRNA表達(dá)譜,導(dǎo)致疾病或癌癥的發(fā)生[33-34]。用B(a)P處理大鼠,發(fā)現(xiàn)肝組織中miR-21,miR-221和miR-222的含量比對照組低2~3倍,而CYP1A1表達(dá)水平和蛋白質(zhì)含量明顯增高,誘發(fā)B(a)P活化導(dǎo)致肝癌的發(fā)生[35]。Choi等[36]用MCF7細(xì)胞實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),miR-892a在CYP1A1的3′-UTR中具有高親和力的結(jié)合位點(diǎn),可抑制CYP1A1翻譯水平,降低mRNA和蛋白表達(dá)。研究發(fā)現(xiàn),B(a)P可通過負(fù)調(diào)節(jié)miR-892a的表達(dá)和活性,誘導(dǎo)CYP1A1的產(chǎn)生。2-氨基-1-甲基-6-苯基咪唑并[4,5b]吡啶在MCF7中主要通過CYP1A2對N-羥基衍生物的作用而代謝活化,活化代謝物可酯化成不穩(wěn)定的硝酸離子,后者其與DNA的鳥嘌呤堿基形成加合物,激活雌激素受體α,從而影響miR?NA(包括miR-21,-663,638,330-5p,miR-518c-5p,-574-5p和923)加工,誘發(fā)乳腺癌[37]。此外,TCDD作用于人乳腺癌細(xì)胞MDA-MB-231和人乳腺導(dǎo)管瘤細(xì)胞BT474,可使miR-335的抑制基因SOX4表達(dá)下調(diào),誘導(dǎo)miR-335表達(dá)增加[38]。斑馬魚胚胎暴露于TCDD后,miRNA的表達(dá)發(fā)生變化(miR-451表達(dá)下調(diào),miR-23a,23b,24和27e表達(dá)上調(diào)),激活A(yù)hR,使其與CYP1A1啟動子中的DRE結(jié)合,誘導(dǎo)CYP1A1大量表達(dá),正反饋促進(jìn)TCDD代謝活化,產(chǎn)生致畸、致癌作用并影響造血和心血管發(fā)育[39]。
CYP1B1是目前發(fā)現(xiàn)的CYP1B亞家族的唯一成員,在人體較多的正常組織和細(xì)胞中表達(dá)較低,而在腫瘤細(xì)胞中顯著高表達(dá),可代謝活化多種外源性致癌物如PAH、雜環(huán)胺、芳香胺和硝基多環(huán)烴等。
CYP1B1表達(dá)可以通過PAH,如TCDD和雌二醇誘導(dǎo),受肽激素、環(huán)磷酸腺苷、AhR和雌激素受體的調(diào)節(jié),在聚芳香族致癌物代謝過程中具有重要作用。CYP1家族的表達(dá)主要通過幾種轉(zhuǎn)錄因子的結(jié)合來調(diào)控,如AhR配體和ARNT異二聚體,具有特定的組織特異性[40]。B(a)P可通過以上機(jī)制上調(diào)炎癥細(xì)胞因子使CYP1B1的表達(dá)上調(diào),如在上皮細(xì)胞中,腫瘤壞死因子α和AhR的協(xié)調(diào)作用影響CYP1B1表達(dá);在小鼠胚胎細(xì)胞中,腫瘤壞死因子α也通過P38與絲裂原和應(yīng)激激活蛋白激酶1級聯(lián)調(diào)節(jié)AhR轉(zhuǎn)錄,增強(qiáng)CYP1B1上調(diào)等[41]。
2.2.1 CYP1B的DNA甲基化與間接致癌物致癌
DNA甲基化是暴露于環(huán)境PAH的動物肺腫瘤發(fā)生過程中的重要潛在靶標(biāo)。研究表明,小鼠CYP1B1對二苯并[a,l]芘(dibenzo[a,l]pyrene,DBP)轉(zhuǎn)化為終致癌物具有很高的活性[42]。DBP和B(a)P等可誘導(dǎo)CYP1B1表達(dá)上調(diào),誘發(fā)小鼠皮膚癌[43]。Fish等[44-45]研究暴露于PAH的小鼠胚胎模型發(fā)現(xiàn),用DBP或B(a)P暴露的后代小鼠肺組織,全基因組DNA CpG島甲基化程度顯著高于正常小鼠肺組織,而腫瘤發(fā)生率明顯升高,且雄性比雌性高3倍以上。研究發(fā)現(xiàn),斑馬魚胚胎和幼蟲隨B(a)P暴露時間的增加,啟動子DNA甲基化百分比明顯降低,可促進(jìn)CYP1B1表達(dá)上調(diào)[46]。Tokizane等[47]報道,CYP1B1啟動子和增強(qiáng)子區(qū)域的甲基化降低使轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合并促進(jìn)CYP1B1基因在前列腺癌中的表達(dá)。而另有研究表明,在TCDD的作用下,已烯雌酚(diethylstilbestrol,DES)與受體結(jié)合,可上調(diào)DNMT的表達(dá)水平,導(dǎo)致CYP1B1等的DNA甲基化修飾特異性增高[48-49],促進(jìn)結(jié)腸直腸癌的發(fā)展。
以上研究說明,某些間接致癌物引起CYP1B1啟動子或增強(qiáng)子CpG位點(diǎn)呈低甲基化,CYP1B1表達(dá)和活性增高,可能促進(jìn)如TCDD和B(a)P等間接致癌物的活化,從而促進(jìn)腫瘤的發(fā)生和發(fā)展。但也有研究發(fā)現(xiàn),胃癌和結(jié)腸直腸癌等的發(fā)生與CYP1B1啟動子或增強(qiáng)子CpG位點(diǎn)甲基化過程中呈高甲基化和CYP1B1表達(dá)下調(diào)有關(guān)[50],其相關(guān)機(jī)制待研究。
2.2.2 組蛋白修飾與CYP1B1介導(dǎo)間接致癌物致癌
斑馬魚胚胎實(shí)驗(yàn)和小鼠實(shí)驗(yàn)均發(fā)現(xiàn),TCDD和B(a)P具有神經(jīng)毒性。Hebaková等[51]報道,在N型神經(jīng)母細(xì)胞瘤細(xì)胞(UKF-NB-3)和S型神經(jīng)母細(xì)胞瘤細(xì)胞(UKF-NB-4)中,組蛋白脫乙酰酶抑制劑如丙戊酸和曲古抑菌素A(trichostatin A,TSA)均可抑制CYP1B1的水平。說明神經(jīng)母細(xì)胞瘤的發(fā)生與CYP1B1組蛋白脫乙酰化有關(guān),而丙戊酸和TSA則發(fā)揮抗腫瘤的作用。提示組蛋白脫乙?;艽龠M(jìn)CYP1B1蛋白表達(dá),增強(qiáng)間接致癌物活化作用。
2.2.3 miRNA對CYP1B1介導(dǎo)內(nèi)分泌干擾物致癌的作用
環(huán)境內(nèi)分泌干擾物如DES和TCDD等具有雌激素特征,可與體內(nèi)雌激素受體α結(jié)合,miR-22,miR-221,miR-222和miR-206可以通過調(diào)控CYP1B1的表達(dá)參與致癌作用[52]。研究發(fā)現(xiàn),B(a)P和3-甲基膽蒽處理的大鼠肝組織中,miRNA-21,miR-221,miR-222和miR-429的表達(dá)水平降低,而CYP2B1 mRNA表達(dá)水平和蛋白質(zhì)含量均增高[53]。Tsuchiya等[54]發(fā)現(xiàn),miR-27b可以通過抑制CYP1B1的翻譯過程而調(diào)節(jié)CYP1B1的蛋白表達(dá)。Patel等[55]報道,白細(xì)胞介素6可通過抑制涉及DNA甲基化的miR-27b表達(dá),上調(diào)CYP1B1,增加結(jié)腸直腸癌的風(fēng)險。此外,還有研究發(fā)現(xiàn),miR-187-5p可通過直接下調(diào)CYP1B1的表達(dá)抑制非小細(xì)胞肺癌中的癌細(xì)胞生長和轉(zhuǎn)移[56]。
因此,miRNA可作為CYP1B1的轉(zhuǎn)錄后調(diào)控因子,改變CYP1B1的mRNA表達(dá)水平、蛋白質(zhì)含量以及活性,影響CYP1B1介導(dǎo)的間接致癌物DES等內(nèi)分泌干擾物的代謝活化及其致癌作用。
人CYP2A基因亞家族中,CYP2A6和CYP2A13氨基酸的同源性為93.5%,可代謝94%相同的化學(xué)物[57],并均參與尼古丁和煙草特異性亞硝胺的代謝活化[58]。CYP2A6蛋白主要在肝表達(dá),在乳腺、卵巢、子宮、睪丸和腎上腺、肺、氣管、鼻黏膜、食管和皮膚等也有表達(dá)[59],約占所有CYP450家族表達(dá)量的10%,主要催化代謝尼古?。?0]。B(a)P可誘導(dǎo)CYP2A6 mRNA和蛋白質(zhì)表達(dá)[61]。
2.3.1 CYP2的DNA甲基化與間接致癌物致癌
CYP2E1可將乙醇代謝成致癌代謝物乙醛,同時還參與活化香煙和食物中的亞硝胺類物質(zhì)以及其他小分子前致癌物如N-亞硝胺、苯胺、氯乙烯和氨基甲酸乙酯等的生物活化[62-63]。Karlgren等[64]發(fā)現(xiàn),相對于胚胎,新生兒晚期與成人的肝組織中,CYP2E1基因內(nèi)含子1區(qū)的CpG島甲基化程度降低,CYP2E1蛋白表達(dá)和活性增高;成人組織CYP2E1基因的低甲基化,其蛋白高表達(dá);而在肺腫瘤中,CYP2E1基因低甲基化與蛋白低表達(dá)有關(guān)。CYP2E1基因低甲基化伴隨的蛋白高表達(dá)和高活性可能影響這些間接化學(xué)物活化和致癌作用。CYP2W1能激活二氫化二醇、AFB1以及雜色曲霉素等多種前致癌物。CYP2W1 mRNA在小鼠、大鼠和人類的胚胎中表達(dá),但在成年動物中逐漸沉默。CYP2W1在許多腫瘤中的表達(dá)和正常組織中缺乏表達(dá)為腫瘤特異性前體藥物靶標(biāo)提供了依據(jù)[64]。CYP2W1基因在外顯子1-內(nèi)含子1區(qū)域中包含一個功能性CpG島,小鼠和人結(jié)腸和小腸細(xì)胞中CYP2W1基因的沉默與CpG島的甲基化增加相關(guān),肺癌、結(jié)腸直腸癌和肝腫瘤細(xì)胞中CYP2W1均發(fā)生了DNA異常甲基化增高[64-65]。
2.3.2 miRNA對CYP2介導(dǎo)間接致癌物致癌的作用
CYP2A13是一種肝外酶,主要在呼吸道表達(dá),可代謝PAH,B(a)P和AFB1等間接致癌物。最近研究表明,CYP2A13在激活NNK、N-亞硝基降煙堿和其他引起呼吸器官癌癥的環(huán)境致癌物質(zhì)方面比,CYP2A6活性更高[66]。人CYP2A13與大鼠CYP2A3類似。Kalscheuer等[67]報道,NNK作用后,大鼠肺組織miR-34b,miR-101,miR-126和miR-199表達(dá)水平降低,miR-126的下調(diào)導(dǎo)致CYP2A3蛋白產(chǎn)生增加,進(jìn)一步在正反饋環(huán)中激活NNK并增加腫瘤的生長。同時,CYP2A2作為小鼠肺部將煙草致癌物NNK代謝為終致癌物的關(guān)鍵酶,miRNA-126也能夠抑制CYP2A2蛋白表達(dá)。另有研究表明,AFB1作用于人支氣管上皮細(xì)胞,CYP2A13過表達(dá)并且形成DNA加合物,增加Bax/Bcl-2比例,并激活聚腺苷二磷酸核糖基聚合酶、胱天蛋白酶3和胱天蛋白酶9,促凋亡蛋白表達(dá)增加,而抗凋亡蛋白表達(dá)降低,從而誘導(dǎo)細(xì)胞毒性和細(xì)胞凋亡,CYP2A13對AFB1代謝活性的作用明顯高于CYB1A2和CYP2A6[68]。同時,王允[69]用肺支氣管上皮細(xì)胞(BEAS-2B)實(shí)驗(yàn)證實(shí),AFB1可誘導(dǎo)CYP2A13的高表達(dá),而miR-138-1*能通過抑制磷酸肌醇依賴性蛋白激酶1的表達(dá),激活調(diào)節(jié)磷脂酰肌醇3激酶/磷酸肌醇依賴性蛋白激酶1/蛋白激酶B信號通路,顯著抑制惡性化細(xì)胞的增殖、遷移、侵襲和克隆形成。由此表明,miR-138-1*可能在CYP2A13代謝活化AFB1,引發(fā)肺癌過程中起抑制作用。此外,CYP2E1可催化亞硝基二甲胺和偶氮化合物等多種相對分子質(zhì)量低的前致癌物[70]。Mohri等[71]最近發(fā)現(xiàn),人肝組織中miR-378參與CYP2E1的轉(zhuǎn)錄后調(diào)控,其過表達(dá)顯著降低CYP2E1的蛋白水平和酶活性,可能使間接致癌物不能在體內(nèi)代謝失活,從而發(fā)揮致癌的作用。
CYP3A4主要在肝和腸道組織表達(dá),表達(dá)水平個體差異很大[72],其代謝底物大部分為藥物,臨床中約有50%的藥物是通過其代謝,但也能夠代謝部分間接致癌物。DNA甲基化、miRNA調(diào)控及組蛋白修飾均可直接調(diào)控CYP3A4表達(dá),同時表觀遺傳機(jī)制還可以通過調(diào)控其上游核受體或轉(zhuǎn)錄因子的表達(dá)而間接調(diào)控CYP3A4表達(dá)[2]。
2.4.1 CYP3A4的DNA甲基化與間接致癌物致癌
Dannenberg等[73]用微陣列實(shí)驗(yàn)檢測甲基化抑制劑5-氮雜-2′-脫氧胞苷處理HepG2細(xì)胞,CYP3A4,CYP3A5和CYP3A7的表達(dá)高出2~4倍,表明這些CYP450受甲基化調(diào)控作用,在外源化學(xué)物代謝和類固醇生物合成的過程中,DNA甲基化可能是阻斷肝癌細(xì)胞CYP450表達(dá)的一個因素。Habano等[74]研究發(fā)現(xiàn),孕烷X 受體(pregnane X receptor,PXR)是調(diào)控CYP3A4的關(guān)鍵性轉(zhuǎn)錄因子,與相鄰的正常黏膜相比,結(jié)腸直腸癌組織中的PXR啟動子甲基化程度低,這表明PXR啟動子低甲基化在致癌過程中上調(diào)CYP3A4 mRNA表達(dá)。
2.4.2 組蛋白修飾與CYP3A4介導(dǎo)PAH和AFB1等間接致癌物致癌
研究表明,CYP3A4可代謝PAH的二氫二醇代謝產(chǎn)物而不是其母體化學(xué)物[75]。在HepG2細(xì)胞中,3-甲基膽蒽激活A(yù)hR,誘導(dǎo)CYP3A4表達(dá)增加。另外,AFB1可被CYP3A4代謝活化形成終致癌物AFB1-8,9-環(huán)氧化物,再與細(xì)胞DNA或蛋白結(jié)合發(fā)揮致癌性。而用組蛋白去乙酰化酶抑制劑TSA處理HepG2細(xì)胞后CYP3A4表達(dá)增加,推測轉(zhuǎn)錄因子與CYP3A4基因的結(jié)合很大程度上取決于組蛋白的甲基化和乙?;癄顟B(tài)[73]。Assenat等[76]報道,合成糖皮質(zhì)激素地塞米松在近端雄烷受體啟動子區(qū)域誘導(dǎo)組蛋白H4乙?;⑼ㄟ^調(diào)節(jié)CAR表達(dá)間接影響CYP3A4誘導(dǎo)。這些組蛋白修飾引起CYP3A4表達(dá)和活性改變,將影響其介導(dǎo)的PAH和AFB1等間接致癌物活化和致癌作用。
2.4.3 miRNA對CYP3A4介導(dǎo)間接致癌物致癌的作用
Pan等[77]發(fā)現(xiàn),在人結(jié)腸腺癌細(xì)胞(LS180)和胰腺癌細(xì)胞(PANC1)中,高表達(dá)miR-27b可通過直接結(jié)合CYP3A4 mRNA的3‘UTR區(qū)域內(nèi)的miRNA響應(yīng)元件抑制CYP3A4的mRNA和蛋白表達(dá)。此外,miR-27b或mmu-miR-298在PANC1中的過表達(dá)導(dǎo)致對CTX的敏感性降低,可能是由于其抑制CYP3A4 mRNA表達(dá)并降低蛋白活性,從而降低CTX的活化作用,使CTX對PANC1產(chǎn)生的細(xì)胞毒性降低。PXR可調(diào)節(jié)藥物代謝酶CYP3A4的轉(zhuǎn)錄表達(dá),miR-148a可與PXR mRNA的3’-UTR區(qū)結(jié)合降低PXR蛋白的合成從而間接抑制CYP3A4表達(dá)[78],在幾種類型的癌癥如胰腺癌、胃癌、結(jié)腸癌、乳腺癌、肺癌、頭頸癌以及黑素瘤和肝母細(xì)胞瘤中,miR-148a表達(dá)均下調(diào)。以上研究表明,在癌細(xì)胞中,CYP3A4的表達(dá)與miR-27b,miR-34a和miR-148a的表達(dá)呈負(fù)相關(guān)的趨勢。這些miRNA可能通過抑制CYP3A4轉(zhuǎn)錄和表達(dá)水平,影響有關(guān)間接致癌物活化,發(fā)揮腫瘤抑癌因子作用。
另外,miR-34a是已知的腫瘤抑制因子,并且在幾種癌癥(包括肝細(xì)胞癌)中上調(diào)。Lamba等[79]指出,miR-34a可能是CYP2C19和CYP3A4表達(dá)的直接或間接負(fù)調(diào)節(jié)因子,并且可以介導(dǎo)肝細(xì)胞核因子4α蛋白質(zhì)水平的抑制以及下調(diào)其結(jié)合活性,影響肝細(xì)胞損傷修復(fù)作用。
綜上所述,B(a)P和TCDD等間接致癌物可通過影響DNMT等機(jī)制,使CYP1A1,CYP1B1和CYP3A4等啟動子區(qū)CpG島胞嘧啶甲基化的降低,促進(jìn)基因轉(zhuǎn)錄以及蛋白的表達(dá)和活性。B(a)P等芳烴類化學(xué)物和TSA也可誘導(dǎo)CYP1A1,CYP3A4和CYP1B1基因的5′旁側(cè)區(qū)組蛋白H3K9,H4K16和H3K14乙?;皆龈?,或組蛋白甲基化或泛素化,促進(jìn)轉(zhuǎn)錄因子與基因的結(jié)合,引起相應(yīng)的CYP450蛋白表達(dá)上調(diào)。B(a)P,NNK,DES和TCDD等還可通過上調(diào)或下調(diào)miR-892a,miR-34b,miR-101,miR-126,miR-199,miR-206,miR-221,miR-222,miR-22,miR-17-5p,miR-20a,miR-92,miR-10a,miR-493-5p和miR-363等的表達(dá),誘導(dǎo)或抑制 CYP1A1,CYP1B1,CYP2A2,CYP2A3,CYP2E和CYP3A4的表達(dá)和活性(表1)。間接致癌物引起這些CYP450的表觀遺傳學(xué)改變誘導(dǎo)CYP450蛋白的表達(dá)和活性改變,從而影響體內(nèi)這些酶相應(yīng)底物(間接致癌物)的活化及致癌作用。CYP450的表觀遺傳學(xué)改變除了通過影響其對間接致癌物氧化活化作用外,還可能通過如促進(jìn)代謝解毒等機(jī)制影響化學(xué)物的致癌作用。
CYP450的表觀遺傳學(xué)改變與間接致癌物活化為終致癌物,引起遺傳毒性效應(yīng),發(fā)揮致癌作用密切相關(guān)。然而,以上一些研究僅在細(xì)胞或動物實(shí)驗(yàn)中用間接致癌物誘導(dǎo)CYP450表觀遺傳改變的初步探討,或是在腫瘤組織中檢測CYP450表觀遺傳學(xué)的改變,并且這方面的研究并不多,也不夠系統(tǒng)和充分。因此,還需要將宏觀與微觀研究緊密結(jié)合,將染色體、DNA和蛋白質(zhì)等水平的表觀遺傳調(diào)控互相關(guān)聯(lián)并且相互整合且進(jìn)行更系統(tǒng)的研究,才能全面掌握細(xì)胞色素CYP450介導(dǎo)間接致癌物活化致癌與表觀遺傳學(xué)改變之間的關(guān)系。另外,介導(dǎo)外源化學(xué)物1活化的氧化代謝酶類還有脂氧合酶和前列腺素合酶等,它們在某些特定的靶器官或?qū)μ囟ǖ拈g接致癌物的活化作用可能更強(qiáng)。因此,這些酶在外源化學(xué)物活化中的作用亦值得研究,包括介導(dǎo)間接致癌物的表觀遺傳學(xué)改變,以利于全面揭示間接致癌物活化和致癌作用機(jī)制,促進(jìn)環(huán)境化學(xué)物致癌的防治。
表1 幾種重要的細(xì)胞色素P450(CYP450)表觀遺傳改變與間接致癌物致癌
續(xù)表1
[1] Qin WJ,Zhou HH.Advances in study of CYP2B6 gene polymorphisms and its functional significances[J].Chin J Clin Pharmacol Ther(中國臨床藥理學(xué)與治療學(xué)),2008,13(12):1434-1440.
[2] He ZN,Zhang B,Chen W.Research progress on the epigenetic regulation mechanism of CYP450s metabolic enzymes[J].Chin J Toxicol(毒理學(xué)雜志),2014,28(5):408-412.
[3] Deng DJ.Several common problems of epigenetic variation and tumor prevention and treatment[J].J Peking Univ(Health Sci)〔北京大學(xué)學(xué)報(醫(yī)學(xué)版)〕,2006,38(06):571-574.
[4] Teng LJ,Li K.Research progress on the relationship between nutrition and cancer epigenetics-histone modification mechanisms[J].Chin J Cancer(癌癥),2007,26(9):1034-1038.
[5] Moore LD,Le T,F(xiàn)an G.DNA methylation and its basic function [J].Neuropsychopharmacology,2013,38(1):23-38.
[6] Wang YS,Jin YT.Research progress on epigenetics of lung cancer[J].J Hyg Res(衛(wèi)生研究),2007,36(1):109-111.
[7] Cheng XM,Shan BD,Zhang TL.Environment and epigenetics[J].Occup Health(職業(yè)與健康),2010,26(18):2136-2138.
[8] Pogribny I,Raiche J,Slovack M,Kovalchuk O.Dose-dependence,sex-and tissue-specificity,and persistence of radiation-induced genomic DNA methylation changes[J].Biochem Biophys Res Commun,2004,320(4):1253-1261.
[9] Strahl BD,Allis CD.The language of covalent histone modi?cations[J].Nature.2000,403(6765):41-45.
[10] Berger SL.The complex language of chromatin regulation during transcription[J].Nature,2007,447(7143):407-412.
[11] Grewal SI,Jia S.Heterochromatin revisited[J].Nat Rev Genet,2007,8(1):35-46.
[12] Sridhar VV,Kapoor A,Zhang K,Zhu J,Zhou T,Hasegawa PM,et al.Control of DNA methylation and heterochromatic silencing by histone H2B deubiq?uitination[J].Nature,2007,447(7145):735-738.
[13] Saha RN,Pahan K.HATs and HDACs in neurode?generation:a tale of disconcerted acetylation homeo?stasis[J].Cell Death Differ,2006,13(4):539-550.
[14] Yang FL,Rao ZZ,Chen HC.RNA regulation for gene expression[J].Chem Life(生命的化學(xué)),2014,34(1):119-125.
[15] He Q,Liu Y,Sun W.Statistical analysis of noncoding RNA data[J].Cancer Lett,2018,417:161-167.
[16] Hu YZ, Yao TW.Research progress of cyto?chrome P4501A[J].Chin Pharm J(中國藥學(xué)雜志),2003,38(4):246-250.
[17] Jin J,Xiao ZG,Chen HJ.Cytochrome CYP1A2 gene polymorphism and its effect on metabolism[J].Chin J Clin Pharm(中國臨床藥學(xué)雜志),2005,14(1):60-62.
[18] Ingelman-Sundberg M, Sim SC, GomezA,Rodriguez-Antona C.Influence of cytochrome P450 polymorphisms on drug therapies:pharmacoge?netic,pharmacoepigenetic and clinical aspects[J].Pharmacol Ther,2007,116(3):496-526.
[19] Tamási V,Monostory K,Prough RA,F(xiàn)alus A.Role of xenobiotic metabolism in cancer:involve?ment of transcriptional and miRNA regulation of P450s[J].Cell Mol Life Sci,2011,68(7):1131-1146.
[20] Sadikovic B,Andrews J,Carter D,Robinson J,Rodenhiser DI.Genome-wide H3K9 histone acety?lation profiles are altered in benzopyrene-treated MCF7 breast cancer cells[J].J Biol Chem,2008,283(7):4051-4060.
[21] Teneng I,Montoya-Durango DE,Quertermous JL,Lacy ME,Ramos KS.Reactivation of L1 retrotrans?poson by benzo(a)pyrene involves complex genetic and epigenetic regulation[J].Epigenetics,2011,6(3):355-367.
[22] Alexandrov LB,Ju YS,Haase K,Van Loo P,Martincorena I,Nik-Zainal S,et al.Mutational signatures associated with tobacco smoking in human cancer[J].Science,2016,354(6312):618-622.
[23] Anttila S,Hakkola J,Tuominen P,Elovaara E,Husgafvel-Pursiainen K,Karjalainen A,et al.Methylation of cytochrome P4501A1 promoter in the lung is associated with tobacco smoking[J].Cancer Res,2003,63(24):8623-86238.
[24] Mitsui Y, Chang I, Kato T, Hashimoto Y,Yamamura S,F(xiàn)ukuhara S,et al.Functional role and tobacco smoking effects on methylation of CYP1A1 gene in prostate cancer[J].Oncotarget,2016,7(31):49107-49121.
[25] Yang J,Tan J,Zou JJ,Zhou JS,Xie HT.DNA methylation and the regulation of P450 enzymes and transporters:implications for interindividual variability in response to drugs[J].Chin J Clin Pharmacol Ther(中國臨床藥理學(xué)與治療學(xué)),2010,15(11):1294-1299.
[26] Takahashi Y,Suzuki C,Kamataki T.Silencing of CYP1A1 expression in rabbits by DNA methylation[J].Biochem Biophys Res Commun,1998,247(2):383-386.
[27] Okino ST,Pookot D,Li LC,Zhao H,Urakami S,Shiina H,et al.Epigenetic inactivation of the dioxinresponsive cytochrome P4501A1 gene in human prostate cancer[J].Cancer Res,2006,66(15):7420-7428.
[28] Zapletal O,Tylichová Z,Nea J,Kohoutek J,Machala M,Milcová A,et al.Butyrate alters expression of cytochrome P4501A1 and metabo?lism of benzo[a]pyrene via its histone deacety?lase activity in colon epithelial cell models[J].Arch Toxicol,2017,91(5):2135-2150.
[29] Schnekenburger M,Peng L,Puga A.HDAC1 bound to the CYP1A1 promoter blocks histone acetylation associated with Ah receptor-mediated trans-activation[J].Biochim Biophys Acta,2007,1769(9-10):569-578.
[30] Nakajima M,Iwanari M,Yokoi T.Effects of histone deacetylation and DNA methylation on the constitu?tive and TCDD-inducible expressions of the human CYP1 family in MCF-7 and HeLa cells[J].Toxicol Lett,2003,144(2):247-256.
[31] Zhang L,Zhang GL.Progress in the mechanism of epigenetic regulation of cytochrome P450 drug metabolism enzymes[J].Prog Physiol Sc(i生理科學(xué)進(jìn)展),2010,41(3):209-213.
[32] Bradley C,van der Meer R,Roodi N,Yan H,Chandrasekharan MB,Sun ZW,et al.Carcinogen-induced histone alteration in normal human mammary epithelial cells[J].Carcinogenesis,2007,28(10):2184-2192.
[33] Han Z,Yang Q,Liu B,Wu J,Li Y,Yang C,Jiang Y.MicroRNA-622 functions as a tumor suppressor by targeting K-Ras and enhancing the anticarcinogenic effect of resveratrol[J].Carcino?genesis,2012,33(1):131-139.
[34] Zhao Y,Liu H,Li Y,Wu J,Greenlee AR,Yang C,et al.The role of miR-506 in transformed 16HBE cells induced by anti-benzo[a]pyrene-trans-7,8-dihy?drodiol-9,10-epoxide[J].Toxicol Lett,2011,205(3):320-326.
[35] Gulyaeva LF,Chanyshev MD,Kolmykov SK,Ushakov DS,Nechkin SS.Effect of xenobiotics on micro RNA expression in rat liver[J].Biomed Khim,2016,62(2):154-159.
[36] Choi YM,An S,Lee EM,Kim K,Choi SJ,Kim JS,et al.CYP1A1 is a target of miR-892a-mediated post-transcriptional repression[J].Int J Oncol,2012,41(1):331-336.
[37] Papaioannou MD,Koufaris C,Gooderham NJ.The cooked meat-derived mammary carcinogen 2-amino-1-methyl-6-phenylimidazo[4,5-b]pyridine(PhIP)elicits estrogenic-like micro RNA responses in breast cancer cells[J].Toxicol Lett,2014,229(1):9-16.
[38] Zhang S,Kim K,Jin UH,Pfent C,Cao H,Amendt B,et al.Aryl hydrocarbon receptor ago?nists induce micro RNA-335 expression and inhibit lung metastasis of estrogen receptor negative breast cancer cells[J].Mol Cancer Ther,2012,11(1):108-118.
[39] Jenny MJ,Aluru N,Hahn ME.Effects of short-term exposure to 2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin on micro RNA expression in zebrafish embryos[J].Toxicol Appl Pharmacol,2012,264(2):262-273.
[40] HabanoW, GamoT, SugaiT, OtsukaK,Wakabayashi G,Ozawa S.CYP1B1,but not CYP1A1,is downregulated by promoter methyla?tion in colorectal cancers[J].Int J Oncol,2009,34(4):1085-1091.
[41] Smerdová L, ?merdová J, Kabátková M,Kohoutek J,Bla?ek D,Machala M,et al.Upregu?lation of CYP1B1 expression by inflammatory cyto?kines is mediated by the p38 MAP kinase signal transduction pathway[J].Carcinogenesis,2014,35(11):2534-2543.
[42] Castro DJ,Baird WM,Pereira CB,Giovanini J,L?hr CV,F(xiàn)ischer KA,et al.Fetal mouse CYP1B1 and transplacental carcinogenesis from maternal exposure to dibenzo(a,l)pyrene[J].Cancer Prev Res(Phila),2008,1(2):128-134.
[43] Siddens LK,Bunde KL,Harper TA Jr,McQuistan TJ,L?hr CV,Bramer LM,et al.Cytochrome P4501b1 in polycyclic aromatic hydrocarbon(PAH)-induced skin carcinogenesis:tumorigenicity of individual PAHs and coal-tar extract,DNA adduction and expression of select genes in the Cyp1b1 knockout mouse[J].Toxicol Appl Pharmacol,2015,287(2):149-160.
[44] Fish TJ,Benninghoff AD.Data on the effect ofin uteroexposure to polycyclic aromatic hydrocar?bons on genome-wide patterns of DNA methylation in lung tissues[J].Data Brief,2017,13:498-513.
[45] Fish TJ,Benninghoff AD.DNA methylation in lung tissues of mouse offspring exposedin uteroto polycyclic aromatic hydrocarbons[J].Food Chem Toxicol,2017,109(Pt 1):703-713.
[46] Corrales J, Fang X, Thornton C, Mei W,Barbazuk WB,Duke M,et al.Effects on specific promoter DNA methylation in zebrafish embryos and larvae following benzo[a]pyrene exposure[J].Comp Biochem Physiol C Toxicol Pharmacol,2014,163:37-46.
[47] Tokizane T,Shiina H,Igawa M,Enokida H,Urakami S,Kawakami T,et al.Cytochrome P4501B1 is overexpressed and regulated by hypometh?ylation in prostate cancer[J].Clin Cancer Res,2005,11(16):5793-5801.
[48] Sato K,F(xiàn)ukata H,Kogo Y,Ohgane J,Shiota K,Mori C.Neonatal exposure to diethylstilbestrol alters the expression of DNA methyltransferases and methylation of genomic DNA in the epididymis of mice[J].Endocr J,2006,53(3):331-337.
[49] Jenkins S,Rowell C,Wang J,Lamartiniere CA.Prenatal TCDD exposure predisposes for mammary cancer in rats[J].Reprod Toxicol,2007,23(3):391-396.
[50] Kang GH,Lee S,Cho NY,Gandamihardja T,Long TI,Weisenberger DJ,et al.DNA methylation profiles of gastric carcinoma characterized by quantitative DNA methylation analysis[J].Lab Invest,2008,88(2):161-170.
[51] HebakováJ,Poljaková J,Eckschlager T,Hraběta J,Procházka P,Smutny′S,et al.Histone deacetylase inhibitors valproate and trichostatin A are toxic to neuroblastoma cells and modulate cyto-chrome P4501A1,1B1 and 3A4 expression in these cells[J].Interdiscip Toxicol,2009,2(3):205-210.
[52] Wen CJ,F(xiàn)u LJ,Wu LD,Chen W,Zhang T,Zhou HH.Development of micro RNA-dependent control of cytochrome P450[J].Chin J Clin Pharmacol Ther(中國臨床藥理學(xué)與治療學(xué)),2011,16(11):1304-1309.
[53] Chanyshev MD, Kosorotikov NI, Titov SE,Kolesnikov NN,Gulyaeva LF.Expression of micro RNAs,CYP1A1 and CYP2B1 in the livers and ovaries of female rats treated with DDT and PAHs[J].Life Sci,2014,103(2):95-100.
[54] Tsuchiya Y,Nakajima M,Takagi S,Taniya T,Yokoi T.MicroRNA regulates the expression of human cytochrome P4501B1[J].Cancer Res,2006,66(18):9090-9098.
[55] PatelSAA, Bhambra U, Charalambous MP,David RM,Edwards RJ,Lightfoot T,et al.Inter?leukin-6 mediated upregulation of CYP1B1 and CYP2E1 in colorectal cancer involves DNA methyl?ation, miR27b and STAT3[J].Br J Cancer,2014,111(12):2287-2296.
[56] Mao M,Wu Z,Chen J.MicroRNA-187-5p suppresses cancer cell progression in non-small cell lung cancer(NSCLC)through down-regulation of CYP1B1[J].Biochem Biophys Res Commun,2016,478(2):649-655.
[57] DeVore NM,Smith BD,Urban MJ,Scott EE.Key residues controlling phenacetin metabolism by human cytochrome P4502A enzymes[J].Drug Metab Dispos,2008,36(12):2582-2590.
[58] Bao Z,He XY,Ding X,Prabhu S,Hong JY.Metabolism of nicotine and cotinine by human cyto?chromeP4502A13[J].Drug Metab Dispos,2005,33(2):258-261.
[59] Nakajima M,Itoh M,Sakai H,F(xiàn)ukami T,Katoh M,Yamazaki H,et al.CYP2A13 expressed in human bladder metabolically activates 4-aminobiphenyl[J].Int J Cancer,2006,119(11):2520-2526.
[60] Abu-Bakar A,Hakkola J,Juvonen R,Rahnasto-Rilla M,Raunio H,Lang MA.Function and regulation of the Cyp2a5/Cyp2a6 genes in response to toxic in?sults in the liver[J].Curr Drug Metab,2013,14(1):137-150.
[61] Hu H,Yu T,Arpiainen S,Lang MA,Hakkola J,Abu-Bakar A.Tumour suppressor protein p53 regu?lates the stress activated bilirubin oxidase cytochrome P4502A6[J].Toxicol Appl Pharmacol,2015,289(1):30-39.
[62] Ghanayem BI,Hoffler U.Investigation of xenobiotics metabolism,genotoxicity,and carcinogenicity using Cyp2e1-/-mice[J].Curr Drug Metab,2007,8(7):728-749.
[63] Zhou SY,Hu JA,Huang C.DNA methylation of oxida?tive metabolic enzymes:research progress[J].Chin J Pharmacol Toxico(l中國藥理學(xué)與毒理學(xué)雜志),2016,30(4):405-414.
[64] Karlgren M, GomezA, StarkK, Sv?rdJ,Rodriguez-Antona C,Oliw E,et al.Tumor-specific expression of the novel cytochrome P450 enzyme,CYP2W1[J].Biochem Biophys Res Commun,2006,341(2):451-458.
[65] Choong E,Guo J,Persson A,Virding S,Johansson I,Mkrtchian S,et al.Developmental regulation and induction of cytochrome P4502W1,an enzyme expressed in colon tumors[J/OL].PLoS One,2015,10(4):e0122820(2015-04-02).https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4386763/
[66] Shimada T, Takenaka S, Murayama N,Kramlinger VM,Kim JH,Kim D,et al.Oxidation of pyrene,1-hydroxypyrene,1-nitropyrene and 1-acetylpyrene by human cytochrome P4502A13[J].Xenobiotica,2016,46(3):211-224.
[67] Kalscheuer S,Zhang X,Zeng Y,Upadhyaya P.Differential expression of micro RNAs in earlystage neoplastic transformation in the lungs of F344 rats chronically treated with the tobacco carcinogen 4-(methylnitrosamino)-1-(3-pyridyl)-1-butanone[J].Carcinogenesis,2008,29(12):2394-2399.
[68] Yang XJ,Lu HY,Li ZY,Bian Q,Qiu LL,Li Z,et al.Cytochrome P4502A13 mediates aflatoxin B1-induced cytotoxicity and apoptosis in human bron?chial epithelial cells[J].Toxicology,2012,300(3):138-148.
[69] Wang Y.Critical roles and mechanisms of miR-138-1*in the malignant transformation of B-2A13 cells induced by aflatoxin B1(miR-138-1*在黃曲霉素B1誘導(dǎo)的BEAS-2B細(xì)胞惡性轉(zhuǎn)化中的作用及機(jī)制研究)[D].Nanjing:Nanjing Medical University(南京醫(yī)科大學(xué)),2015.
[70] Lu Y,Cederbaum AI.CYP2E1 and oxidative liver injury by alcohol[J].Free Radic Biol Med,2008,44(5):723-738.
[71] Mohri T,Nakajima M,F(xiàn)ukami T,Takamiya M,Aoki Y,Yokoi T.Human CYP2E1 is regulated by miR-378[J].Biochem Pharmacol,2010,79(7):1045-1052.
[72] Zhou SF.Drugs behave as substrates,inhibitors and inducers of human cytochrome P4503A4[J].Curr Drug Metab,2008,9(4):310-322.
[73] Dannenberg LO,Edenberg HJ.Epigenetics of gene expression in human hepatoma cells:expres?sion profiling the response to inhibition of DNA methylation and histone deacetylation [J/OL].BMC Genomics,2006,7:181(2016-07-19).https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC1574318/
[74] Habano W,Gamo T,Terashima J,Sugai T,Otsuka K,Wakabayashi G,et al.Involvement of promoter methylation in the regulation of pregnane X receptor in colon cancer cells[J/OL].BMC Cancer,2011,11:81(2011-02-22).https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3053268/
[75] Luckert C,Ehlers A,Buhrke T,Seidel A,Lampen A,Hessel S.Polycyclic aromatic hydrocarbons stimu?late human CYP3A4 promoter activity via PXR[J].Toxicol Lett,2013,222(2):180-188.
[76] Assenat E,Gerbal-Chaloin S,Larrey D,Saric J,F(xiàn)abre JM,Maurel P,et al.Interleukin 1B inhibits CAR-induced expression of hepatic genes involved in drug and bilirubin clearance [J].Hepatology,2004,40(4):951-960.
[77] Pan YZ,Gao W,Yu AM.MicroRNAs regulate CYP3A4 expression via direct and indirect targeting[J].Drug Metab Dispos,2009,37(10):2112-2117.
[78] Takagi S,Nakajima M,Mohri T,Yokoi T.Posttranscriptional regulation of human pregnane X receptor by micro-RNA affects the expression of cytochrome P4503A4[J].J Biol Chem,2008,283(15):9674-9680.
[79] Lamba V,Ghodke Y,Guan W,Tracy TS.micro RNA-34a is associated with expression of key hepatic transcription factors and cytochromes P450[J].Biochem Biophys Res Commun,2014,445(2):404-411.
[80] Chen ZH,Huang HY,Dai JX.Carcinogenesisassociated epigenetic mechanisms of benzo[a]pyrene carcinogenicity[J].Toxicology(毒理學(xué)雜志),2016,30(6):465-468.