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      抗乙肝病毒基因治療研究新進(jìn)展

      2018-08-07 09:38許桂丹肖樹榮鄧益斌
      右江醫(yī)學(xué) 2018年3期
      關(guān)鍵詞:基因治療乙肝病毒乙肝

      許桂丹 肖樹榮 鄧益斌

      【關(guān)鍵詞】乙肝病毒;乙肝;基因治療

      中圖分類號(hào):R459.9文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:ADOI:10.3969/j.issn.1003-1383.2018.03.025

      乙肝病毒(Hepatitis B Virus,HBV)感染呈世界性分布,是一種以引起宿主肝細(xì)胞炎性和損壞病變?yōu)橹饕卣鞯膫魅拘约膊?。全球約有2.4億慢性乙肝病毒攜帶者(chronic hepatitis B, CHB),每年由HBV感染引起肝硬化、肝癌等嚴(yán)重病變而致患者死亡近70萬人,已成為目前全球性健康問題[1]。我國是HBV感染高發(fā)區(qū),HBV攜帶者近億人,其中有20%~30%患者發(fā)展為肝硬化、肝癌等嚴(yán)重病變,且呈逐年遞增趨勢[2]。目前,臨床抗HBV治療的藥物主要有干擾素、核苷類似物、中草藥等。其中干擾素通過作用于細(xì)胞表面受體促使細(xì)胞產(chǎn)生抗病毒蛋白,調(diào)節(jié)免疫功能,進(jìn)而發(fā)揮病毒抑制作用,但毒副作用大,長期使用可影響患者的造血功能;核苷類似物通過競爭抑制HBV聚合酶活性,從而阻斷病毒DNA的復(fù)制,但長期使用可引起病毒變異產(chǎn)生耐藥;而中草藥的抗病毒療效又不明確。近年來,隨著基因治療研究的不斷深入,其抗病毒作用的研究也引起了人們的廣泛關(guān)注,本文擬對反義治療、反基因治療、衣殼蛋白靶向滅活(Capsid-targeted viral inactivation,CTVI)、顯性負(fù)性突變體(Dominant negative mutants,DNM)、新型基因編輯等技術(shù)作一綜述,以期為抗HBV基因治療研究提供參考。

      1HBV生物學(xué)及其感染復(fù)制周期

      HBV是由3.2 kb組成、具有包膜的部分雙鏈松弛環(huán)狀DNA(relaxed circular DNA, rcDNA)嗜肝病毒,包括S、C、P和X四個(gè)開放讀碼區(qū)(open reading frame, ORF),其中S和C區(qū)是保守區(qū),也是基因治療的理想靶位。HBV感染過程包括,①侵入:HBV與受體結(jié)合后進(jìn)入肝細(xì)胞,脫去包膜形成含有rcDNA的核心顆粒,然后進(jìn)入細(xì)胞核,在DNA聚合酶的作用下形成cccDNA。②轉(zhuǎn)錄:以cccDNA作為模板,轉(zhuǎn)錄成前基因組RNA(pregenomic RNA,pgRNA)和信使RNA(messenger RNA,mRNA)并進(jìn)入胞漿。③翻譯:pgRNA、mRNA共同作用翻譯成HBV各種蛋白,包括HBX、HBsAg(外膜蛋白)、HBeAg/HBcAg(即核殼蛋白)、DNA多聚酶等。④逆轉(zhuǎn)錄:以pgRNA為模板經(jīng)一系列酶促逆轉(zhuǎn)錄先后形成負(fù)鏈DNA,正鏈DNA,含有rcDNA的核心顆粒。⑤裝配:步驟③④中形成的各種病毒蛋白、酶和含有rcDNA的核心顆粒裝配形成完整的HBV并釋放至肝細(xì)胞外。此外部分含有rcDNA的核心顆粒再次入核補(bǔ)充cccDNA庫。HBV的感染復(fù)制周期可為基因治療靶位的選擇、定位和效果評估提供重要的理論科學(xué)依據(jù)。

      2抗 HBV基因治療

      2.1反義治療反義技術(shù)是根據(jù)堿基配對的原理人工設(shè)計(jì)的反義基因片段與體內(nèi)某些特定基因位點(diǎn)中的DNA或RNA互補(bǔ),從而控制該基因的表達(dá),阻斷相應(yīng)蛋白質(zhì)的產(chǎn)生[3]。目前,HBV的反義治療主要包括反義DNA、反義RNA、核酶技術(shù)和RNA干擾(RNA interference, RNAi)。

      2.1.1反義DNA早在1995年,陳常慶等[4]就對反義DNA抗HBV的抑制效果作了研究,雖然 PreS區(qū)及C區(qū)的反義DNA片段抑制效果明顯,但是硫代合成的DNA片段有一定的毒性,且毒性大小與硫代數(shù)量成正比。由于穩(wěn)定性和毒性的緣故,反義DNA在抗HBV研究上受到限制。近幾年,鎖核酸(locked nucleic acid,LNA)由于具有熱穩(wěn)定性和脂溶性好,分子雜交能力和抗核酸酶降解能力強(qiáng)以及細(xì)胞毒性低等優(yōu)勢[5],成為核酸研究領(lǐng)域的新熱點(diǎn)。Deng YB等[6]針對乙肝病毒保守區(qū)S、C設(shè)計(jì)反義LNA片段,觀察其對轉(zhuǎn)基因小鼠體內(nèi)HBV復(fù)制的影響,結(jié)果發(fā)現(xiàn),反義LNA對HBV復(fù)制和表達(dá)均有較顯著的影響,單靶區(qū)S,單靶區(qū)C和雙靶區(qū)SC各組對HBsAg表達(dá)的平均抑制率分別為36.63%,31.50%和5487%,對HBV DNA復(fù)制的平均抑制率分別為2397%,21.13%和35.83%;在注射后的1、3、5 天,HBsAg的平均抑制率分別為14.40%,25.61%和3133%,HBV DNA的平均抑制率分別為1104%,19.24%和24.13%;且肝、腎功能指標(biāo)未發(fā)現(xiàn)異常,結(jié)果表明HBV S/C基因位點(diǎn)的反義LNA能較強(qiáng)地抑制轉(zhuǎn)基因小鼠HBV的復(fù)制和表達(dá)且無毒副作用,雙基因靶位抑制效果優(yōu)于單基因靶位。同樣的試驗(yàn)對前C/C雙靶區(qū)反義LNA進(jìn)行研究,再一次證明針對互補(bǔ)于保守區(qū)的LNA片段可較強(qiáng)地抑制HBV的復(fù)制且無毒副作用,且雙靶區(qū)抑制效果明顯高于單靶區(qū)[7]。反義DNA為乙肝基因治療提供了新的實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

      2.1.2反義RNA20多年的抗HBV反義RNA治療研究表明,它能顯著抑制HBV復(fù)制,是比較理想的基因治療策略[8~10]。反義RNA片段能干擾乙肝抗原的生成,有效抑制HBV病毒的復(fù)制,在細(xì)胞試驗(yàn)中抗原表達(dá)抑制率高達(dá)60%~75%,但是對HBV復(fù)制和轉(zhuǎn)錄水平影響不大[10]。篩選出有效的靶點(diǎn)十分重要,Nash等[11]設(shè)計(jì)互補(bǔ)于HBV mRNA水平上的包裝信號(hào)ε,HBs和HBx蛋白的反義RNA片段,用慢病毒載體介導(dǎo)轉(zhuǎn)染,結(jié)果顯示針對HBs蛋白的反義RNA片段能有效抑制HBV的復(fù)制,而針對HBx蛋白的反義RNA片段則是無效的,同時(shí)慢病毒載體可以使基因片段持續(xù)表達(dá)長達(dá)4個(gè)月。Billioud等[9]的細(xì)胞和動(dòng)物試驗(yàn)結(jié)果顯示,特定的反義寡核苷酸能有效抑制HBV的復(fù)制,聯(lián)合使用恩替卡韋效果更佳,因此在臨床治療乙肝上可以考慮聯(lián)合用藥的方式來增強(qiáng)療效。

      2.1.3核酶技術(shù)核酶技術(shù)包括核酶和脫氧核酶。核酶是指能特異性地剪切mRNA片段,從而阻斷mRNA的表達(dá),具有催化活性的特殊反義RNA。研究表明靶向性的核酶片段能有效抑制HBV的復(fù)制[11]。Xia等[12]利用核酶針對HBV pgRNA的PreS1和表面區(qū)域設(shè)計(jì)的核酸序列,以沙門氏菌介導(dǎo)轉(zhuǎn)染的小鼠動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中,HBV基因的表達(dá)水平抑制率高達(dá)95%,HBV DNA水平減少高達(dá)200 000倍。脫氧核酶是指能催化切割特定的RNA或DNA的酶。Hou等設(shè)計(jì)互補(bǔ)于HBV的X蛋白,S基因和C基因的10~23個(gè)不同長度的脫氧核酶片段進(jìn)行細(xì)胞試驗(yàn),結(jié)果能分別顯著下調(diào)HBx,HBsAg和 HBeAg的蛋白水平,有效抑制HBV病毒復(fù)制,而且細(xì)胞毒性試驗(yàn)顯示其對細(xì)胞未見毒副作用[13~14]。但是,由于核酸酶存在活性期短、易被破壞、價(jià)格昂貴、難分離和純化等缺點(diǎn)限制了其在抗HBV基因治療上的應(yīng)用。

      2.1.4RNAi由高度保守的短雙鏈RNA誘導(dǎo)同源RNA降解,引起轉(zhuǎn)錄后特異基因的沉默現(xiàn)象稱RNAi,國內(nèi)外學(xué)者對RNAi技術(shù)在乙肝基因治療領(lǐng)域已經(jīng)做了大量研究,并且它的功能性和高效性已得到普遍認(rèn)可[15]。通過深入研究病毒進(jìn)入細(xì)胞過程的詳細(xì)機(jī)制,Verrier等[16]發(fā)現(xiàn)磷脂酰肌醇蛋白聚糖-5在病毒入胞、細(xì)胞分裂和生長以及肝癌等HBV相關(guān)疾病中起重要作用,可以作為新靶點(diǎn)應(yīng)用于RNAi和其他基因治療方法的研究上?;赗NAi原理研發(fā)的ARC-520基因藥物,在mRNA水平上封閉HBV某些蛋白的表達(dá),有望成為功能性治愈乙肝的CHB藥物,是已經(jīng)被美國食品藥品監(jiān)督管理局批準(zhǔn)的功能性治愈乙肝藥物。Schluep等[17]對54名健康志愿者進(jìn)行ARC-520安全性、耐藥性、藥代動(dòng)力學(xué)和藥物不良反應(yīng)的試驗(yàn),評估結(jié)果良好,雖少量出現(xiàn)過敏反應(yīng),而過敏反應(yīng)可以口服抗組胺藥物應(yīng)對。但是,ARC-520基因藥物在廣泛應(yīng)用于臨床之前,其安全性和實(shí)用性還需要更多的實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)和臨床結(jié)果的支持。

      2.2反基因治療反基因治療技術(shù)已廣泛應(yīng)用于治療腫瘤和病毒性疾病方面的研究,但在抗HBV治療方面的研究報(bào)道較少。Deng YB等[18]針對HBV S、PreS1、PreS2等基因同聚嘌呤區(qū)設(shè)計(jì)反基因LNA片段,并觀察其對細(xì)胞內(nèi)病毒復(fù)制和轉(zhuǎn)錄的影響,結(jié)果發(fā)現(xiàn),互補(bǔ)于S基因同聚嘌呤區(qū)的LNA轉(zhuǎn)染hepG22.15細(xì)胞6天后,對HBV DNA復(fù)制、HBsAg、HBeAg的表達(dá)抑制率分別達(dá)52.4%,57.48%和2963%。針對HBV PreS1基因作同樣的試驗(yàn)也得到類似的結(jié)論,轉(zhuǎn)染7天后,HBV DNA復(fù)制、HBsAg及PreS1的表達(dá)受到明顯的抑制,抑制率分別為6599%,67.49%和63.88%[19]。針對PreS2的LNA序列研究中,用半乳糖配體介導(dǎo)轉(zhuǎn)染HepG2.2.15細(xì)胞,7 d后對HBV DNA復(fù)制、HBsAg和PreS2抗原的表達(dá)抑制率分別達(dá)61.56%、68.18%和7282%[20]。反基因LNA有望成為新的抗病毒核酸分子藥物。

      2.3衣殼蛋白靶向滅活(Capsid-targeted viral inactivation,CTVI)CTVI是通過將病毒的衣殼蛋白與核酸酶的融合蛋白靶向地導(dǎo)入至病毒顆粒內(nèi)部,使病毒核酸降解,起到抑制病毒復(fù)制的目的。Beterams等[21]研究發(fā)現(xiàn)金黃色葡萄球菌酶與核心蛋白的融合蛋白作用于細(xì)胞后,能干擾HBV衣殼內(nèi)病毒DNA的合成或?qū)е碌腄NA快速降解。利用CTVI構(gòu)建的核心蛋白(Core)與載脂蛋白B mRNA編輯酶多肽3C(apolipoprotein B mRNA-editing enzyme catalytic polypeptide,APOBEC3C,又簡稱A3C),轉(zhuǎn)染于HepG2細(xì)胞中,core-A3C可以使HBV基因組發(fā)生腺嘌呤(A)→鳥嘌呤(G)的突變急劇增多,HBV的復(fù)制受到明顯的抑制[22]。

      2.4顯性負(fù)性突變體(Dominant negative mutants,DNM)等位基因中其中一個(gè)失活或突變導(dǎo)致另一個(gè)正常等位基因也喪失功能活性,都稱DNM。1994年Scaglioni等[23]對DNM應(yīng)用與乙肝基因治療研究進(jìn)行了首次報(bào)道,他們根據(jù)病毒蛋白的DNM能使野生型蛋白質(zhì)的功能失活從而能夠抑制病毒復(fù)制的原理,設(shè)計(jì)出了能使核心蛋白突變的融合蛋白,可以使HBV病毒復(fù)制的抑制率高達(dá)90%~95%。劉偉俠[24]基于顯性負(fù)性突變體原理構(gòu)建的融合蛋白PreS2-TLM-ScFv-HBcDN,作用HepG2.2.15細(xì)胞發(fā)現(xiàn)其能抑制HBV pgRNA在核心顆粒內(nèi)的包裝,有效抑制HBV的復(fù)制,且其抑制效果與作用濃度和時(shí)間有關(guān)。然而,該策略中一些混合粒子往往存在病毒逃逸機(jī)制從而還有復(fù)制能力。

      2.5新型基因編輯技術(shù)鋅指核酸酶(Zinc-finger nucleases, ZFN)、轉(zhuǎn)錄激活因子樣效應(yīng)因子核酸酶(transcription activator-like effector nucleases,TALEN)和CRISPR/Cas9[Clustered regularly interspaced short palindromic repeats/CRISPR-associated(Cas9),CRISPR/Cas9]三大新型基因編輯技術(shù)的應(yīng)用為HBV基因治療開辟了新途徑。Winer等[25]發(fā)現(xiàn)可以利用ZFN靶向干預(yù)小鼠受精卵成功造出HBV小鼠模型,該研究也為人類其他疾病的模型構(gòu)造提供了新思路,具有重要的社會(huì)意義。Chen等[26]構(gòu)建了互補(bǔ)于HBV保守區(qū)的TALEN序列,細(xì)胞和小鼠動(dòng)物試驗(yàn)結(jié)果顯示TALEN序列通過特異結(jié)合及切割病毒基因組的方式導(dǎo)致HBeAg、HBsAg、HBcAg、pgRNA和cccDNA的水平明顯降低,同時(shí),聯(lián)合使用TALEN和α干擾素,抗HBV效果更佳。Seeger等[27]通過新一代測序技術(shù)NGS發(fā)現(xiàn)CRISPR/Cas9能夠切割90%以上的HBV DNA,而且其編輯基因的效率比α干擾素作用高達(dá)1500倍以上,從而認(rèn)為CRISPR/Cas9是目前治療CHB達(dá)到功能滅活HBV cccDNA的最佳方法。

      3問題與展望

      目前,探索出完全清除HBV cccDNA達(dá)到治愈乙肝的安全、高效、特異、經(jīng)濟(jì)的藥物仍是全球乙肝治療研究人員努力的方向。乙肝基因治療的各種策略都存在自身的優(yōu)點(diǎn)和不足,反義治療的靶標(biāo)主要是mRNA,在病毒蛋白的合成上有較強(qiáng)的抑制作用,但對HBV的復(fù)制和轉(zhuǎn)錄水平影響甚少,容易出現(xiàn)停藥反復(fù),與之相比,反基因治療和新型基因編輯技術(shù)有在復(fù)制和轉(zhuǎn)錄水平上阻斷HBV的優(yōu)勢,尤其是反基因治療、TALEN和CRISPR/Cas9有清除cccDNA的潛能,但由于HBV DNA存在于細(xì)胞核中,以其為靶標(biāo)的藥物必須克服核孔障礙以提高藥物的靶向性和穩(wěn)定性。CTVI特異性不強(qiáng)且有一定的毒副作用,DNM往往還存在病毒逃逸機(jī)制,在基因治療應(yīng)用上受到一定限制。因此,乙肝的基因治療絕不是單靠某種策略就能一蹴而就,筆者認(rèn)為,要征服乙肝,需要從以下幾方面努力:①探索出特異性強(qiáng)的方法,篩選出療效顯著的基因靶位,對基因藥物的修飾方法和介導(dǎo)物質(zhì)作好評估和篩選,進(jìn)一步研發(fā)出安全性高、穩(wěn)定性好、作用持續(xù)性長、副作用小和細(xì)胞毒性低的新型強(qiáng)效藥;②多基因靶位和多手段的聯(lián)合治療方案,顯示出一定的優(yōu)越性[6,7,9,26],是治療HBV的研究趨勢;③增加投資,促進(jìn)抗HBV的臨床基礎(chǔ)研究和基因治療的全球合作。

      參考文獻(xiàn)

      [1]Li J,Bao M,Ge J,et al.Research progress of therapeutic vaccines for treating chronic hepatitis B[J].Hum Vaccin Immunother,2017,13(5):986-997.

      [2]Wang FS,F(xiàn)an JG,Zhang Z,et al.The global burden of liver disease:the major impact of China[J].Hepatology,2014,60(6):2099-2108.

      [3]張德禮,高步先,高顯明,等.基因治療新途徑[J].中國科學(xué)基金,1996(2):27-33.

      [4]陳常慶,陳波,徐金旺,等.乙肝病毒反義DNA的合成[J].高技術(shù)通訊,1995(12):38-42.

      [5]Veedu RN,Wengel J.Locked nucleic acid as a novel class of therapeutic agents[J].RNA Biol,2009,6(3):321-323.

      [6]Deng YB,Qin HJ,Luo YH,et al.Antiviral effect of hepatitis B virus S/C gene loci antisense locked nucleic acid on transgenic mice in vivo[J].Genet Mol Res,2015,14(3):10087-10095.

      [7]鄧益斌,農(nóng)樂根,韋葉生.針對乙肝病毒前C/C雙靶區(qū)反義鎖核酸在轉(zhuǎn)基因鼠體內(nèi)抗病毒效果[J].生物醫(yī)學(xué)工程學(xué)雜志,2013,30(4):828-832, 837.

      [8]Thieringer HA,Takayama KM,Kang C,et al.Antisense RNA-mediated inhibition of mouse hepatitis virus replication in L2 cells[J].Antisense Res Dev,1995,5(4):289-294.

      [9]Billioud G,Kruse RL,Carrillo M,et al.In vivo reduction of hepatitis B virus antigenemia and viremia by antisense oligonucleotides[J].J Hepatol,2016,64(4):781-789.

      [10]Zu Putlitz J,Wieland S,Blum HE,et al.Antisense RNA complementary to hepatitis B virus specifically inhibits viral replication[J].Gastroenterology,1998,115(3):702-713.

      [11]Nash KL,Alexander GJ,Lever AM.Inhibition of hepatitis B virus by lentiviral vector delivered antisense RNA and hammerhead ribozymes[J].J Viral Hepat,2005,12(4):346-356.

      [12]Xia C,Chen YC,Gong H,et al.Inhibition of hepatitis B virus gene expression and replication by ribonuclease P[J].Mol Ther,2013,21(5):995-1003.

      [13]Hou W,Ni Q,Wo J,et al.Inhibition of hepatitis B virus X gene expression by 10-23 DNAzymes[J].Antiviral Res,2006,72(3):190-196.

      [14]侯偉,沃健兒,劉克洲,等.不同結(jié)合臂長10-23 DNA zymes 對乙型肝炎病毒S基因和C基因表達(dá)的抑制作用[J].中華內(nèi)科雜志,2006,45(5):396-399.

      [15]Gish RG,Yuen MF,Chan HL,et al.Synthetic RNAi triggers and their use in chronic hepatitis B therapies with curative intent[J].Antiviral Res,2015,121:97-108.

      [16]Verrier ER,Colpitts CC,Bach C,et al.A targeted functional RNA interference screen uncovers glypican 5 as an entry factor for hepatitis B and D viruses[J].Hepatology,2016,63(1):35-48.

      [17]Schluep T,Lickliter J,Hamilton J,et al.Safety, Tolerability, and Pharmacokinetics of ARC-520 Injection, an RNA Interference-Based Therapeutic for the Treatment of Chronic Hepatitis B Virus Infection, in Healthy Volunteers[J].Clin Pharmacol Drug Dev,2017,6(4):350-362.

      [18]Deng YB,Qin HJ,Luo YH,et al.Blocking the expression of the hepatitis B virus S gene in hepatocellular carcinoma cell lines with an anti-gene locked nucleic acid in vitro[J].Genet Mol Res,2015,14(2):5445-5451.

      [19]鄧益斌,溫旺榮.反基因鎖核酸體外抑制乙肝病毒前S1基因表達(dá)[J].基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)與臨床,2013,33(6):722-725.

      [20]鄧益斌,羅艷紅,鄒佳峻,等.反基因鎖核酸體外阻斷乙肝病毒前S2基因表達(dá)[J].現(xiàn)代生物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2013,13 (19):3641-3644.

      [21]Beterams G,Nassal M.Significant interference with hepatitis B virus replication by a core-nuclease fusion protein[J].J Biol Chem,2001,276(12):8875-8883.

      [22]Li D,Liu J,Kang F,et al.Core-APOBEC3C chimerical protein inhibits hepatitis B virus replication[J].J Biochem,2011,150(4):371-374.

      [23]Scaglioni PP,Melegari M,Wands JR.Characterization of hepatitis B virus core mutants that inhibit viral replication[J].Virology,1994,205(1):112-120.

      [24]劉偉俠.顯性負(fù)性突變體融合蛋白PreS2-TLM-ScFv-HBcDN抑制乙肝病毒復(fù)制的研究[J].杭州:浙江大學(xué), 2012.

      [25]Winer BY,Huang T,Low BE,et al.Recapitulation of treatment response patterns in a novel humanized mouse model for chronic hepatitis B virus infection[J].Virology,2017,502:63-72.

      [26]Chen J,Zhang W,Lin J,et al.An efficient antiviral strategy for targeting hepatitis B virus genome using transcription activator-like effector nucleases[J].Mol Ther,2014,22(2):303-311.

      [27]Seeger C,Sohn JA.Complete Spectrum of CRISPR/Cas9-induced Mutations on HBV cccDNA[J].Mol Ther,2016,24(7):1258-1266.

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