邢冰 董誠明 魏碩
摘要:以轉(zhuǎn)錄組測序數(shù)據(jù)為基礎(chǔ),利用MISA軟件對簡單重復(fù)序列(simple sequence repeat,簡稱SSR)進行檢測及分析,分析懷菊轉(zhuǎn)錄組中的SSR位點信息,并設(shè)計SSR引物,為后期SSR標記的開發(fā)和物種遺傳多樣性檢測等提供參考。結(jié)果表明,共檢測到8 553個SSR位點,它們分布在 7 369 條Unigene中,出現(xiàn)頻率為2.83%,SSR位點的發(fā)生頻率為2.44%;其中單核苷酸重復(fù)基序最多、其次為三核苷酸重復(fù)基序。懷菊轉(zhuǎn)錄組基序長度主要集中于 12~19 bp,多具有中等多態(tài)性。對SSR序列設(shè)計引物,共得到25 662對引物可供今后使用。總之,懷菊SSR位點類型豐富,具有良好的多態(tài)性潛力及可開發(fā)性。
關(guān)鍵詞:懷菊;SSR;位點信息;轉(zhuǎn)錄組
中圖分類號: S567.23+9.01 ?文獻標志碼: A ?文章編號:1002-1302(2020)11-0057-04
收稿日期:2019-09-20
基金項目:2016年度中央引導地方科技發(fā)展專項資金“河南道地大宗藥材種質(zhì)評價及集約化種植與示范”。
作者簡介:邢 冰(1995—),女,河南鄭州人,碩士研究生,主要從事藥用植物研究。E-mail:xingbingywz@163.com。
通信作者:董誠明,教授,主要從事藥用植物研究。E-mail:dcm371@hactcm.edu.cn。 ?懷菊為菊科植物菊(Chrysanthemum morifolium Ramat.)的干燥頭狀花序[1],栽培及藥用歷史悠久,研究表明,經(jīng)過長期的自然環(huán)境改變和人工干預(yù),懷菊種質(zhì)可能發(fā)生了變異與分化,品質(zhì)下降[2]。目前關(guān)于懷菊的研究主要集中于人工栽培、組織培養(yǎng)、質(zhì)量評價等方面,對于其種質(zhì)資源和分子標記輔助育種的研究尚少[3-6]。因此,對于懷菊品種鑒別及遺傳多樣性的研究具有重要意義。
簡單重復(fù)序列(simple sequence repeat,簡稱SSR)是指由1~6個核苷酸為重復(fù)單位組成的簡單串聯(lián)重復(fù)序列。簡單重復(fù)序列能反映出物種間高度的等位基因多樣性,不同物種的重復(fù)次數(shù)、基序類型、長度等差異很大,由此開發(fā)的SSR分子標記技術(shù)具有操作簡便、穩(wěn)定性好、多態(tài)性高等優(yōu)點,已經(jīng)在品種純度鑒定、基因功能研究、遺傳多樣性分析等方面有廣泛的應(yīng)用[7-8]。轉(zhuǎn)錄組測序技術(shù)可開發(fā)大量的SSR標記,且速度快、成本較低[9],能夠克服傳統(tǒng)SSR分子標記技術(shù)的弊端。本研究基于高通量測序結(jié)果,獲得大量懷菊轉(zhuǎn)錄組序列信息,并對轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)中的SSR位點進行檢測,分析其分布及結(jié)構(gòu)特點,以期為懷菊種質(zhì)資源鑒定、遺傳多樣性分析及遺傳圖譜構(gòu)建等提供基礎(chǔ)。
1 材料與方法
1.1 材料
本試驗中的轉(zhuǎn)錄組測序樣本懷菊來源于河南省焦作市溫縣,種植于河南中醫(yī)藥大學藥用植物園溫室,采集后于河南中醫(yī)藥大學組織培養(yǎng)實驗室進行離體培養(yǎng)得到懷菊愈傷組織、芽叢、幼苗。
1.2 方法
1.2.1 樣品檢測、文庫構(gòu)建與測序 將樣品送至北京百邁客生物科技有限公司提取mRNA,分別采用Nanodrop、Qubit 2.0、Aglient 2100方法檢測RNA樣品的純度、濃度和完整性等,檢測合格后,進行文庫構(gòu)建,分別使用Qubit 2.0和Aglient 2100方法對文庫的濃度和插入片段大小進行檢測,使用Q-PCR方法對文庫的有效濃度進行準確定量,以保證文庫質(zhì)量。庫檢合格后,利用Illumina HiSeqTM 2000 高通量測序平臺對其進行轉(zhuǎn)錄組測序。
1.2.2 懷菊轉(zhuǎn)錄組SSR的篩選 采用MISA軟件對組裝出來的Unigene序列進行SSR檢測、篩選。各重復(fù)次數(shù)搜索標準如下:單核苷酸、二核苷酸、三核苷酸、四核苷酸、五核苷酸、六核苷酸重復(fù)次數(shù)至少分別為10、6、5、5、5、5次。對不同SSR類型在基因轉(zhuǎn)錄本的密度分布進行統(tǒng)計。同時篩選被間隔≤100 bp 堿基間隔的復(fù)合型SSR。
1.2.3 懷菊SSR引物設(shè)計 使用Primer 3.0(235 版,默認參數(shù))軟件進行SSR引物設(shè)計,并針對預(yù)測到的每一個SSR位點分別設(shè)計3組引物供后期試驗選擇。主要的引物參數(shù)設(shè)置:退火溫度(Tm)在57~63 ℃,上、下游引物Tm值相差小于 5 ℃;擴增產(chǎn)物大小為100~280 bp,引物長度為 10~27 bp;GC含量小于60%。
2 結(jié)果與分析
2.1 懷菊轉(zhuǎn)錄組測序結(jié)果
懷菊高通量測序后總計產(chǎn)出 83.67 GB 數(shù)據(jù),干凈讀序經(jīng)Trinity組裝后最終獲得302 379條Unigene,過濾后發(fā)現(xiàn),質(zhì)量不低于30的堿基比例(Q30,測序錯誤率 < 1%)為90.92%,表明測序結(jié)果良好,可對獲得的數(shù)據(jù)進行進一步分析。
2.2 懷菊SSR數(shù)量與分布
采用MISA軟件對Unigene進行SSR檢測,共檢出 8 553 個SSR位點,它們分布在7 369條Unigene中,其中有4 477條Unigene含單個SSR位點,有 2 553 條Unigene含2個及2個以上SSR位點。SSR發(fā)生頻率為2.44%,出現(xiàn)頻率為2.83%,平均每 10 kb 有1.27個SSR位點(表1)。
2.3 懷菊轉(zhuǎn)錄組中SSR基元類型和比例
對SSR類型進行統(tǒng)計發(fā)現(xiàn),二核苷酸至六核苷酸重復(fù)類型均有出現(xiàn),不同核苷酸基序種類及重復(fù)次數(shù)差異明顯。在考慮到堿基互補配對原則的情況下,單核苷酸重復(fù)單元有4種,占60.77%,多數(shù)重復(fù)次數(shù)為10~22次,主要為A/T基序重復(fù),而 C/G 基序出現(xiàn)頻率較低;二核苷酸重復(fù)單元有12種,占14.40%,多數(shù)重復(fù)次數(shù)為6~10次,重復(fù)次數(shù)最多的基序是TG,其次是TA;三核苷酸重復(fù)單元有63種,占19.17%,多數(shù)重復(fù)次數(shù)為5~7次,重復(fù)次數(shù)最多的基序為TGA,其次是ATC;四核苷酸重復(fù)單元有48種,占0.83%,重復(fù)次數(shù)最多的基序為TAAA,其次是TTAT;五、六核苷酸重復(fù)單元分別有9、3種,分別占0.11%、0.04%,重復(fù)次數(shù)最多的基序分別是GGGGA與TTGATA(表2)。
2.4 懷菊SSR基元長度分布及其多態(tài)性
究篩選出的懷菊SSR長度均≥10 bp,其中12~19 bp 的SSR有4 279個(占比為50.03%),具有中等多態(tài)性;而≥20 bp的SSR有621個(占比為726%),具有較高的多態(tài)性。此外,研究發(fā)現(xiàn),高級基元SSR的多態(tài)性普遍比低級基元的低[10]。本研究中,低級基元單核苷酸、二核苷酸和三核苷酸共占總SSR的9434%,而在長度≥20 bp的SSR中共有138個,占長度≥20bp的所有SSR的22.22%,表明大部分懷菊轉(zhuǎn)錄組SSR具有高多態(tài)性潛能(圖1)。
2.5 懷菊SSR引物設(shè)計
為了篩選出可在試驗中應(yīng)用的懷菊SSR,使用Primer 3.0軟件對含有SSR位點且SSR上下游序列
均不小于150 bp的unigene進行引物設(shè)計。結(jié)果根據(jù)SSR位點信息,批量設(shè)計了25 662對引物(部分引物見表3)。
3 討論與結(jié)論
近年來,通過轉(zhuǎn)錄組測序技術(shù)開發(fā)分子標記已成為一種主要的方式。Han等基于轉(zhuǎn)錄組測序結(jié)果對野菊花SSR分子標記進行開發(fā),并對其遺傳分化等方面開展系統(tǒng)研究[11]。Kobeissi等使用SSR標記評估菊花遺傳多樣性,以利于種質(zhì)資源保護和遺傳育種[12]。張運興等利用MISA軟件對SSR位點進行搜索,并開發(fā)系列引物,為菊花種質(zhì)資源和遺傳多樣性分析提供依據(jù)[13]。從本研究的結(jié)果來看,首先進行全基因組測序,再分析SSR信息,不僅可以得到更多的信息,準確性也大大提高。然而,由于不同品種的菊花之間基因組差異巨大,僅參考菊花基因組序列,并不能系統(tǒng)地對懷菊進行分析。本研究針對懷菊基因組進行初步組裝,并進行SSR分析及引物設(shè)計,這有利于懷菊的種質(zhì)鑒定,同時也對懷菊的遺傳分析具有重要意義。
懷菊轉(zhuǎn)錄組測序后共獲得302 379條Unigene,利用MISA軟件進行搜索,共發(fā)現(xiàn)8 553個SSR位點,其中以單核苷酸和三核苷酸重復(fù)為主,占SSR總數(shù)的79.94%。張運興等的研究表明,菊花中以三核苷酸重復(fù)類型出現(xiàn)頻率最高[13],而本研究發(fā)現(xiàn),懷菊中的單核苷酸最多,可能是由于不同植物SSR的主導重復(fù)基元類型有所不同[14-15],范三紅等認為,可能是由于這種重復(fù)基元編碼相應(yīng)蛋白質(zhì)的出現(xiàn)率較高[16]。同時,樣品、測序技術(shù)的不同,研究中檢測及評價方法的不同,也可能會造成同類型物種的SSR信息出現(xiàn)一定的差異。本研究發(fā)現(xiàn),A/T、TGA/ATC分別是懷菊中單核苷酸和三核苷酸SSR類型的優(yōu)勢重復(fù)基元。有研究表明,單核苷酸中A/T重復(fù)的數(shù)量居多,而雙子葉植物中三核苷酸主要重復(fù)類型是AAG/CTT[17]。張華麗等的研究表明,在萬壽菊三核苷酸SSR類型中出現(xiàn)次數(shù)最多的重復(fù)基元是ATC/ATG[18]。初步分析這一差異可能與懷菊的SSR特性和物種的差異有關(guān)。SSR長度是影響其多態(tài)性高低的重要因素[19],本研究發(fā)現(xiàn),懷菊中長度大于12 bp的SSR共有4 900個,占總數(shù)的57.29%,具有中等以上的多態(tài)性,可以重點利用這類SSR進行懷菊分子標記的開發(fā)及遺傳多樣性等方面的研究。
綜上所述,通過檢測懷菊轉(zhuǎn)錄組序列中SSR信息,得到數(shù)量多、可用性強的SSR位點, 對于加速懷菊SSR標記的開發(fā)、種質(zhì)鑒定及遺傳性狀分析等研究具有重要意義。
參考文獻:
[1]國家藥典委員會. 中華人民共和國藥典(一部)[M]. 北京:化學工業(yè)出版社,2005:310-311.
[2]劉曉薇,張 飛,陳隨清,等. 不同商品規(guī)格懷菊花的質(zhì)量特征分析[J]. 中華中醫(yī)藥雜志,2018,33(6):2650-2655.
[3]張紅瑞,黃 勇,周 艷,等. 河南6個栽培類型藥菊內(nèi)在質(zhì)量的研究[J]. 中藥材,2017,40(7):1507-1510.
[4]張紅瑞,周 艷,黃 勇,等. 采收時間對6個栽培類型藥菊產(chǎn)量品質(zhì)的影響[J]. 山東農(nóng)業(yè)科學,2016,48(7):82-85.
[5]周 洲,陳雙臣,陳迪新,等. 懷菊組織培養(yǎng)與快速繁殖[J]. 時珍國醫(yī)國藥,2011,22(6):1452-1453.
[6]田 碩,苗明三. 菊花的研究及應(yīng)用現(xiàn)狀[J]. 中醫(yī)學報,2014,29(3):378-380.
[7]Senan S,Kizhakayil D,Sasikumar B,et al. Methods for development of microsatellite markers:an overview[J]. Notulae Scientia Biologicae,2014,6(1):1-13.
[8]Sharma R,Maloo S R,Choudhary S,et al. Microsatellite markers:an important DNA fingerprinting tool for characterization of crop plants[J]. Journal of Plant Science Research,2015,31(1):83.
[9]張 震,許彥明,陳永忠,等. 油茶轉(zhuǎn)錄組測序與SSR特征分析[J]. 西南林業(yè)大學學報,2018,38(6):63-68.
[10]Zhang P,Dreisigacker S,Melchinger A E,et al. Quantifying novel sequence variation in CIMMYT synthetic hexaploid wheats and their backcross-derived lines using SSR markers[J]. Molecular Breeding,2005,15(1):1-10.
[11]Han Z Z,Ma X Y,Min W,et al. SSR marker development and intraspecific genetic divergence exploration of Chrysanthemum indicum based on transcriptome analysis[J]. BMC Genomics,2018,19(12):291.
[12]Kobeissi B,Saidi A,Kobeissi A,et al. Applicability of scot and SSR molecular markers for genetic diversity analysis in Chrysanthemum morifolium genotypes[J]. Biological Sciences,2018,89(3):1-11.
[13]張運興,李衛(wèi)國,申亞琳,等. 菊花EST-SSR標記的開發(fā)與應(yīng)用[J]. 武漢大學學報(理學版),2013,59(4):357-362.
[14]劉 越,岳春江,王 翊,等. 藏茵陳川西獐牙菜轉(zhuǎn)錄組SSR信息分析[J]. 中國中藥雜志,2015,40(11):2068-2076.
[15]陳 茵,李翠婷,姜倪皓,等. 燈盞花轉(zhuǎn)錄組中SSR位點信息分析及其多態(tài)性研究[J]. 中國中藥雜志,2014,39(7):1220-1224.
[16]范三紅,郭藹光,單麗偉,等. 擬南芥基因密碼子偏愛性分析[J]. 生物化學與生物物理進展,2003,30(2):221-225.
[17]Morgante M,Hanafey M,Powell W. Microsatellites are preferentially associated with nonrepetitive DNA in plant genomes[J]. Nature Genetics,2002,30(2):194-200.
[18]張華麗,叢日晨,王茂良,等. 基于萬壽菊轉(zhuǎn)錄組測序的SSR標記開發(fā)[J]. 園藝學報,2018,45(1):159-167.
[19]王 森,張 震,姜倪皓,等. 半夏轉(zhuǎn)錄組中的SSR位點信息分析[J]. 中藥材,2014,37(9):1566-1569.羅宇婷,黃藝清,黃 琪,等. 優(yōu)選盆栽小菊高效再生及轉(zhuǎn)化體系的建立[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學,2020,48(11):61-66.