付 強,王 琪,周巧麗,金 岳,胡夢琪,趙豐麗,2
(1.廣西師范大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,廣西 桂林 541006;2.珍稀瀕危動植物生態(tài)與環(huán)境保護教育部重點實驗室,廣西 桂林 541006)
羅漢果是中國廣西特色經(jīng)濟作物,為葫蘆科多年生宿根性藤本植物羅漢果的果實,含有三萜、黃酮、木脂素、呋喃、糖類、脂肪酸、甾體等,具有降糖、降脂、免疫調(diào)節(jié)、抗氧化等功效[1-3]。目前,我國對中藥降解乙醇作用的利用研究日益增多,如利用葛花、葛根和枳椇子為原料,得到降解乙醇效果較好的產(chǎn)品,可有效的降低酒精對人體帶來的傷害[4-9]。目前我國市場上的解酒產(chǎn)品,多以對中草藥的開發(fā)為主[10-14],利用羅漢果內(nèi)生菌進行降解乙醇的研究較少。
植物內(nèi)生菌是植物微生態(tài)系統(tǒng)的重要組成部分[15-16],在長期協(xié)同進化過程中,與植物形成和諧共生,互惠互利的關(guān)系[17-18]。從羅漢果內(nèi)生菌中,張昌志等[19]篩選出了高效產(chǎn)環(huán)糊精葡萄糖基轉(zhuǎn)移酶的菌株;范彩琴等[20]篩選出多株具有良好抗氧化活性的菌株;龍楚媚[21]分離得到了一株具有高效降糖活性的菌株,表明羅漢果內(nèi)生菌所產(chǎn)代謝產(chǎn)物具有多重功效。在內(nèi)生菌降解乙醇能力研究方面,高慧[22]從韓國泡菜制品中篩選出一株具有良好降解乙醇能力的厭氧菌;孫志一等[23]從12種中草藥中分離純化得到5株降解乙醇能力較強的芽孢桿菌,展現(xiàn)出內(nèi)生菌降解乙醇的潛力。
因此,本研究通過傳統(tǒng)培養(yǎng)分離法從羅漢果中分離內(nèi)生菌,采用測定乙醇耐受性和重鉻酸鉀-硫酸法從中篩選具有降解乙醇能力的菌株,通過形態(tài)觀察及分子生物學(xué)技術(shù)對其進行鑒定,并以乙醇降解率為評價指標,通過單因素試驗及正交試驗對其發(fā)酵條件進行優(yōu)化。以期為具有降解乙醇功能的產(chǎn)品提供一個新的途徑,為工業(yè)生產(chǎn)產(chǎn)品奠定基礎(chǔ)。
1.1.1 材料
羅漢果:植株采自廣西桂林市龍勝縣。
1.1.2 主要試劑
重鉻酸鉀(分析純):阿拉丁試劑(上海)有限公司;葡萄糖、濃硫酸、無水乙醇(均為分析純):西隴化工股份有限公司。其他試劑均為國產(chǎn)分析純。
1.1.3 培養(yǎng)基
馬鈴薯葡萄糖瓊脂(potatodextroseagar,PDA)培養(yǎng)基[20]:土豆200 g,切塊,煮沸30 min,過濾,葡萄糖20 g,瓊脂20 g,蒸餾水定容至1 L。
發(fā)酵培養(yǎng)基[20]:PDA培養(yǎng)基去除瓊脂。
初篩培養(yǎng)基[21]:硫酸鎂0.3 g、磷酸二氫鉀1.0 g、氯化鈉0.1 g、硫酸銨5 g、氯化鐵0.01 g、瓊脂22 g,蒸餾水定容至1 L,pH=7.0。滅菌完成后,待培養(yǎng)基冷卻至50 ℃,加入8%無水乙醇。
沙氏葡萄糖液體(Sabouraud dextrose broth,SDB)培養(yǎng)基[20]:葡萄糖40 g,胰蛋白胨10 g,酵母粉5 g,麥芽糖5 g,蒸餾水定容至1 L。
沙氏培養(yǎng)基(Sabouraud dextrose medium with yeast extract,SDY)[20]:葡萄糖40 g,胰蛋白胨10 g,酵母浸膏2 g,氯化鈉0.5g,磷酸二氫鉀0.5g,七水硫酸鎂0.5g,蒸餾水定容至1L。
胨酵母浸膏葡萄糖(peptone yeast extract glucose,PYG)培養(yǎng)基[20]:胰蛋白胨10 g,酵母浸膏5 g,葡萄糖20 g,蒸餾水定容至1 L。
以上培養(yǎng)基的滅菌條件均為121℃高壓蒸汽滅菌30min。
BXM-30R型立式壓力蒸汽滅菌鍋:上海博訊實業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠;HZ200LB型恒溫搖床、HP400S型生化培養(yǎng)箱:武漢瑞華儀器設(shè)備有限責(zé)任公司;Infinite M200Pro酶標儀:帝肯(上海)貿(mào)易有限公司;KQ-500VDE型雙頻數(shù)控聲波清洗器:昆山市超聲器有限公司。
1.3.1 羅漢果內(nèi)生菌分離純化
按參考文獻[24]中的方法對羅漢果組織進行消毒,將處理后的材料剪碎接種到PDA培養(yǎng)基上,置于28 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng),待菌落長成后,進行分離純化,得到羅漢果內(nèi)生菌株。
1.3.2 乙醇降解菌的初篩
在無菌條件下,用劃線法將菌株接種于初篩培養(yǎng)基平板上,置于28 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng),定期觀察菌落生長情況。挑選生長情況良好(即耐受乙醇)的菌株即為初篩菌株。
1.3.3 乙醇降解菌的復(fù)篩
將初篩菌株接種于發(fā)酵培養(yǎng)基,裝液量100 mL/250 mL,30 ℃、130 r/min條件下發(fā)酵培養(yǎng)5 d,獲得菌株的發(fā)酵液用于復(fù)篩。
快速降解乙醇能力的測定:將待測菌株的發(fā)酵液500μL加入含8%乙醇的5mL發(fā)酵培養(yǎng)基中,混勻后37℃水浴反應(yīng)1h。
緩速降解乙醇能力的測定:將待測菌株的發(fā)酵液500μL分別加入到體積分數(shù)分別為10%和20%乙醇的5 mL發(fā)酵培養(yǎng)基中,混勻后37 ℃水浴反應(yīng)24 h。
兩組試驗的對照均為水代替發(fā)酵液,利用重鉻酸鉀-硫酸法[25]測定乙醇的殘留量,計算乙醇降解率,其計算公式如下:
式中:A空白組為空白組的吸光度值,A實驗組為實驗組的吸光度值。
1.3.4 乙醇降解菌的鑒定
形態(tài)學(xué)鑒定:采用點植法將菌株接種于PDA培養(yǎng)基上,觀察菌株的菌落大小、顏色及表面形態(tài)。并在光學(xué)顯微鏡下觀察菌體形態(tài),對菌株進行初步鑒定。
分子生物學(xué)鑒定:菌株送武漢華大基因科技有限公司完成18S rDNA測序,并將該菌株的18S rDNA序列提交至美國國立生物技術(shù)信息中心(national center for biotechnology information,NCBI)的GenBank數(shù)據(jù)庫中采用局部序列比對基本檢索工具(basic local alignment search tool,BLAST)同源搜索,選取同源性較高的模式菌株的18S rDNA基因序列,應(yīng)用MEGA軟件中的鄰接(neighbor-joining,NJ)法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹。
1.3.5 乙醇降解菌培養(yǎng)基篩選
種子液的制備:將復(fù)篩菌株接種于發(fā)酵培養(yǎng)基,裝液量250 mL/500 mL,30 ℃、130 r/min條件下發(fā)酵培養(yǎng)3 d。
按3%(V/V)的接種量將種子液分別接種于PDA、SDB、SDY、PYG四種液體培養(yǎng)基中,30 ℃、130 r/min條件下培養(yǎng)5 d,測定發(fā)酵液對乙醇的降解率。選取乙醇降解率最佳的培養(yǎng)基進行培養(yǎng)基優(yōu)化試驗。
1.3.6 菌株降解乙醇發(fā)酵條件優(yōu)化單因素試驗
將復(fù)篩菌株的種子液按3%的接種量接種于最優(yōu)培養(yǎng)基中,裝液量250 mL/500 mL,初始pH值7.0,30 ℃、130 r/min條件下發(fā)酵5 d,測定發(fā)酵液對乙醇的降解率。在此基礎(chǔ)上,依次分別考察接種量(3%、4%、5%、6%、7%)、裝液量(100 mL/500mL、150mL/500mL、200 mL/500 mL、250mL/500 mL、300 mL/500 mL)、發(fā)酵溫度(26 ℃、28 ℃、30 ℃、32 ℃、34 ℃)、發(fā)酵時間(2 d、3 d、4 d、5 d、6 d)、初始pH值(5.0、6.0、7.0、8.0、9.0)對乙醇降解率的影響,從而確定最佳發(fā)酵條件。
1.3.7 菌株降解乙醇發(fā)酵條件優(yōu)化正交試驗
在單因素研究的基礎(chǔ)上,選擇對試驗結(jié)果影響大的因素接種量(A)、發(fā)酵溫度(B)、發(fā)酵時間(C)、裝液量(D),以乙醇降解率作為評價指標進行4因素3水平的正交試驗,正交試驗因素與水平見表1。
表1 菌株G-1降解乙醇發(fā)酵條件優(yōu)化正交試驗因素與水平Table 1 Factors and levels of orthogonal tests for fermentation conditions optimization of ethanol degradation of strain G-1
通過傳統(tǒng)培養(yǎng)分離法從羅漢果根、莖和果實等組織中共分離純化得到68株內(nèi)生菌。
通過初篩從羅漢果內(nèi)生菌中篩選得到17株對乙醇具有耐受性的菌株,根據(jù)菌株的生長情況從中選取14株菌株進行復(fù)篩。
由圖1可知,復(fù)篩的14株菌株,都具有一定的降解乙醇的能力,綜合比較菌株G-1對乙醇降解效果最好,對體積分數(shù)8%乙醇作用1 h時,乙醇降解率為9.1%;對體積分數(shù)10%乙醇作用24 h時,乙醇降解率為16.7%,對體積分數(shù)20%乙醇作用24 h時,乙醇降解率為13.2%。因此,選擇菌株G-1進行進一步的研究。
圖1 基于重鉻酸鉀-硫酸法乙醇降解菌株的篩選結(jié)果Fig.1 Screening results of ethanol-degrading strains by potassium dichromate-sulfuric acid method
2.4.1 形態(tài)學(xué)鑒定
菌株G-1的菌落及細胞形態(tài)見圖2。由圖2可知,在PDA培養(yǎng)基上,菌株G-1菌落表面突起,菌落高3~5 mm,呈絮狀,菌絲呈白色,較為質(zhì)密;背面為粉白色,略帶有紫色。分生孢子著生于菌絲上,在頂端聚成卵形。
圖2 菌株G-1的菌落(a)及細胞(b)形態(tài)Fig.2 Colony (a) and cell (b) morphology of strain G-1
2.4.2 分子生物學(xué)鑒定
由武漢華大基因科技有限公司測得菌株G-1的18SrDNA基因序列堿基長度為534 bp,經(jīng)過同源性序列檢索,結(jié)果顯示菌株G-1與尖孢鐮刀菌(Fusarium oxysporum)的18S rDNA序列同源性>99%。在搜索比對結(jié)果中選擇與菌株G-1同源性較高的菌株,建立菌株G-1的系統(tǒng)發(fā)育樹,結(jié)果見圖3。由圖3可知,菌株G-1與尖孢鐮刀菌(Fusarium oxysporum)聚于一支,相似度最高,親緣關(guān)系最近。結(jié)合菌株G-1的形態(tài)觀察結(jié)果和分子生物學(xué)鑒定結(jié)果,最終確定菌株G-1為尖孢鐮刀菌(Fusarium oxysporum)。
圖3 基于18S rDNA基因序列菌株G-1的系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.3 Phylogenetic tree of strain G-1 based on 18S rDNA gene sequences
由圖4可知,采用PDA培養(yǎng)基對菌株G-1進行發(fā)酵得到的發(fā)酵液乙醇降解率最高,為21.3%,因此,選擇PDA作為最優(yōu)培養(yǎng)基。
圖4 不同培養(yǎng)基對菌株G-1乙醇降解率的影響Fig.4 Effect of different media on ethanol degradation rate of strain G-1
2.6.1 接種量對菌株G-1乙醇降解率的影響
由圖5可知,隨著接種量的增大,乙醇降解率呈先升高后降低的趨勢。當(dāng)接種量為6%時,菌株G-1的乙醇降解率最高,達24.8%。這是因為接種量對菌株的生長和活性物質(zhì)積累起著重要作用,當(dāng)接種量<6%之前,菌株生長和活性物質(zhì)積累時間過長,效率低下;當(dāng)接種量>6%之后,會引起溶氧不足,影響活性物質(zhì)的產(chǎn)量和產(chǎn)生過多代謝廢物[26]。故確定最佳接種量為6%。
圖5 不同接種量對菌株G-1乙醇降解率的影響Fig.5 Effect of different inoculum on ethanol degradation rate of strain G-1
2.6.2 裝液量對菌株G-1乙醇降解率的影響
由圖6可知,隨著裝液量的增大,菌株G-1的乙醇降解率呈先升高后下降的趨勢。當(dāng)裝液量為250 mL/500 mL時,菌株乙醇降解率最高,達25.78%。裝液量通過影響營養(yǎng)物質(zhì)的含量和菌株需氧量來對菌株的活性進行影響,當(dāng)裝液量<250 mL/500 mL之前,可能其菌株積累活性物質(zhì)所需的營養(yǎng)不足,導(dǎo)致乙醇降解率低;當(dāng)裝液量>250 mL/500 mL之后,可能其需氧量不足,菌株生長緩慢,活性物質(zhì)積累不足[27]。故確定最佳裝液量為250 mL/500 mL。
圖6 不同裝液量對菌株G-1乙醇降解率的影響Fig.6 Effect of different loaded liquid on ethanol degradation rate of strain G-1
2.6.3 發(fā)酵溫度對菌株G-1乙醇降解率的影響
由圖7可知,隨著發(fā)酵溫度的升高,菌株G-1的乙醇降解率呈先升高后下降的趨勢。當(dāng)發(fā)酵溫度為32 ℃時,乙醇降解率最高,可達26.8%。溫度對微生物的影響體現(xiàn)在影響細胞膜的流動性與細胞內(nèi)生物大分子的活性,進而影響細胞的生長代謝。當(dāng)發(fā)酵溫度<32 ℃之前,可能達不到菌株生長的最佳溫度,菌株生長效率低;當(dāng)發(fā)酵溫度>32 ℃之后,可能過高的溫度對菌株的活性產(chǎn)生了影響,致使其活性物質(zhì)積累較慢[28]。故確定最佳發(fā)酵溫度為32 ℃。
圖7 不同發(fā)酵溫度對菌株G-1乙醇降解率的影響Fig.7 Effect of different fermentation temperature on ethanol degradation rate of strain G-1
2.6.4 發(fā)酵時間對菌株G-1乙醇降解率的影響
由圖8可知,隨著發(fā)酵時間的延長,菌株G-1的乙醇降解率呈先升高后降低的趨勢。當(dāng)發(fā)酵時間為4 d時,菌株G-1的乙醇降解率最高,達24.08%。分析原因可能是隨著發(fā)酵時間的延長,微生物的種群密度和代謝產(chǎn)物也會增加,但隨著營養(yǎng)物質(zhì)的減少,微生物的種群密度和代謝產(chǎn)物會慢慢減低[28]。故確定最佳發(fā)酵時間為4 d。
圖8 不同發(fā)酵時間對菌株G-1乙醇降解率的影響Fig.8 Effect of different fermentation time on ethanol degradation rate of strain G-1
2.6.5 初始pH值對菌株G-1乙醇降解率的影響
由圖9可知,隨著初始pH值的增大,菌株G-1的乙醇降解率呈先升高后降低的趨勢。當(dāng)初始pH值為6.0時,菌株G-1的乙醇降解率最高,達24.34%。分析原因可能是pH值對微生物生命活動的影響較大,當(dāng)pH值<6.0之前,環(huán)境對菌株細胞膜通透性產(chǎn)生了較大影響,不利于菌株發(fā)酵;當(dāng)pH值>6.0之后,環(huán)境對菌株影響漸漸變大,菌株發(fā)酵等受到了影響,使活性物質(zhì)積累速率降低[28]。故確定最佳初始pH值為6.0。
圖9 不同初始pH值對菌株G-1乙醇降解率的影響Fig.9 Effect of different initial pH value on ethanol degradation rate of strain G-1
2.6.6 菌株G-1降解乙醇發(fā)酵條件優(yōu)化正交試驗結(jié)果
采用PDA培養(yǎng)基,在單因素試驗的基礎(chǔ)上,確定初始pH值為6.0,選擇接種量(A)、發(fā)酵溫度(B)、發(fā)酵時間(C)、裝液量(D)為影響因素,以乙醇降解率為評價指標,采用L9(34)正交設(shè)計研究不同因素對乙醇降解率的影響,正交試驗結(jié)果與分析見表2。
表2 菌株G-1降解乙醇發(fā)酵條件優(yōu)化正交試驗結(jié)果與分析Table 2 Design and results of orthogonal tests for fermentation conditions optimization of ethanol degradation of strain G-1
由表2可知,根據(jù)極差分析,各因素影響菌株G-1乙醇降解能力的強弱順序為A>C>B>D,說明接種量對試驗結(jié)果的影響最大,其次是發(fā)酵時間。各因素最優(yōu)水平為A3B3C1D1,即接種量7%、發(fā)酵溫度32 ℃、發(fā)酵時間3 d、裝液量200 mL/500 mL。
2.6.7 驗證試驗結(jié)果采取優(yōu)化后的培養(yǎng)條件對菌株G-1進行發(fā)酵,重復(fù)試驗3次,測得乙醇降解率為29.77%,是優(yōu)化前的2.2倍。
采用傳統(tǒng)培養(yǎng)分離方法從羅漢果中分離得到68株內(nèi)生菌,通過測定乙醇耐受性和重鉻酸鉀-硫酸法篩選得到了一株具有降解乙醇能力的菌株G-1,經(jīng)形態(tài)學(xué)和分子生物學(xué)鑒定為尖孢鐮刀菌(Fusarium oxysporum)。通過單因素試驗和正交試驗得出菌株G-1降解乙醇的最優(yōu)發(fā)酵條件為發(fā)酵培養(yǎng)基PDA培養(yǎng)基,初始pH值6.0,接種量7%,裝液量200 mL/500 mL,發(fā)酵溫度32 ℃,130 r/min條件下振蕩培養(yǎng)3 d。在此優(yōu)化條件下,菌株G-1的乙醇降解率為29.77%,是優(yōu)化前的2.2倍。