徐 蘋,黃潔萍,王風(fēng)巧,黨瑞華,雷初朝
(西北農(nóng)林科技大學(xué) 動物科技學(xué)院,陜西 楊凌712100)
毛色是鑒定馬品種及性能的一項重要指標(biāo)。隨著養(yǎng)馬業(yè)向賽馬與娛樂方向發(fā)展,飼養(yǎng)者對馬毛色的重視程度日益增加。馬香檳毛色是飼養(yǎng)者非常鐘愛的一種毛色,它表現(xiàn)為紅毛色和黑毛色強(qiáng)度的同時減弱,造成馬的被毛顏色從栗色變?yōu)榻瘘S香檳色,棗色變?yōu)殓晗銠壣?,黑色變?yōu)榻?jīng)典香檳色[1]。馬香檳毛色由常染色體上CH(Champagne gene)基因家族控制,該基因家族位于14號染色體上6 cM區(qū)域內(nèi),含有4個候選基因SPARC、SLC36A1、SLC36A2、SLC36A3[1-4]。馬SLC36A1(Solute Carrier 36 family A1)基因編碼溶酶體氨基酸轉(zhuǎn)運蛋白(LYAAT1/PAT1),在氨基酸及其衍生物跨膜運動中起到重要作用。研究表明SLC36A1基因在人類和大鼠的小腸上皮細(xì)胞及大腦部分神經(jīng)細(xì)胞中表達(dá),該基因表達(dá)的蛋白(PAT1)能夠?qū)⑷苊阁w水解產(chǎn)生小分子蛋白轉(zhuǎn)運到細(xì)胞外[5-7]。
迄今為止,SLC36A1基因的堿基突變對蛋白質(zhì)功能的影響還不清楚,但是有關(guān)研究表明溶質(zhì)載體36家族的同源基因與色素沉積有關(guān),如SLC45A2(MATP)基因與馬奶油毛色相關(guān)。Cook等[1]通過研究馬SLC36A1基因,發(fā)現(xiàn)外顯子2上C→G的突變是產(chǎn)生馬香檳毛色的關(guān)鍵位點,該單堿基突變造成編碼的蘇氨酸變?yōu)榫彼?,從而改變皮膚色素的沉著,呈現(xiàn)香檳毛色,但是具體的分子作用機(jī)制還有待進(jìn)一步研究。目前國內(nèi)外對馬香檳毛色的研究不多,尚沒有關(guān)于中國馬香檳毛色的研究,因此本試驗以玉樹馬和德保矮馬為對象,分析中國馬SLC36A1基因的多態(tài)性,旨在從分子水平揭示中國家馬毛色的遺傳資源多樣性,為中國家馬毛色遺傳多態(tài)性鑒定提供科學(xué)依據(jù)。
采用隨機(jī)抽樣方法,從青海省玉樹縣和廣西壯族自治區(qū)德保縣分別采集了52匹玉樹馬(YSH)和22匹德保矮馬(DBP)血樣,均為頸靜脈采血,ACD抗凝,-80 ℃超低溫保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.1 引物設(shè)計與PCR擴(kuò)增 利用DNA提取試劑盒(上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司)提取馬血液中的基因組DNA,4℃保存。馬香檳毛色SLC36A1基因的10個外顯子及部分內(nèi)含子引物(表1)參照已經(jīng)發(fā)表的文獻(xiàn)[1]。以家馬的混合DNA池(每10個不同樣本混合成一個DNA池)做模板進(jìn)行基因的PCR擴(kuò)增。PCR擴(kuò)增體系為:2 μL混合DNA池模板(10 ng/μL)、正反向引物各2 μL(10 μmol/L)、25 μL Mix、19 μL ddH2O,反應(yīng)總體積為50 μL。PCR擴(kuò)增程序:預(yù)變性94 ℃ 5 min,94 ℃ 35 s,退火(退火溫度見表1)40 s,72 ℃延伸40 s,35個循環(huán),最后72 ℃充分延伸10 min,4 ℃保存。PCR產(chǎn)物用1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測。檢測質(zhì)量好的PCR產(chǎn)物送至上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司進(jìn)行雙向測序。
表1 馬SLC36A1基因擴(kuò)增引物及條件Table1 Primers and PCR conditions of Equine SLC36A1 gene
注:每對外顯子引物擴(kuò)增片段包含部分內(nèi)含子。
Note:The PCR product of every exon primer contains partial intron.
1.2.2 馬SLC36A1基因PCR-RFLP分型 利用PCR-RFLP技術(shù)對確定的SNPs進(jìn)行基因分型。酶切擴(kuò)增體系為:10×Buffer 1 μL、限制性內(nèi)切酶1 μL、PCR產(chǎn)物5 μL、滅菌水9 μL共16 μL體系混勻,按照限制性內(nèi)切酶說明書中給定的反應(yīng)溫度水浴8 h(見表2)。反應(yīng)產(chǎn)物用3%的瓊脂糖進(jìn)行電泳檢測,使用凝膠成像儀照相,統(tǒng)計基因型。對于沒有合適的酶切位點的SNPs,采用直接測序分型。
表2 PCR-RFLP引物及條件Table 2 Primers and conditions of PCR-RFLP
注:外顯子4和外顯子6的酶切引物為另外設(shè)計。
Note: The cleavage primers for exon4 and exon6 are designed additionally.
1.2.3 數(shù)據(jù)分析 利用DNASTAR Lasergene軟件校對測序產(chǎn)物的原始序列,用ClustalX軟件進(jìn)行序列比對。利用SHEsis在線軟件計算基因型頻率,哈代-溫伯格平衡檢測,單倍型頻率分析;利用PopGene軟件計算單倍型多樣度(H)及Ewens-Watterson中性檢驗。
利用家馬DNA池為模板,通過PCR擴(kuò)增和DNA測序分析玉樹馬52個樣本和德保矮馬22個樣本中SLC36A1基因(NW_001867377.1)的10個外顯子及部分內(nèi)含子序列,共發(fā)現(xiàn)了5個SNPs,分別位于內(nèi)含子3(g.26699953 A>G, g.26699851 G>C, g.26699850 G>C),外顯子4(g.26699562 G>A)及外顯子6(g.26697018 C>T)。其中,外顯子4(g.26699562 G>A)的SNP為同義突變,外顯子6(g.26697018 C>T)為錯義突變(p. Ala172Val)。
依次利用TaiI, TspRI, MscI三種限制性內(nèi)切酶對內(nèi)含子3(g.26699850 G>C)、外顯子4及外顯子6上的3個SNPs進(jìn)行酶切分型。其中內(nèi)含子3存在3個酶切位點,73 bp處為發(fā)現(xiàn)的SNP位點;外顯子4有3個酶切位點,117 bp處為SNP存在的位點,外顯子6有1個酶切位點(見表3)。結(jié)果發(fā)現(xiàn)內(nèi)含子3的SNP(g.26699850 G>C)有GG、GC基因型;外顯子4的SNP有GG、GA基因型;外顯子6的SNP有CC、CT基因型(見圖1)。
表3 馬SLC36A1基因PCR-RFLP多態(tài)性Table 3 The PCR-RFLP polymorphism of horse SLC36A1 gene
圖1 馬SLC36A1基因3個SNP位點的PCR-RFLP多態(tài)性Fig.1 The PCR-RFLP polymorphism of the three SNPs in horse SLC36A1 gene
內(nèi)含子3上發(fā)現(xiàn)的另外2個SNPs(g.26699851 G>C;g.26699953 A>G)找不到合適的限制性內(nèi)切酶的切點,因此對這2個SNPs進(jìn)行直接測序分型,結(jié)果發(fā)現(xiàn)這2個SNPs都有3種基因型(見圖2)。根據(jù)PCR-RFLP和直接測序分型結(jié)果統(tǒng)計基因型頻率(見表4),結(jié)果顯示5個SNPs的純合突變較少,野生型為優(yōu)勢基因型。哈代-溫伯格平衡檢驗表明玉樹馬和德保矮馬在5個突變位點均處于平衡狀態(tài)(P>0.01)。
通過分析玉樹馬和德保矮馬SLC36A1基因的5個SNPs,共鑒定了9種單倍型(H1-H9),其中單倍型H5所占比例最高(73.0%),其余各單倍型所占比例均很少,以H1和H7單倍型出現(xiàn)的概率最低。單倍型H1,H4,H6僅存在于玉樹馬中,H3和H8只在德保矮馬中(見表5)。兩個家馬品種的平均遺傳多樣度為0.3160,德保矮馬的單倍型多樣度為0.4190,高于玉樹馬(0.2228)。Ewens-Watterson中性檢驗結(jié)果顯示,5個SNPs位點的觀測頻率處于顯著水平上下限值之間,表明這5個位點均沒有偏離明顯的中性區(qū),沒有受到明顯的自然選擇作用(見表6)。
圖2 馬SLC36A1基因內(nèi)含子3的2個SNPs直接測序鑒定的基因型Fig.2 The genotype of 2 SNPs of intron 3 in horse SLC36A1 gene
品種Breed個數(shù)SamplesSLC36A1基因型及頻率 Genotype and genotype frequencies of SLC36A1 geneg.26697018C>Tg.26699562G>Ag.26699850G>Cg.26699851G>Cg.26699953A>GCCCTGGGAGGGCGGGCCCAAAGGGYSH521.0000.0000.9230.0770.7500.2500.8080.1920.000 0.808 0.1920.000 DBP220.6820.3181.0000.0000.4560.5440.545 0.3180.1360.545 0.3180.136哈代-溫伯格平衡Hardy-WenbergequilibriumP=0.699P=0.811P=0.080P=0.283P=0.283
表5 玉樹馬和德保矮馬SLC36A1基因單倍型及頻率Table 5 Haplotype frequency of SLC36A1 gene in Yushu horse and Debao pony
表6 馬5個SNPs位點的Ewens-Watterson 中性檢驗Table 6 The Ewens-Watterson test for neutrality of horse five SNPs
毛色是馬品種鑒定的重要因素之一,近年來研究者對哺乳動物的毛色進(jìn)行了大量研究,已發(fā)現(xiàn)了超過300個毛色基因位點和150個與毛色相關(guān)的基因[8]。Stachurska[9]對1130匹純血馬和796 匹阿拉伯馬不同毛色(棕色、栗色、深棕色等亮色系毛色)進(jìn)行了QTL分析,認(rèn)為MC1R 位點(E位點) 的活性與馬的亮色系毛色形成有關(guān);Sulem等[10]研究表明,在歐洲人群中,ASIP 基因的多態(tài)性與皮膚光敏感性、雀斑以及紅發(fā)有直接的關(guān)系;Haase 等[11]對不同馬種中KIT基因的全部21個外顯子進(jìn)行研究,證明KIT基因多態(tài)性與馬白色系毛色形成有關(guān)。盡管如此,目前有關(guān)于馬香檳毛色的研究還相對有限,Cook等[1]對馬SLC36A1基因的研究是目前唯一1篇有關(guān)SLC36A1基因與香檳毛色關(guān)系的報道,該研究發(fā)現(xiàn)SLC36A1基因外顯子2上的一個堿基突變造成了馬香檳毛色,推測可能是該突變改變了黑色素體合成過程中的pH值,從而影響酪氨酸的合成,但是其確切的作用機(jī)制尚不清楚。溶質(zhì)載體(SLC)家族的其他同源基因已經(jīng)被證實與相應(yīng)的毛色相關(guān),馬SLC45A2(MATP)基因與奶油毛色密切相關(guān)[12];而在人類中,SLC45A2的突變(p.Ala111Thr)與皮膚顏色有關(guān)[13];小鼠SLC45A5基因則與金黃毛色消退相關(guān)[14]。
本研究對中國馬SLC36A1基因的遺傳多樣性進(jìn)行研究,共發(fā)現(xiàn)5個堿基突變,其中前兩處及最后一處為顛換,第三處和第四處為轉(zhuǎn)換,外顯子4為同義突變,外顯子6為錯義突變(p. Ala172Val)。5個SNPs共構(gòu)建了9種單倍型,其中H5所占比例最大為最主要單倍型。其中,玉樹馬有7個單倍型,德保矮馬有6個單倍型,H2、H5、H7、H9為共享單倍型。Cook等[1]在SLC36A1基因中發(fā)現(xiàn)的唯一突變C→G位于外顯子2上,并證實該突變造成香檳毛色表型。本研究沒有在外顯子2上發(fā)現(xiàn)造成香檳毛色的C→G堿基突變,但是確定了SLC36A1基因外顯子4和外顯子6上的堿基突變(外顯子4 g.26699562 G>A,外顯子6 g.26697018 C>T),并且發(fā)現(xiàn)外顯子6的堿基突變造成該位點編碼的氨基酸由Ala變?yōu)閂al。由于本試驗采集的樣本沒有相關(guān)香檳毛色表型的記錄,因此不能簡單的根據(jù)外顯子2中的突變來確定玉樹馬和德保馬中香檳毛色個體的存在。這一問題的解決還亟待于對外顯子6中SNP與香檳毛色表型性狀關(guān)系的進(jìn)一步研究。單倍型多樣度分析表明兩個馬品種的平均遺傳多樣度為0.3160,表明玉樹馬和德保矮馬SLC36A1基因的遺傳多樣性均不豐富,中國馬毛色表型遺傳多樣性低。Ludwig等[15]研究認(rèn)為馬最早出現(xiàn)的毛色為紅棕色(12000 BC),在進(jìn)化過程中,馬的紅棕色表型逐漸向黑色推進(jìn),到5000 BC時開始出現(xiàn)毛色消褪表型和斑點表型,這表明馬毛色消退基因出現(xiàn)較晚。因此本研究認(rèn)為中國家馬香檳毛色表型出現(xiàn)較晚,表型擴(kuò)張范圍有限,推測中國馬毛色表型可能比較古老,這與毛春春等[16]在馬KIT基因多態(tài)性上的研究結(jié)果一致。本研究采集的玉樹馬樣本數(shù)大于德保矮馬,但是結(jié)果發(fā)現(xiàn)德保馬的單倍型多樣度高于玉樹馬,這可能是由于玉樹馬采自青海省偏遠(yuǎn)地帶,自然環(huán)境惡劣,馬匹之間遺傳關(guān)系較近。另外,隨著馬役用價值的減弱,很多地方馬品種的數(shù)量減少,加之飼養(yǎng)者對其毛色的重視和選育程度不夠,最終造成了香檳毛色遺傳多樣性低的現(xiàn)狀。哈代-溫伯格平衡研究表明,所發(fā)現(xiàn)的5個堿基突變均處于平衡狀態(tài)。Ewens-Watterson中性檢驗結(jié)果也表明,該5個SNPs沒有偏離明顯的中性區(qū),因此說明中國家馬SLC36A1基因沒有受到明顯的自然選擇。本研究首次對中國家馬SLC36A1基因遺傳多樣性進(jìn)行研究,發(fā)現(xiàn)其單倍型多樣度相對較低,可以對今后研究家馬香檳毛色多樣性、選育研究提供理論依據(jù)。此外,本試驗沒有找到外顯子2上與香檳毛色相關(guān)的突變,但是確定了外顯子6上的堿基突變造成編碼的丙氨酸轉(zhuǎn)變?yōu)槔i氨酸,因此需要通過更多的研究來確定該位點突變與香檳毛色的關(guān)系以及中國香檳毛色家馬分布情況。
參考文獻(xiàn):
[1] Barsh G S, Cook D, Brooks S, et al. Missense Mutation in Exon 2 of SLC36A1 Responsible for Champagne Dilution in Horses[J]. PLoS Genetics, 2008, 4(9): e1000195.
[2] Boll M, Daniel H, Gasnier B. The SLC36 family: proton-coupled transporters for the absorption of selected amino acids from extracellular and intracellular proteolysis [J]. Pflügers Archiv European Journal of Physiology, 2004, 447(5): 776-779.
[3] Boll M, Foltz M, Rubio-Aliaga I, et al. A cluster of proton amino acid transporter genes in the human and mouse genomes [J]. Genomics, 2003, 82(1): 47-56.
[4] Thwaites D T, Mcewan G T A, Cook M J, et al. H+-coupled (Na+-independent) proline transport in human intestinal (Caco-2) epithelial cell monolayers [J]. FEBS letters, 1993, 333(1): 78-82.
[5] Chen Z, Fei Y J, Anderson C M H, et al. Structure, function and immunolocalization of a proton-coupled amino acid transporter (hPAT1) in the human intestinal cell line Caco‐2 [J]. The Journal of Physiology, 2003, 546(2): 349-61.
[6] Bermingham J R, Pennington J. Organization and expression of the SLC36 cluster of amino acid transporter genes [J]. Mammalian Genome, 2004, 15(2): 114-125.
[7] Anderson C M, Grenade D S, Boll M, et al. H+amino acid transporter 1 (PAT1) is the imino acid carrier: An intestinal nutrient drug transporter in human and rat [J]. Gastroenterology, 2004, 127(5): 1 410-1 422.
[8] Cieslak M, Reissmann M, Hofreiter M, et al. Colours of domestication [J]. Biological Reviews, 2011, 86(4): 885-899.
[9] Stachurska A, Pieta M, Lojek J, et al. Performance in racehorses of various colours [J]. Livestock Science, 2007, 106(2): 282-286.
[10] Sulem P, Gudbjartsson D F, Stacey S N, et al. Two newly identified genetic determinants of pigmentation in Europeans [J]. Nature Genetics, 2008, 40(7): 835-837.
[11] Haase B, Brooks S A, Schlumbaum A, et al. Allelic heterogeneity at the equine KIT locus in dominant white (W) horses [J]. PLoS Genetics, 2007, 3(11): e195.
[12] Mariat D, Taourit S, Guérin G. A mutation in the MATP gene causes the cream coat colour in the horse [J]. Genetics Selection Evolution, 2003, 35(1): 119.
[13] Graf J, Hodgson R, Van Daal A. Single nucleotide polymorphisms in the MATP gene are associated with normal human pigmentation variation [J]. Human mutation, 2005, 25(3): 278-284.
[14] Hoekstra H. Genetics, development and evolution of adaptive pigmentation in vertebrates [J]. Heredity, 2006, 97(3): 222-234.
[15] Ludwig A, Pruvost M, Reissmann M, et al. Coat color variation at the beginning of horse domestication [J]. Science, 2009, 324(5926): 485.
[16] 毛春春,孫偉,劉東花,等. 德保矮馬與哈薩克馬KIT基因多態(tài)性分析[J]. 家畜生態(tài)學(xué)報, 2012,33(3):19-22.