胡均亮,陸方菊,陳功,田霄飛,吳振強(qiáng)*
(華南理工大學(xué)生物科學(xué)與工程學(xué)院,廣東廣州510006)
不同來(lái)源紅曲米多酚類(lèi)化合物和抗氧化活性的聚類(lèi)分析
胡均亮,陸方菊,陳功,田霄飛,吳振強(qiáng)*
(華南理工大學(xué)生物科學(xué)與工程學(xué)院,廣東廣州510006)
為了研究不同紅曲米樣品抗氧化性差異,考察了10種紅曲米樣品中總多酚和總黃酮含量與DPPH、ABTS自由基清除力,并進(jìn)一步分析了多酚類(lèi)化合物的種類(lèi)和含量。結(jié)果表明,紅曲米總多酚和總黃酮含量與其DPPH和ABTS自由基清除力呈顯著的正相關(guān)性(P<0.01);其中廣東紅曲的總多酚、總黃酮含量和抗氧化性的指標(biāo)最高,其次為福建紅曲,浙江紅曲最低。同時(shí)多酚類(lèi)化合物的種類(lèi)及含量在不同的紅曲米樣品間差異較大,以多酚類(lèi)化合物種類(lèi)和含量作為區(qū)分依據(jù),10種紅曲米樣品被分為4組,呈現(xiàn)產(chǎn)地聚集。表明紅曲米樣品中多酚類(lèi)化合物的種類(lèi)和含量受產(chǎn)地來(lái)源的影響較大。
紅曲米;多酚類(lèi)化合物;抗氧化活性;相關(guān)性分析;聚類(lèi)分析
紅曲米是以大米作為主要原料,由紅曲霉菌發(fā)酵而成的紫紅色米曲,也稱(chēng)丹曲。紅曲米作為一種傳統(tǒng)發(fā)酵食品,在福建、浙江一帶深受當(dāng)?shù)厝嗣駳g迎。紅曲米應(yīng)用廣泛,不僅可以釀造紅曲酒、烹飪飲食、發(fā)酵食品[1-2],同時(shí)具有降低膽固醇和防止心血管疾病的活性物質(zhì)。目前研究表明,紅曲菌的次級(jí)代謝產(chǎn)物,包括莫納克林K、色素、γ-氨基丁酸和二聚酸等,具有降血脂、治療阿茲海默癥、防止肥胖、調(diào)節(jié)血壓、防止氧化損傷和抗癌等功效[3]。
研究發(fā)現(xiàn),通過(guò)紅曲菌(安卡紅曲霉(Monascus anka)和紫紅曲霉(Monascus purpureus)等)固態(tài)發(fā)酵谷物、高粱和玉米等農(nóng)副產(chǎn)品,可以促進(jìn)酚類(lèi)物質(zhì)釋放與轉(zhuǎn)化,明顯提高農(nóng)副產(chǎn)品的抗氧化性等功能性?xún)r(jià)值。ANIYA Y等[4-5]研究發(fā)現(xiàn),紅曲提取液中的二聚酸(dimeric acid)是1,1-二苯基-2-苦基肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH)自由基抗氧化活性和紅曲保肝作用的主要物質(zhì)。YANG J H等[6]比較了經(jīng)過(guò)紅曲發(fā)酵的精米和除殼大米產(chǎn)品與未發(fā)酵原料的抗氧化特性,發(fā)現(xiàn)紅曲發(fā)酵大米的還原能力、金屬螯合能力、鐵離子清除能力和酚類(lèi)物質(zhì)含量均高于未發(fā)酵大米;PYO Y H等[7]研究發(fā)現(xiàn),紅曲谷物發(fā)酵提取液不僅能夠降低血脂濃度和脂質(zhì)過(guò)氧化作用,還可以提高抗氧化物α-生育酚(α-tocopherol)和輔酶Q(coenzyme Q,CoQ)的水平;HUANG C S等[8]通過(guò)紫紅曲霉發(fā)酵金門(mén)高粱酒糟,發(fā)現(xiàn)使用100 μg/mL的發(fā)酵液處理M.purpureusCWT715可以減少61%的脫氧核糖核酸(deoxyribonucleic acid,DNA)損傷和51%的脂質(zhì)過(guò)氧化作用,表現(xiàn)出抗氧化功能性產(chǎn)品的開(kāi)發(fā)潛力;KONGBANGKERD T等[9]開(kāi)發(fā)了兩步法紅曲發(fā)酵糯玉米的方法,相比于傳統(tǒng)工藝,新方法的DPPH、亞鐵還原能力(ferric reducing antioxidant power,F(xiàn)RAP)和Fe2+清除能力的半抑制濃度(halfmaximalinhibitoryconcentration,IC50)下降了50%;ABD R D L等[10]利用紫紅曲霉和少孢根霉發(fā)酵米糠,發(fā)現(xiàn)生物發(fā)酵能夠明顯提高米糠的抗氧化性和多酚類(lèi)物質(zhì)的含量。
本研究對(duì)不同地區(qū)和種類(lèi)紅曲米多酚類(lèi)化合物的種類(lèi)和含量、抗氧化活性的差異進(jìn)行了相關(guān)性分析和聚類(lèi)分析。旨在探索不同地區(qū)在菌種、原料和制作工藝等差異對(duì)紅曲米品質(zhì)的影響,以期為探討建立高抗氧化活性的紅曲米樣品的標(biāo)準(zhǔn)生產(chǎn)工藝提供理論依據(jù)。
1.1 材料與試劑
市售紅曲米樣品:當(dāng)?shù)剞r(nóng)副產(chǎn)品市場(chǎng),室溫條件下保存于干燥處。紅曲米樣品信息詳見(jiàn)表1。
表1 紅曲米樣品的產(chǎn)地、種類(lèi)及干物質(zhì)含量Table 1 Origins,varieties and dry matter contents of red kojic rice samples
福林酚(分析純):廣州市齊云生物技術(shù)有限公司;DPPH、維生素C(vitaminC,VC)(分析純):上海阿拉丁生化科技股份有限公司;2,2-聯(lián)氮-二(3-乙基-苯并噻唑-6-磺酸)二銨鹽(2,2'-azinobis-(3-ethylbenzthiazoline-6-sulphonate,ABTS)(色譜純):西格瑪奧德里奇(上海)貿(mào)易有限公司;沒(méi)食子酸、綠原酸、對(duì)羥基苯甲酸、香草酸、香豆酸、蘆丁、芥子酸、反式肉桂酸、阿魏酸、山奈酚和槲皮素(均為色譜純):上海阿拉丁生化科技股份有限公司;咖啡酸(分析純):上海麥克林生化科技有限公司。
1.2 儀器與設(shè)備
SpectraMax M5多功能酶標(biāo)儀:美國(guó)Thermo Fisher Scientific公司;UV-2802S型紫外可見(jiàn)分光光度計(jì):上海尤尼柯儀器有限公司;e2695HPLC-2998PDA高效液相色譜(highperformanceliquidchromatography,HPLC)儀、SunFire C18色譜柱(250 mm×4.6 mm,5 μm):美國(guó)Waters公司;DHG-9070B恒溫鼓風(fēng)干燥箱:上海申賢恒溫設(shè)備廠(chǎng);BJ-400A多功能粉碎機(jī):德清拜杰電器有限公司。
1.3 方法
1.3.1 紅曲米樣品干物質(zhì)含量測(cè)定
紅曲米樣品經(jīng)多功能粉碎機(jī)粉碎后過(guò)40目篩網(wǎng)。稱(chēng)取0.5~0.6 g紅曲米粉于稱(chēng)量瓶中,置于105℃恒溫鼓風(fēng)干燥箱中8~12 h并在干燥皿中冷卻。紅曲米樣品干物質(zhì)含量計(jì)算公式為:
式中:W為紅曲米樣品的干物質(zhì)含量,%;m1是稱(chēng)量瓶的質(zhì)量,g;m2是稱(chēng)量瓶的質(zhì)量和未干燥樣品的質(zhì)量之和,g;m3是稱(chēng)量瓶的質(zhì)量與干燥后樣品的質(zhì)量之和,g。
1.3.2 紅曲米樣品提取物制備
精確稱(chēng)取1.00 g干燥的紅曲米粉于100 mL具塞試管中,加入25 mL體積分?jǐn)?shù)為80%的甲醇溶液混勻,在25℃條件下超聲(40W)提取30min。每個(gè)樣品提取兩次,合并提取液后使用定性濾紙(直徑12.5 cm)過(guò)濾。濾液儲(chǔ)藏于4℃冰箱備用。
1.3.3 紅曲米樣品提取液中總多酚和總黃酮含量測(cè)定
提取液中總多酚含量的測(cè)定采用福林酚法[11]:取0.1mL提取液或沒(méi)食子酸標(biāo)準(zhǔn)液(質(zhì)量濃度梯度為0、0.01mg/mL、0.02 mg/mL、0.04 mg/mL、0.06 mg/mL和0.08 mg/mL),加入0.05 mL福林酚試劑混勻,室溫條件下反應(yīng)3~8 min,加入0.15mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)為20%的Na2CO3溶液,再加入0.7 mL蒸餾水定容至1 mL,反應(yīng)60 min,在波長(zhǎng)765 nm處測(cè)定吸光度值(OD765nm)。總多酚的含量以沒(méi)食子酸(mg/mL)表示,以總多酚含量(x)為橫坐標(biāo),吸光度值OD765nm(y)為縱坐標(biāo),繪制總多酚溶液標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)為y=5.707 4x+0.009 9(相關(guān)系數(shù)R2=0.999)。樣品中總多酚含量計(jì)算公式為:
式中:A1為反應(yīng)液的總多酚含量,mg/mL;N為紅曲米樣品提取液的稀釋倍數(shù);25是提取溶劑體積,mL;m為紅曲米樣品的質(zhì)量,g;W為紅曲米樣品的干物質(zhì)含量,%。
總黃酮含量的測(cè)定參照DEWANTO V等[12]方法,取0.1mL提取液(或蘆丁標(biāo)準(zhǔn)液)(質(zhì)量濃度梯度0、0.04mg/mL、0.08 mg/mL、0.12 mg/mL、0.16 mg/mL、0.20 mg/mL),加入0.5 mL蒸餾水和0.03 mL NaNO2(5%,W/W)溶液混勻,反應(yīng)6 min,加入0.06 mL 10%AlCl3溶液,室溫反應(yīng)5 min,加入0.2 mL 1 mol/L的NaOH溶液,再加入0.11 mL蒸餾水定容至1 mL,于波長(zhǎng)510 nm處測(cè)定吸光度值??傸S酮的含量以蘆?。╩g/mL)表示,以總黃酮含量(x)為橫坐標(biāo),吸光度值OD510nm(y)為縱坐標(biāo),繪制總黃酮溶液標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)為y=0.5829x+ 0.002 4(相關(guān)系數(shù)R2=0.996 5)。樣品中總黃酮含量計(jì)算公式為:
式中:A1為反應(yīng)液的總黃酮含量,mg/mL;N為紅曲米樣品提取液的稀釋倍數(shù);25為提取溶劑的體積,mL;m為紅曲米樣品的質(zhì)量,g;W為紅曲米樣品的干物質(zhì)含量,%。
1.3.4 紅曲米樣品提取液DPPH和ABTS自由基清除力的測(cè)定
DPPH自由基清除力的測(cè)定按照LI H等[13]報(bào)道的方法:取0.1 mL提取液(或VC標(biāo)準(zhǔn)液)(質(zhì)量濃度梯度為0、0.01mg/mL、0.02mg/mL、0.03mg/mL、0.04mg/mL、0.05mg/mL和0.06 mg/mL)加入3.9 mL DPPH甲醇溶液(6×10-5mol/L),混勻后在暗光下反應(yīng)30 min,于波長(zhǎng)515 nm處測(cè)定吸光度值。DPPH自由基清除力以VC當(dāng)量(mg/mL)表示。DPPH自由基清除率的計(jì)算公式如下:
式中:A0為0.1 mL提取液(或VC標(biāo)準(zhǔn)液)+3.9 mL DPPH溶液的吸光度值;A1為0.1 mL提取液(或VC標(biāo)準(zhǔn)液)+3.9 mL甲醇溶液的吸光度值;A2為0.1 mL體積分?jǐn)?shù)80%甲醇溶液+3.9 mL DPPH溶液的吸光度值。
ABTS自由基清除力的測(cè)定按照LI H等[13]報(bào)道的方法:將10mLABTS溶液(7mmol/L)和過(guò)硫酸鉀溶液(2.45mmol/L)按等體積1∶1混合,室溫暗光下靜置12~16h。用乙醇稀釋至OD732nm=0.700±0.020備用。取0.1 mL提取液(或VC標(biāo)準(zhǔn)液)(質(zhì)量濃度梯度為0、0.005mg/mL、0.01mg/mL、0.02mg/mL、0.03 mg/mL、0.04 mg/mL和0.05 mg/mL)加入3.9 mL ABTS稀釋液,混勻后室溫反應(yīng)6 min,于波長(zhǎng)732 nm處測(cè)定吸光度值。ABTS自由基清除力以VC當(dāng)量(mg/mL)表示。ABTS自由基清除率的計(jì)算公式如下:
式中:A0是0.1 mL提取液(或VC標(biāo)準(zhǔn)液)+3.9 mLABTS稀釋液的吸光度值,A1是0.1 mL 80%甲醇溶液+3.9 mL ABTS稀釋液的吸光度值。
1.3.5 紅曲米樣品各種多酚類(lèi)化合物的測(cè)定
多酚類(lèi)化合物含量的測(cè)定在ROGGERO J P等[14]方法的基礎(chǔ)上進(jìn)行了優(yōu)化。HPLC檢測(cè)條件為:柱溫箱溫度為30℃;流動(dòng)相A為0.005 mol/L磷酸緩沖液(pH 2.5),流動(dòng)相B為純乙腈;梯度洗脫程序?yàn)椋?~35 min(85%A+15%B),35~36 min(50%A+50%B),36~40 min(20%A+80%B),40~41 min(20%A+80%B),41~46 min(85%A+15%B),流速為0.8 mL/min。紫外檢測(cè)器掃描波長(zhǎng)為210~400 nm,提取波長(zhǎng)280 nm。
1.3.6 相關(guān)性分析和聚類(lèi)分析
使用IBM SPSS V22.0軟件對(duì)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行相關(guān)性分析和聚類(lèi)分析[15]。
2.1 紅曲米樣品的總多酚和總黃酮含量與抗氧化性分析
10種不同紅曲米樣品的總多酚和總黃酮含量檢測(cè)結(jié)果見(jiàn)圖1。
圖1 10種紅曲米樣品的總多酚(A)和總黃酮含量(B)Fig.1 Contents of total polyphenols(A)and flavonoids(B)in 10 red kojic rice samples
由圖1可知,福建地區(qū)的6種紅曲米樣品總多酚含量基本接近,在4.2~6.5 mg/g之間,而浙江地區(qū)的2種烏衣紅曲米樣品總多酚含量相對(duì)較低。紅曲米樣品GQ、ZQ的總多酚含量最高,分別為11.713 mg/g和8.439 mg/g。在總黃酮含量上,紅曲米樣品FQ5、FQ1總黃酮含量最高,分別為10.563 mg/g和9.120 mg/g。紅曲米樣品ZW1、ZW2總黃酮含量最低。說(shuō)明相同地區(qū)相同種類(lèi)紅曲米樣品的總多酚含量相近,不同地區(qū)間的紅曲米和同地區(qū)不同種類(lèi)的紅曲米在總多酚、總黃酮含量上明顯不同(P<0.05)。
考察10種不同紅曲米樣品的DPPH和ABTS自由基清除力,結(jié)果見(jiàn)圖2。
圖2 10種紅曲米樣品的DPPH和ABTS自由基清除力Fig.2 DPPH and ABTS free radical scavenging ability of 10 red kojic rice samples
由圖2可知,不同地區(qū)和種類(lèi)的紅曲米樣品具有不同的DPPH和ABTS自由基清除力。福建地區(qū)的6種紅曲米樣品DPPH自由基清除力相近,在4.1~5.8 mg/g之間;來(lái)自浙江地區(qū)烏衣紅曲米樣品ZW1、ZW2的DPPH自由基清除力相對(duì)較低,分別為1.547 mg/g和1.338 mg/g,而浙江地區(qū)紅曲米樣品ZQ的DPPH自由基清除力為3.997 mg/g。紅曲米樣品GQ的DPPH自由基清除力最高,為8.711 mg/g。ABTS自由基清除力的結(jié)果表明,福建地區(qū)的5種紅曲米樣品FQ1~FQ5的清除能力相差不大,在13.1~17.3 mg/g的范圍內(nèi)。紅曲米樣品FQ6和ZQ的ABTS自由基清除力差不多,分別為11.452 mg/g和11.531 mg/g。浙江烏衣紅曲米樣品ZW1/ZW2的清除能力相對(duì)較弱,為5.004mg/g和4.474mg/g。紅曲米樣品GQ的ABTS自由基清除力最大,為28.607mg/g。
2.2 總多酚和總黃酮含量與DPPH、ABTS自由基清除力的相關(guān)性分析
總多酚含量、總黃酮含量以及DPPH、ABTS自由基清除力的相關(guān)性分析結(jié)果見(jiàn)表2。
表2 總多酚和總黃酮含量與DPPH和ABTS自由基清除力的相關(guān)性分析Table2Correlationanalysisoftotalpolyphenolsandflavonoidscontents and DPPH and ABTS free radical scavenging ability
由表2可知,紅曲米的DPPH和ABTS自由基清除力與總多酚含量相關(guān)系數(shù)分別為0.918和0.943,與總黃酮含量的相關(guān)系數(shù)分別為0.957、0.944。說(shuō)明紅曲米樣品的抗氧化能力與總多酚和總黃酮含量呈極顯著正相關(guān)(P<0.01)。
2.3 紅曲米樣品多酚類(lèi)化合物的種類(lèi)和含量
采用HPLC法對(duì)10種紅曲米樣品提取物和多酚類(lèi)化合物標(biāo)準(zhǔn)品(12種常見(jiàn)的化合物)進(jìn)行分析,結(jié)果見(jiàn)圖3。通過(guò)與標(biāo)準(zhǔn)品的對(duì)照,本研究對(duì)紅曲米樣品中主要的多酚類(lèi)化合物進(jìn)行了定性和定量的研究,結(jié)果如表3所示。
圖3 紅曲米樣品中多酚類(lèi)化合物及多酚類(lèi)化合物標(biāo)準(zhǔn)品的HPLC色譜圖Fig.3 HPLC chromatograms of polyphenol compounds of red kojic rice samples and the polyphenol compounds standards
表3 10種紅曲米樣品中多酚類(lèi)化合物的含量Table 3 Contents of polyphenol compounds in 10 red kojic rice samples mg/kg
由圖3和表3可知,10種紅曲米提取液中多酚類(lèi)化合物均得到了較好地分離。紅曲米樣品FQ1~FQ5中均含有12種多酚類(lèi)化合物,樣品FQ6含有10種多酚類(lèi)化合物;樣品ZQ和GQ中含有11種多酚類(lèi)化合物,樣品ZW1和ZW2中分別含有10和8種多酚類(lèi)化合物。說(shuō)明不同地區(qū)和種類(lèi)的紅曲米樣品含有不同種類(lèi)的多酚類(lèi)化合物。
由檢測(cè)結(jié)果可知,不同地區(qū)的紅曲米樣品在主要多酚類(lèi)化合物的種類(lèi)和含量上不同,福建紅曲米樣品FQ1~FQ5主要多酚類(lèi)化合物為沒(méi)食子酸、綠原酸,含量分別為208.31~327.20 mg/kg、145.52~241.57 mg/kg。浙江烏衣紅曲米樣品ZW1和ZW2主要多酚類(lèi)化合物為沒(méi)食子酸、蘆丁和香草酸,和福建地區(qū)紅曲米樣品主要多酚類(lèi)化合物明顯不同,含量上也不一樣。而廣東紅曲米樣品GQ的主要多酚類(lèi)化合物為沒(méi)食子酸、芥子酸,含量分別為128.86mg/kg、109.12 mg/kg,相對(duì)于福建地區(qū)和浙江地區(qū)紅曲米樣品,在主要多酚類(lèi)化合物的種類(lèi)和含量上也表現(xiàn)出差異性。同時(shí)相對(duì)于浙江烏衣紅曲米樣品ZW1和ZW2,浙江紅曲米樣品ZQ的主要多酚類(lèi)化合物為沒(méi)食子酸,含量為361.69 mg/kg。說(shuō)明相同地區(qū)不同種類(lèi)紅曲米樣品在主要多酚類(lèi)物質(zhì)的種類(lèi)和含量上也存在明顯差異。
2.4 紅曲米樣品的聚類(lèi)分析
在紅曲米樣品多酚類(lèi)化合物的種類(lèi)和含量研究結(jié)果的基礎(chǔ)上,對(duì)10種不同來(lái)源的紅曲米樣品分別進(jìn)行了聚類(lèi)分析,結(jié)果如圖4所示。
圖4 10種紅曲米樣品的聚類(lèi)分析結(jié)果Fig.4 Results of cluster analysis in 10 red kojic rice samples
由圖4可知,紅曲米樣品被大致歸為4類(lèi),分別為:第一類(lèi)FQ1~FQ5,第二類(lèi)GQ,第三類(lèi)ZQ,第四類(lèi)ZW1、ZW2和FQ6。由聚類(lèi)結(jié)果分析可知,福建紅曲、廣東紅曲、浙江紅曲被分為三類(lèi),浙江紅曲和浙江烏衣紅曲被分為兩類(lèi),說(shuō)明不同的產(chǎn)地和種類(lèi)是影響紅曲米多酚類(lèi)化合物種類(lèi)和含量不同的因素。
本研究通過(guò)對(duì)不同地區(qū)來(lái)源的紅曲米樣品的總多酚、總黃酮含量和體外抗氧化能力進(jìn)行測(cè)定和比較。結(jié)果表明,廣東紅曲米樣品中總多酚、總黃酮含量及抗氧化能力均較高,其次為福建紅曲。不同地區(qū)和種類(lèi)的紅曲米樣品具有不同的DPPH和ABTS自由基清除力,紅曲米樣品中總多酚和總黃酮含量與抗氧化性指標(biāo)DPPH和ABTS自由基清除力表現(xiàn)出顯著的相關(guān)性。不同地區(qū)和種類(lèi)的紅曲米樣品含有不同種類(lèi)的多酚類(lèi)化合物,而且不同地區(qū)和相同地區(qū)不同種類(lèi)紅曲米樣品在主要多酚類(lèi)化合物的種類(lèi)和含量上也有一定的差異。福建紅曲米樣品多酚類(lèi)化合物的種類(lèi)最多,廣東紅曲米樣品的總多酚含量相對(duì)最高。而浙江兩種烏衣紅曲米樣品多酚類(lèi)化合物含量最少,僅為廣東紅曲米樣品的13.92%和15.54%。同時(shí)聚類(lèi)分析發(fā)現(xiàn),紅曲米樣品按照不同地區(qū)和不同種類(lèi)可以被分為4類(lèi),說(shuō)明紅曲米樣品中多酚類(lèi)化合物的種類(lèi)和含量受產(chǎn)地來(lái)源影響較大。
[1]王榮榮,王家東,方玲.新型紅曲米南瓜發(fā)酵酸奶的研制[J].中國(guó)釀造,2009,28(10):168-170.
[2]肖昌貴,劉志彬,張?chǎng)?響應(yīng)面法優(yōu)化紅曲酸奶的發(fā)酵工藝[J].中國(guó)釀造,2014,33(4):145-149.
[3]BATT C A,ROBINSON R K.Encyclopedia of food microbiology(second edition)[M].Oxford:Academic Press,2014:815-825.
[4]ANIYA Y,YOKOMAKURA T,YONAMINE M,et al.Screening of antioxidant action of various molds and protection ofMonascus anka against experimentally induced liver injuries of rats[J].Gen Pharmacol, 1999,32(2):225-231.
[5]TAIRA J,MIYAGI C,ANIYA Y.Dimerumic acid as an antioxidant from the mold,Monascus anka:the inhibition mechanisms against lipid peroxidation and hemeprotein-mediated oxidation[J].Biochem Pharmacol, 2002,63(5):1019-1026.
[6]YANG J H,TSENG Y H,LEE Y L,et al.Antioxidant properties of methanolic extracts from monascal rice[J].LWT-Food Sci Tech,2006, 39(7):740-747.
[7]PYO Y H,SEONG K S.Effects of Monascus-fermented grain extracts on plasma antioxidant status and tissue levels of ubiquinones and alpha-tocopherol in hyperlipidemic rats[J].Food Chem,2013,141(1):428-435.
[8]HUANG C S,HU H H,TSAI Y M,et al.In vitroeffects of Monascus purpureus on antioxidation activity during fermentation of Kinmen sorghum liquor waste[J].J Biosci Bioeng,2013,115(4):418-423.
[9]KONGBANGKERD T,TOCHAMPA W,CHATDAMRONG W,et al. Enhancement of antioxidant activity of monascal waxy corn by a 2-step fermentation[J].Int J Food Sci Tech,2014,49(7):1707-1714.
[10]ABD R D L,ABD RASHID NY,JAMALUDDIN A,et al.Enhancement of phenolic acid content and antioxidant activity of rice bran fermented withRhizopus oligosporusandMonascus purpureus[J].Biocatal Agr Biotechnol,2015,4(1):33-38.
[11]WANG X,XIE K,ZHUANG H,et al.Volatile flavor compounds,total polyphenolic contents and antioxidant activities of a China gingko wine [J].Food Chem,2015,182:41-46.
[12]DEWANTO V,WU X,ADOM K K,et al.Thermal processing enhances the nutritional value of tomatoes by increasing total antioxidant activity [J].J Agr Food Chem,2002,50(10):3010-3014.
[13]LI H,WANG X,LI Y,et al.Polyphenolic compounds and antioxidant properties of selected China wines[J].Food Chem,2009,112(2):454-460.
[14]ROGGERO J P,COEN S,ARCHIER P.Wine phenolics:Optimization of HPLC analysis[J].J Liq Chromatogr,1990,13(13):2593-2603.
[15]MORENO-ARRIBAS M V,POLO M C.Wine chemistry and biochemistry[M].New York:Springer Press,2009:688-706.
Cluster analysis of polyphenol compounds and antioxidant activity of red kojic rice from different producing areas
HU Junliang,LU Fangju,CHEN Gong,TIAN Xiaofei,WU Zhenqiang*
(School of Bioscience and Bioengineering,South China University of Technology,Guangzhou 510006,China)
In order to research the difference of antioxidant activity of red kojic rice simples from different producing areas,the contents of total polyphenols and flavonoids and the scavenging ability of DPPH and ABTS free radical in 10 red kojic rice simples were investigated,the varieties and contents of polyphenol compounds were further analyzed.The results showed that the total polyphenols and total flavonoids contents in red kojic rice had significant positive correlation with DPPH and ABTS free radical scavenging ability(P<0.01).Total polyphenols,total flavonoids content and antioxidant activity indexes in red kojic rice produced from Guangdong were the highest,followed by red kojic rice from Fujian and the lowest was the red kojic rice from Zhejiang.The differences of varieties and contents of polyphenol compounds between the different red kojic rice samples were greater.Using the varieties and contents of polyphenol compounds as distinguish basis,10 red kojic rice samples were divided into four groups and presented origin gather,which indicated that varieties and contents of polyphenol compounds in red kojic rice samples varied replying on their origin.
red kojic rice;polyphenolic compounds;antioxidant activity;correlation analysis;cluster analysis
TS202.1
0254-5071(2017)03-0039-05
10.11882/j.issn.0254-5071.2017.03.009
2016-11-27
國(guó)家自然科學(xué)基金(31271925);廣東省教育部產(chǎn)學(xué)研結(jié)合項(xiàng)目(2013B090600015);廣州市科技計(jì)劃項(xiàng)目(2014J4100192)
胡均亮(1990-),男,碩士研究生,研究方向?yàn)榧t曲酒發(fā)酵和功能性物質(zhì)分析。
*通訊作者:吳振強(qiáng)(1963-),男,教授,博士,研究方向?yàn)榘l(fā)酵工程、生物工程、生物化工、生態(tài)環(huán)境,大健康產(chǎn)業(yè)領(lǐng)域理論與應(yīng)用。