梁文琦 宋新雨 劉攀 王偉 王林娥
首都醫(yī)科大學(xué)附屬北京友誼醫(yī)院耳鼻咽喉頭頸外科
電誘發(fā)聽性腦干反應(yīng)(electrically evoked auditory brainstem response,EABR)、電誘發(fā)中潛伏期反應(yīng)(electrically evoked middle latency response,EMLR)與電誘發(fā)長潛伏期反應(yīng)(electrically evoked late latency response,ELLR)均屬于電刺激聽覺誘發(fā)電位,它是人工耳蝸植入患者,尤其是兒童患者的一種重要客觀評估手段。它能反應(yīng)聽覺神經(jīng)傳導(dǎo)通路的完整性及功能,從而為人工耳蝸植入側(cè)別的選擇提供一種客觀依據(jù),并可以用來預(yù)測人工耳蝸植入術(shù)后患者的聽覺言語康復(fù)效果。目前,患者電刺激聽覺誘發(fā)電位的引出率及其測試的穩(wěn)定性尚待進(jìn)一步摸索與探討,因此,研究和分析豚鼠全麻下各種圓窗電刺激聽覺誘發(fā)電位測試的刺激及相關(guān)記錄參數(shù),可以有效保證電刺激聽覺誘發(fā)電位波形的引出率和穩(wěn)定性。
選取健康豚鼠6只,雌雄不限,體重400-500g,耳廓反射靈敏,無強(qiáng)噪聲暴露及耳毒性藥物使用史,電耳鏡檢查鼓膜正常。
1.2.1 實驗環(huán)境:EABR、EMLR、ELLR測試均在電磁屏蔽室進(jìn)行,屏蔽室墻壁銅網(wǎng)接地,操作者禁止攜帶電子設(shè)備,如手機(jī)等。
1.2.2 實驗設(shè)備:本實驗采用Neuro-Audio聽覺誘發(fā)電位儀(Neurosoft Ltd.,Ivanov,俄羅斯),刺激設(shè)備選擇該公司外置電刺激器。實驗軟件使用Neuro-Audio1.0.103.2版本。誘發(fā)電位儀及電刺激器之間使用USB線纜連接于同一筆記本電腦。EABR、EMLR、ELLR的檢測均由刺激系統(tǒng)與記錄系統(tǒng)兩部分組成。其中刺激系統(tǒng)向耳蝸發(fā)放電刺激信號,記錄系統(tǒng)在頭部相應(yīng)位點記錄產(chǎn)生的誘發(fā)電位。
1.2.3 實驗電極:刺激電極為直徑約0.1mm銀球電極,電極一端呈圓球狀,圓球直徑約0.5mm,電極除球形端及尾端連接處裸露外,其余電極均由絕緣橡膠套包裹。記錄電極(正極)、參考電極(負(fù)極)及接地電極使用不銹鋼針狀電極。
采用10%水合氯醛(0.5 ml/100g)于豚鼠腹腔注射麻醉。麻醉滿意后先測試雙耳ABR,確認(rèn)聽力正常后,將豚鼠置于解剖臺,取側(cè)臥位,檢測耳朝上。去除豚鼠耳后毛發(fā),牽拉耳廓向前,行耳后切口,逐層分離肌肉至骨面,1ml注射器針頭穿刺確認(rèn)聽泡位置。在顯微鏡下沿穿刺孔擴(kuò)大打開聽泡,暴露圓窗龕(見圖1)。將刺激電極正極(銀球電極)置于圓窗龕并貼附于圓窗膜表面,刺激電極負(fù)極置于同側(cè)乳突皮下,記錄電極置于兩外耳道口連線與顱正中線交叉處皮下,參考電極置于對側(cè)乳突皮下,地極置于鼻尖皮下(見圖2),保證單個電極阻抗<5kΩ,極間阻抗小于3kΩ。實驗同時觀察豚鼠觸須及面部肌肉抽動情況。
圖1 示顯微鏡下打開聽泡,暴露圓窗龕。Fig.1 The otocyst were opened and the round window niche was exposed under the microscope.
圖2 示測試中各電極位置,包括刺激電極正極(a)、刺激電極負(fù)極(b)、記錄電極(c)、參考電極(d)、地極(e)。Fig.2 The position of each electrode in the test,includes the positive stimulating electrode(a),the negative stimulating electrode(b),the recording electrode(c),the reference electrode(d)and the ground electrode(e).
1.3.1 EABR測試
在Neuro-Audio1.0.103.2中選擇eABR(electrical stimulator)模式,刺激頻率 21Hz,分析時限10ms,疊加1024次,拒絕水平±10μV,信號輸入范圍 500μV,低 頻 100Hz,高 頻 1500Hz,采 樣 率160000Hz,交替極性單向脈沖電流,波寬100μs,采用同步觸發(fā)模式記錄結(jié)果。監(jiān)測時程40ms,監(jiān)測靈敏度20μV,采集時程2ms,采集靈敏度100μV,疊加時程1ms,疊加靈敏度5μV。
1.3.2 EMLR測試
在Neuro-Audio1.0.103.2中選擇MLR(基礎(chǔ))模式,刺激頻率7Hz,分析時限100ms,疊加512次,拒絕水平±75μV,信號輸入范圍500μV,低頻30Hz,高頻300Hz,采樣率5000Hz,交替極性單向脈沖電流,波寬200μs,采用同步觸發(fā)模式記錄結(jié)果。監(jiān)測時程40ms,監(jiān)測靈敏度75μV,采集時程2ms,采集靈敏度1.5μV,疊加時程10ms,疊加靈敏度5μV。
1.3.3 ELLR測試
在Neuro-Audio1.0.103.2中選擇LLR(基礎(chǔ))模式,刺激頻率1.8Hz,分析時限500ms,疊加1024次,拒絕水平±80μV,信號輸入范圍 500μV,低頻0.1Hz,高頻35Hz,采樣率5000Hz,交替極性單向脈沖電流,波寬200μs,采用同步觸發(fā)模式記錄結(jié)果。監(jiān)測時程40ms,監(jiān)測靈敏度100μV,采集時程100ms,采集靈敏度20μV,疊加時程50ms,疊加靈敏度5μV。
潛伏期指從刺激開始到各波波峰出現(xiàn)的時間,閾值指能夠誘發(fā)產(chǎn)生明顯可識別波形的最小刺激強(qiáng)度,其中豚鼠EABR閾值以能夠誘發(fā)產(chǎn)生明顯可識別III波的最小刺激強(qiáng)度來判定,豚鼠EMLR閾值以能夠誘發(fā)產(chǎn)生明顯可識別Pa波的最小刺激強(qiáng)度來判定,豚鼠ELLR閾值以能夠誘發(fā)產(chǎn)生明顯可識別P2波的最小刺激強(qiáng)度來判定.
本實驗全麻下聽力正常豚鼠6只(12耳)在實驗過程中耐受良好,未出現(xiàn)觸須及面部肌肉抽動,未發(fā)生死亡。其中12耳均記錄到分化良好且穩(wěn)定的EABR波形,以III波最顯著(見圖3);7耳記錄到分化良好且穩(wěn)定的EMLR波形(見圖4),7耳記錄到分化良好且穩(wěn)定的ELLR波形(見圖5)。豚鼠圓窗EABR(12耳)、EMLR(7耳)、ELLR(7耳)測試的閾值與潛伏期均值見表1-3。
圖3 示聽力正常豚鼠圓窗EABR波形??梢鲚^明顯的Ⅲ波,隨著刺激量的增加波幅增大。Fig.3 EABR waves of healthy guinea pig.The obvious III wave can be induced,and the amplitude increases with the increase of stimulation.
圖4 示聽力正常豚鼠圓窗EMLR波形??梢鲆?guī)律Na、Pa、Nb、Pb波,隨著刺激量的增加波幅增大。Fig.4 EMLR waves of healthy guinea pig.The regular Na,Pa,Nb and Pb waves can be induced,and the amplitude increases with the increase of stimulation.
圖5 示聽力正常豚鼠圓窗ELLR波形??梢鲆?guī)律的P1、N1、P2波,隨著刺激量的增加波幅增大。Fig.5 ELLR waves of healthy guinea pig.The regular P1,N1 and P2 waves can be induced,and the amplitude increases with the increase of stimulation.
聽力障礙嚴(yán)重影響人們的日常生活及社會活動,尤其是先天性聽力障礙的患兒,如果不能盡早恢復(fù)聽力,將導(dǎo)致其聽覺和言語發(fā)育發(fā)生難以逆轉(zhuǎn)的停滯。人工耳蝸植入(cochlear implant,CI)不僅可以幫助聽力障礙患者恢復(fù)聽力,更能夠促進(jìn)其言語的發(fā)育。人工耳蝸植入技術(shù)逐漸發(fā)展與成熟,但目前仍無可靠方法評價內(nèi)耳畸形、術(shù)前無殘余聽力、聽神經(jīng)病等患者的聽覺通路狀態(tài)與功能,因此無法預(yù)測這些患者CI術(shù)后聽覺言語康復(fù)效果。
近年來的多項研究認(rèn)為以電刺激為誘發(fā)形式的聽覺誘發(fā)電位,主要包括EABR、EMLR與ELLR等,能客觀反映聽覺通路的狀態(tài)和功能。1979年Starr和Brackmann首次報道了對多導(dǎo)人工耳蝸植入患者進(jìn)行EABR測試[1]。EABR通過刺激螺旋神經(jīng)節(jié)細(xì)胞,誘發(fā)聽神經(jīng)和腦干產(chǎn)生相關(guān)電位活動,在潛伏期1-10ms范圍內(nèi)產(chǎn)生一系列反應(yīng)波形。EABR各波的起源和形態(tài)與聽性腦干反應(yīng)(auditory brainstem responses,ABR)各波基本相同:波Ⅰ來源于聽神經(jīng),波Ⅱ主要來源于耳蝸核,波Ⅲ來源于上橄欖核,波Ⅳ來源于外側(cè)丘系核,波Ⅴ來源于下丘腦,波Ⅵ可能來源于內(nèi)側(cè)膝狀體,波Ⅶ可能來源于丘腦皮質(zhì)聽放射區(qū)域[2]。其中波Ⅰ、波Ⅱ和波Ⅳ不常出現(xiàn)在反應(yīng)波中,波Ⅲ和波Ⅴ較易被記錄到,而豚鼠最易分辨波形為III波,本研究中12耳均記錄到III波。EABR記錄了聽覺系統(tǒng)誘發(fā)反應(yīng)的短潛伏期成分,故判讀易受電刺激偽跡的干擾。相關(guān)研究發(fā)現(xiàn),EABR與聽神經(jīng)病[3]、內(nèi)聽道狹窄[4]、蝸神經(jīng)管狹窄[5]、蝸軸缺如[6]及 Mondini畸形[7]等特殊病例的術(shù)后言語功能的發(fā)展有關(guān),是一項準(zhǔn)確反映腦干以下聽覺傳導(dǎo)通路完整性、功能性和可塑性的客觀電生理檢查手段,已在臨床廣泛應(yīng)用。Nicolas-Puel[8]等研究發(fā)現(xiàn),全麻豚鼠圓窗EABR閾值為47.1±4.1μA,其潛伏期約2.56±0.08ms,在本研究中,全麻豚鼠圓窗EABR閾值為0.27±0.05mA,其潛伏期約1.95±0.29ms。
表1 豚鼠EABR III波潛伏期及閾值(n=12)Table 1 Latency and thresholds of EABR III wave in guinea pigs
表2 豚鼠EMLR各波潛伏期及閾值(n=7)Table 2 Latency and thresholds of EMLR waves in guinea pigs
表3 豚鼠ELLR各波潛伏期及閾值(n=7)Table 3 Latency and thresholds of ELLR waves in guinea pigs
與EABR相比,EMLR潛伏期較長,故其受電刺激偽跡的影響較小。中潛伏期反應(yīng)(middle latency response,MLR)是指聽覺誘發(fā)電位在刺激開始后8-100ms出現(xiàn)的反應(yīng),它反映了聽覺通路中丘腦以至聽皮層等高級中樞的情況,其主要成分包括一系列規(guī)律變化的負(fù)波(Na)、正波(Pa)、負(fù)波(Nb)以及正波(Pb),其中以Pa波最顯著。1958年Geisler首次報道了對人進(jìn)行聽覺誘發(fā)電位中潛伏期反應(yīng)測試(auditory evoked middle latency response,AMLR)[9]。EMLR與AMLR的起源相似,其中Na波起源于下丘腦,Pa波起源于顳葉的初始聽覺皮層[10],其余波形的起源尚未明確。EMLR波形受刺激位置、刺激參數(shù)、刺激電極、患者年齡、麻醉與睡眠等多種因素的影響[11]。本研究12耳中7耳引出易分辨的EMLR波形,分析未引出的原因可能與測試時豚鼠的麻醉狀態(tài)不同有關(guān)。后續(xù)研究中,可以在監(jiān)測豚鼠麻醉狀態(tài)下進(jìn)行EMLR測試。目前有研究報道豚鼠致聾后EMLR波形變化,但并未提及正常豚鼠EMLR波形的潛伏期和閾值[12]。本研究豚鼠(7耳)圓窗EMLR的閾值為0.29±0.03 mA,Na波的潛伏期為6.40±0.44 ms,Pa波的潛伏期為13.00±1.80 ms,Nb波的潛伏期為25.23±4.72 ms,Pb波的潛伏期為38.05±5.32 ms。
ELLR反映了更高級別聽覺傳導(dǎo)通路的功能。ELLR的主要成分包括P1、N1、P2、N2,其中以P2波最顯著。其中P2起源于初級聽覺皮層[13]。長潛伏期反應(yīng)(late latency responses,LLR)受年齡及受試者狀況的影響[14],且植入時間越長,振幅越大[15]。目前,關(guān)于ELLR各波的起源及影響因素等尚待進(jìn)一步研究。本研究12耳中7耳引出可分辨的ELLR波形,未引出的原因可能與測試時豚鼠處于麻醉狀態(tài),對聽覺皮層產(chǎn)生抑制等有關(guān)。在后續(xù)研究中,建議于豚鼠清醒狀態(tài)下進(jìn)行ELLR測試。關(guān)于豚鼠ELLR檢測的研究尚未見報道。本研究豚鼠(7耳)圓窗ELLR的閾值為0.34±0.10 mA,P1波的潛伏期為82.96±17.61 ms,N1波的潛伏期為142.86±21.81 ms,P2波的潛伏期為202.71±20.83 ms,N2波的潛伏期為293.75±21.43 ms。Maurer發(fā)現(xiàn),EABR和言語識別率的統(tǒng)計學(xué)相關(guān)度高于LLR[16]。
CI術(shù)后患者言語康復(fù)效果的提高不僅取決于螺旋神經(jīng)節(jié)細(xì)胞的數(shù)量和功能,還取決于聽覺通路的狀態(tài)和功能。因此,我們需要采用EABR、EMLR及ELLR檢測來客觀評估聽覺通路的狀態(tài)和功能,從而在術(shù)前給患者一個心理預(yù)期,減少醫(yī)患矛盾的產(chǎn)生,并可以繼續(xù)用于術(shù)后各個階段測試,客觀評估聽覺傳導(dǎo)通路功能的變化和可塑性。本研究采用蝸外電刺激的方式,記錄到全麻豚鼠分化重復(fù)性良好且穩(wěn)定性較好的圓窗EABR、EMLR、ELLR波形,為EABR、EMLR、ELLR的臨床應(yīng)用提供了參考,有待進(jìn)一步探討和研究。后續(xù)我們將為致聾豚鼠分別行圓窗EABR、EMLR、ELLR測試,為臨床上耳聾患者人工耳蝸植入術(shù)后聽覺言語康復(fù)效果的預(yù)測提供基礎(chǔ)。