李靜 謝鵬宇 于天飛 柳芳芳 尹海暢 于志丹
摘要:為獲得番鴨細小病毒(muscovy duck parvovirus,MDPV)重組結(jié)構(gòu)蛋白VP2、VP3,本研究以含有MDPV YL08株VP1基因的重組載體pET-32a-VP1為PCR擴增模板,分別亞克隆VP2、VP3基因。構(gòu)建了重組載體 pGEX-6p-VP2、pGEX-6p-VP3并將它們轉(zhuǎn)化至大腸桿菌Rosetta(DE3)中,分別構(gòu)建了重組菌株pGEX-6p-VP2/Rosetta(DE3)和pGEX-6p-VP3/Rosetta(DE3)。2種重組菌株在IPTG誘導下分別獲得了重組蛋白GST-VP2和GST-VP3,分子質(zhì)量分別為91、86 ku。Western blot分析結(jié)果表明,重組蛋白GST-VP2和GST-VP3可特異性結(jié)合GST-tag單克隆抗體和MDPV感染番鴨血清,免疫反應(yīng)性良好。Dot-ELISA比較分析結(jié)果表明,在等質(zhì)量條件下,GST-VP2的免疫反應(yīng)性強于GST-VP3。
關(guān)鍵詞:番鴨細小病毒;VP2;VP3;原核表達;免疫反應(yīng)性
中圖分類號: S852.65+7? 文獻標志碼: A
文章編號:1002-1302(2022)09-0169-04
番鴨細小病毒(Muscovy duck parvovirus,MDPV)主要侵害3周齡以內(nèi)的雛番鴨,引起番鴨細小病毒病,國內(nèi)亦稱番鴨“三周病”[1-2]。我國動物醫(yī)學專家林世棠于1991年最先發(fā)現(xiàn)并報道了該病發(fā)生[3]。番鴨細小病毒病發(fā)病率為40%~50%,死亡率在50%~80%之間,對番鴨飼養(yǎng)業(yè)的危害極大[4]。MDPV和親緣關(guān)系密切的鵝細小病毒(goose parvovirus,GPV)一同被列為細小病毒科(Parvoviridae)依賴病毒屬(Dependovirus)雁形目依賴細小病毒1(Anseriform dependoparvovirus 1)[5]。MDPV是1 種單鏈DNA病毒,無囊膜,基因組大小為5 132 nt,兩端為末端倒置重復(fù)序列(ITR)[6]。MDPV基因組有左、右2個開放閱讀框,以重疊基因的形式利用轉(zhuǎn)錄本可變剪接方式分別編碼轉(zhuǎn)譯非結(jié)構(gòu)蛋白(NS)和結(jié)構(gòu)蛋白(VP)。已有研究表明,NS參與病毒復(fù)制,調(diào)控病毒基因表達[7]。VP1、VP2和VP3等3 種結(jié)構(gòu)蛋白以約1 ∶1 ∶8的比例組裝病毒衣殼[8]。已有研究表明,VP2為重要免疫原性蛋白[9]。本研究通過原核表達系統(tǒng)表達獲得MDPV YL08株VP2、VP3重組蛋白,以期為MDPV病毒相關(guān)蛋白功能研究奠定物質(zhì)基礎(chǔ)。
1 材料與方法
1.1 菌種和質(zhì)粒
含有MDPV YL08株全長VP1基因的重組載體pET-32a-VP1[10]、原核表達載體pGEX-6p-1、感受態(tài)大腸桿菌DH5α和Rosetta(DE3)由齊齊哈爾大學生命科學與農(nóng)林學院動物免疫學研究室制備或保存。
1.2 主要分子生物學試劑
T 4 DNA連接酶、BamHⅠ和XhoⅠ限制性核酸內(nèi)切酶購自寶生物工程(大連)有限公司;質(zhì)粒提取試劑盒、DNA膠回收試劑盒購自O(shè)mega公司。辣根過氧化物酶(HRP)標記的GST-tag單克隆抗體購自Thermo Fisher公司。HRP-兔抗鴨IgY IgG(H+L)購自上海銘修生物科技有限公司。
1.3 試驗時間與地點
試驗于2020年10月至2021年2月在齊齊哈爾大學生命科學與農(nóng)林學院動物免疫學研究室進行。
1.4 引物設(shè)計
參照MDPV YL08株VP1基因序列(GenBank登錄號:KU589295),利用Primer Premier 5.0軟件設(shè)計了3條特異性引物,由哈爾濱博仕生物技術(shù)有限公司合成。
VP2F:5′-CGCGGATCCACGGCTCCTGCTAAAAAG-3′(劃線處為BamHⅠ位點);
VP3F:5′-CGCGGATCCATGGCAGAGGGAGGAAG-3′(劃線處為BamHⅠ位點);
VPR:5′-GGCCGCTCGAGTTACAGATTCTGAGTC-3′(劃線處為XhoⅠ位點)。
1.5 基因片段擴增及回收純化
VP2基因PCR反應(yīng)體系(50 μL):2 μL 1 ∶10 000稀釋的pET-32a-VP1,4 μL dNTPs,5 μL 10×PCR Buffer,1 μL 上游引物VP2F(25 pmol/μL),1 μL 下游引物VPR(25 pmol/μL),1 μL ExTaq酶(5 U/μL),36 μL 無菌去離子水。PCR擴增程序為:94.0 ℃ 5 min;94.0 ℃ 90 s,30.0 ℃ 90 s,72.0 ℃ 3 min,35 個循環(huán);72.0 ℃ 7 min;4.0 ℃終止反應(yīng)。
VP3基因PCR反應(yīng)體系(50 μL):2 μL 1 ∶10 000稀釋的pET-32a-VP1,4 μL d NTPs,5 μL 10×PCR Buffer,1 μL 上游引物VP3F(25 pmol/μL),1 μL 下游引物VPR(25 pmol/μL),1 μL ExTaq酶(5 U/μL),36 μL 無菌去離子水。PCR擴增程序為:94.0 ℃ 5 min;94.0 ℃ 90 s,57.0 ℃ 90 s,72.0 ℃ 3 min,35 個循環(huán);72.0 ℃ 7 min,4.0 ℃終止反應(yīng)。
上述2種PCR擴增產(chǎn)物分別通過瓊脂糖凝膠電泳檢測。按照Omega公司DNA膠回收試劑盒說明書操作流程回收純化VP2、VP3基因PCR擴增片段。
1.6 重組載體pGEX-6p-VP2和pGEX-6p-VP3的構(gòu)建
膠回收BamHⅠ和XhoⅠ雙酶切后的VP2、VP3基因PCR擴增片段和表達載體pGEX-6p-1。分別在含有VP2/pGEX-6p-1和VP3/pGEX-6p-1的連接體系中加入T 4 DNA連接酶,于16 ℃的溫度下連接過夜。連接產(chǎn)物VP2/pGEX-6p-1和VP3/pGEX-6p-1分別轉(zhuǎn)化DH5α。挑取單個轉(zhuǎn)化后的DH5α菌落于LB液體培養(yǎng)基(氨芐青霉素,100 μg/mL)中,37 ℃溫度下培養(yǎng)14 h,按照Omega公司質(zhì)粒提取試劑盒說明書操作流程提取質(zhì)粒。酶切鑒定并測序驗證外源基因插入的準確性。獲得的重組載體分別命名為pGEX-6p-VP2、pGEX-6p-VP3。B34FDA31-1A06-492A-ACC5-3C31F209EC5F
1.7 重組蛋白GST-VP2和GST-VP3的誘導表達
分別將pGEX-6p-VP2和pGEX-6p-VP3轉(zhuǎn)化感受態(tài)大腸桿菌Rosetta(DE3),制備重組菌pGEX-6p-VP2/Rosetta(DE3)、pGEX-6p-VP3/Rosetta(DE3)。按照1 ∶100的比例分別將pGEX-6p-VP2/Rosetta(DE3)、pGEX-6p-VP3/Rosetta(DE3)接種于50 mL LB液體培養(yǎng)基(氨芐青霉素,100 μg/mL)的中,220 r/min、37 ℃溫度下繼續(xù)培養(yǎng)至適宜的誘導表達濃度(D 600 nm=0.5~0.6)時,加入IPTG使其在整個誘導體系中的濃度為 1.0 mmol/L,37 ℃溫度下繼續(xù)培養(yǎng)4 h,間隔1 h取樣。各個時間段獲得的菌液樣品以8 000 g/min離心5 min,棄去上清液。以菌體沉淀濕質(zhì)量計算,按照30 μL/mg的比例用PBS重懸菌體沉淀。通過SDS-PAGE方法檢測重組蛋白GST-VP2和 GST-VP3 表達情況。
1.8 重組蛋白GST-VP2和GST-VP3的純化及鑒定
按照文獻[11]所述方法分別純化重組蛋白 GST-VP2 和GST-VP3,Bradford法測定蛋白濃度[12]。純化的GST-VP2和GST-VP3轉(zhuǎn)印到硝酸纖維素膜上。將含有轉(zhuǎn)印蛋白的膜片置于5%脫脂乳溶液中,于4 ℃溫度下封閉過夜。37 ℃溫度下置于PBS(1 ∶100)稀釋的HRP標記抗GST-tag單克隆抗體溶液中孵育2 h,PBST溶液洗滌3 次后以4-CN作為酶促反應(yīng)底物進行顯色。
1.9 重組蛋白GST-VP2、GST-VP3的免疫反應(yīng)性
按照“1.8”節(jié)中的操作方法對重組蛋白GST-VP2和GST-VP3進行轉(zhuǎn)印和封閉。封閉后的含有轉(zhuǎn)印蛋白的硝酸纖維素膜在37 ℃溫度下依次置于PBS稀釋(1 ∶200)的MDPV陽性血清中作用2 h、PBS稀釋(1 ∶1 000)的HRP-兔抗鴨IgY IgG(H+L)中作用1 h,PBST溶液洗滌3 次后以4-CN作為酶促反應(yīng)底物進行顯色。
1.10 Dot-ELISA比較重組蛋白GST-VP2和 GST-VP3的免疫反應(yīng)性
將GST-VP2和GST-VP3分別以1 000、100、10、1 ng/點的包被量直接點于硝酸纖維素膜上,一抗使用PBS稀釋(1 ∶200)MDPV陽性血清,酶標二抗使用PBS稀釋(1 ∶1 000)的HRP-兔抗鴨IgY IgG(H+L),具體操作步驟參照文獻[13]進行。
2 結(jié)果與分析
2.1 MDPV YL08株VP2、VP3基因的PCR擴增
通過PCR擴增,分別亞克隆獲得了與預(yù)期大小符合的1 870 bp(VP2)和1 610 bp(VP3)的DNA片段,PCR的瓊脂糖凝膠電泳檢測結(jié)果見圖1。
2.2 重組載體pGEX-6p-VP2、pGEX-6p-VP3的酶切鑒定
酶切鑒定結(jié)果表明,pGEX-6p-VP2經(jīng)XhoⅠ酶切得到約6 800 bp的條帶(表達載體pGEX-6p-1和VP2基因片段大小之和),經(jīng)BamHⅠ和XhoⅠ酶切得到約4 900 bp載體條帶和1 900 bp的VP2基因片段條帶;單酶切pGEX-6p-VP3得到約6 500 bp的條帶(表達載體pGEX-6p-1和VP3基因片段大小之和)、雙酶切pGEX-6p-VP3得到約4 900 bp的載體條帶和1 600 bp的VP3基因片段。由圖2可知,上述酶切產(chǎn)物瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果與預(yù)期相符。測序結(jié)果表明,VP2、VP3基因已正確插入至原核表達載體pGEX-6p-1中。
2.3 重組蛋白GST-VP2、GST-VP3的表達
SDS-PAGE結(jié)果,由圖3可知,IPTG誘導后,pGEX-6p-VP2/Rosetta(DE3)和pGEX-6p-VP3/Rosetta(DE3)可分別表達出符合預(yù)期大小的91 ku和86 ku的目的蛋白條帶(白色箭頭所示)。
2.4 重組蛋白GST-VP2、GST-VP3的純化及鑒定
由GST-VP2和GST-VP3純化結(jié)果(圖4),Bradford法檢測GST-VP2和GST-VP3的濃度分別為0.77、0.63 mg/mL。GST-VP2和GST-VP3可與HRP標記抗GST-tag單克隆抗體特異性結(jié)合,說明獲得的2種蛋白為融合于GST標簽的重組蛋白。
2.5 重組蛋白GST-VP2、GST-VP3的免疫反應(yīng)性
由Western blot結(jié)果(圖5)可知,GST不與MDPV感染番鴨血清結(jié)合,硝酸纖維素膜對應(yīng)位置無代表陽性反應(yīng)的深色條帶;重組蛋白GST-VP2、GST-VP3可與MDPV陽性血清特異性結(jié)合,硝酸纖維素膜對應(yīng)位置上顯示出明顯深色條帶,免疫反應(yīng)性良好。
2.6 Dot-ELISA比較重組蛋白GST-VP2和 GST-VP3的免疫反應(yīng)性
重組蛋白GST-VP2和GST-VP3在抗原包被量為1 000、100、10 ng/點時,均可與MDPV陽性血清發(fā)生特異性的結(jié)合,形成清晰的陽性反應(yīng)斑點;抗原包被量在1 ng/點時,GST-VP3幾乎無可見斑點,GST-VP2仍可見陽性反應(yīng)斑點(圖6) ,表明重組蛋白GST-VP2的免疫反應(yīng)性強于GST-VP3。
3 討論與結(jié)論
MDPV YL08株為2008年筆者所在實驗室分離鑒定的1株新型MPDV,重組分析表明其可能起源于不同的MDPV之間的重組[14]。這些新型重組毒株的出現(xiàn),提示我們在臨床上應(yīng)持續(xù)監(jiān)測、探索番鴨細小病毒病的流行病學及臨床進化。Wang等通過原核系統(tǒng)表達獲得了MDPV VP1蛋白氨基端的含有198個氨基酸的重組蛋白,并以此重組蛋白作為檢測抗原通過Western blot檢測了臨床血清樣本,檢測結(jié)果表明,能與該重組蛋白特異性結(jié)合的抗體最早出現(xiàn)于番鴨感染MDPV之后的第6周[15]。據(jù)此認為,基于VP蛋白的診斷抗原可用于檢測MDPV晚期感染。通過桿狀病毒/昆蟲細胞表達的MDPV VP2和VP3蛋白亦具有良好的抗原性,可作為診斷抗原[16]。真核表達系統(tǒng)表達的蛋白相較于原核表達系統(tǒng)表達的蛋白具有更為完善的糖基化等修飾過程,但表達試驗操作步驟復(fù)雜、成本較高,如果原核表達的蛋白就能滿足免疫反應(yīng)性等要求,采用原核表達系統(tǒng)表達目的蛋白更具有時間成本和經(jīng)濟成本優(yōu)勢。Dot-ELISA分析中,重組蛋白GST-VP2的免疫反應(yīng)性強于GST-VP3,這可能是因為VP2蛋白比VP3蛋白的分子量更大,理論上含有更多的抗原表位。本研究獲得了原核表達的抗原性良好的MDPV 重組VP2、VP3蛋白,可為MDPV病毒蛋白功能研究奠定一定的物質(zhì)基礎(chǔ)。B34FDA31-1A06-492A-ACC5-3C31F209EC5F
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