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      一種基于細胞測定維生素K環(huán)氧化物還原酶活性的方法

      2022-06-22 02:30:48徐亞奇王一伊李飛邱穩(wěn)輝沈滟沈國民
      關(guān)鍵詞:華法林精密度乙腈

      徐亞奇,王一伊,李飛,邱穩(wěn)輝,沈滟,b,沈國民,b

      (河南科技大學 a.基礎(chǔ)醫(yī)學院;b.河南省血栓與止血國際聯(lián)合實驗室,河南 洛陽 471023)

      維生素K環(huán)氧化物還原酶(vitamin K epoxide reductase,VKOR)是位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的整合膜蛋白,是維生素K循環(huán)中的限速酶,在血液凝集中發(fā)揮重要作用[1-2].在維生素K循環(huán)中,VKOR先后把維生素K環(huán)氧化物(vitamin K epoxide,VKO)轉(zhuǎn)化為維生素K(vitamin K,VK)以及VK轉(zhuǎn)化為二氫維生素K(vitamin K hydroquinone,VKH2)[3].VKH2作為輔因子參與γ-谷氨酰羧化酶(γ-glutamyl carboxylase,GGCX)對維生素K依賴性凝血因子進行γ羧基化修飾[4],這種翻譯后修飾是維生素K依賴性凝血因子發(fā)揮生理功能的必要條件[5].VKOR是臨床常用抗凝藥華法林的特異性靶點[6].華法林通過抑制VKOR的活性,使VKO不能轉(zhuǎn)化為VK和VKH2,從而阻斷了維生素K循環(huán),進而抑制維生素K依賴性凝血因子的γ羧基化修飾,發(fā)揮抗凝作用.在臨床應(yīng)用中,華法林存在個體用藥量差異大和華法林耐受等問題[7-8],因此,開發(fā)克服華法林耐受的新型抗凝藥具有重要應(yīng)用價值和廣泛應(yīng)用前景.

      為了鑒定化合物特異靶向抑制VKOR,需要利用VKOR活性實驗進行測定.目前,VKOR活性實驗方法有微粒體法[1-2]和報告基因法[9],其中微粒體法可以直接測定VKOR活性,但步驟較為繁瑣.報告基因法雖然方便快捷,由于是間接測定VKOR活性,所以只能測定已知靶向VKOR化合物的抑制作用,而不能鑒定抑制VKOR的新型化合物.因此有必要建立一種方便快捷,且直接測定VKOR活性的方法.本研究利用高效液相色譜法建立了一種基于細胞測定VKOR活性的方法,該方法方便快捷,可用于鑒定靶向抑制VKOR的化合物.

      1 材料與方法

      1.1 材料

      GGCX基因敲除細胞系293-GGCX-knockout為本實驗室構(gòu)建[10].DMEM培養(yǎng)基購自Hyclone公司,胎牛血清購自ABW公司,青霉素-鏈霉素溶液、胰蛋白酶溶液、TritonX-100購自北京索萊寶科技有限公司,色譜純乙腈、正己烷和異丙醇購自天津科密歐化學試劑有限公司,維生素E醋酸酯(vitamin E acetate,VE)購自BBI公司,華法林、維生素K1(VK)、維生素K1-2,3-環(huán)氧化物(VKO)購自Sigma公司.

      1.2 方法

      1.2.1HPLC檢測VK和VKO的條件

      用高效液相色譜分析儀分析從細胞中萃取的維生素K,色譜柱為Eclipse XDB-C18(4.6 mm×150 mm,5.0 μm),流動相為乙腈-異丙醇(體積比為92.5∶7.5),流速1.2 mL/min,檢測波長248 nm,柱溫40℃,進樣量30 μL,進樣后洗脫時間為25 min.

      1.2.2標準曲線樣品、測試樣品和內(nèi)標樣品的配制

      首先配制500 μmol/L的VK溶液和50 μmol/L的VKO溶液.按倍比稀釋法,用乙腈分別配制VK和VKO的標準工作液.VK標準工作液的濃度分別為500.00,250.00,125.00,62.50,31.20,15.60,7.80,3.90,1.96,0.98 μmol/L.VKO標準工作液的濃度分別為50.000,25.000,12.500,6.250,3.120,1.560,0.780,0.390,0.196,0.098 μmol/L.空白對照為乙腈溶液,用乙腈配制不同濃度的測試樣品.維生素E醋酸酯為制備細胞樣品的內(nèi)標物,在萃取VK和VKO的過程中,用正己烷配制含維生素E醋酸酯的萃取試劑.

      1.2.3細胞培養(yǎng)以及測定細胞內(nèi)VKOR活性的預(yù)處理

      293-GGCX-knockout細胞在體積分數(shù)為10%胎牛血清的DMEM完全培養(yǎng)基中培養(yǎng).為了測定293-GGCX-knockout細胞的VKOR活性,把細胞鋪至10 cm皿中,待細胞長至90%覆蓋率時,加VKO至終濃度為10 μmol/L,繼續(xù)培養(yǎng)4~6 h后收集細胞,萃取細胞內(nèi)VK和VKO.對于華法林處理組,在加入VKO的同時,加入華法林,終濃度為10 μmol/L.

      1.2.4VK和VKO的萃取與重懸

      細胞處理后,棄培養(yǎng)液上清,收集細胞,用PBS洗3次,后收集細胞沉淀;加入1 mL細胞裂解液(50 mmol/L Tris-HCL pH7.5,150 mmol/L NaCL,體積分數(shù)1% TritonX-100),渦旋使細胞充分裂解,置于冰上20 min(期間再渦旋1次);向離心管中加入500 μL異丙醇,渦旋混勻30 s,再加入500 μL含維生素E醋酸酯(濃度為1 mmol/L)的正己烷,渦旋混勻30 s,封口膜封閉離心管,室溫放置30 min(每隔10 min渦旋1次);2 000 r/min水平離心10 min,輕輕取出離心管(切勿震蕩)置于管架上,此時溶液分為上層有機相和下層水相;吸取450 μL上層有機相于2 mL的棕色進樣瓶中,將瓶開口避光室溫放置使有機相自然揮發(fā)晾干(或氮氣快速吹干).加入100 μL乙腈,使瓶壁及底部殘留的脂溶性物質(zhì)充分溶解,并轉(zhuǎn)移到新的1.5 mL離心管中,13 000 r/min,4 ℃離心10 min,取上清進行HPLC分析.

      2 結(jié) 果

      2.1 方法的專屬性

      分別用乙腈配制不同濃度的含VK,VKO,VE和同時含有VK,VKO和維生素E醋酸酯的樣品溶液,進行色譜分析檢測,依據(jù)文獻選取248 nm為檢測波長[11].VK,VKO和維生素E醋酸酯的保留時間分別約為17.1,11.7和14.3 min(圖1).三者峰形較好,在液相中分離良好,互不干擾.

      2.2 標準曲線和定量限

      用HPLC分別分析VK和VKO的標準品,以標準品濃度為橫坐標,對應(yīng)的峰面積為縱坐標進行線性回歸分析,得直線回歸方程,即為標準曲線(圖2).結(jié)果表明,VK在0.97~500.00 μmol/L的濃度范圍內(nèi),其濃度與峰面積線性關(guān)系良好,回歸方程為:Y=24.804X+19.54(圖2(a),R2=0.999 9).VKO在0.097~50.000 μmol/L的濃度范圍內(nèi),濃度與峰面積具有良好線性關(guān)系,回歸方程為:Y=54.9X+6.05(圖2(b),R2=0.999 8).因此,本研究中VK的定量限為0.97~500.00 μmol/L,VKO的定量限為0.097~50.000 μmol/L.

      2.3 精密度和穩(wěn)定性

      為了檢測方法的精密度和回收率,分別配制低、中、高(62.5,125.0,375.0 μmol/L)3種濃度的VK質(zhì)控樣品和低、中、高(6.25,12.5,37.5 μmol/L)3種濃度的VKO質(zhì)控樣品.將上述質(zhì)控樣品置于-20 ℃冰箱中保存,分別在第1、2、3 d進行色譜分析,每個質(zhì)控樣品每天測定5次,依據(jù)上述標準曲線,分析日內(nèi)精密度、日間精密度和回收率(表1).結(jié)果顯示各濃度VK的日內(nèi)精密度為0.1%~1.2%,日間精密度為0.2%~1.6%,回收率為94.0%~98.9%;各濃度VKO的日內(nèi)精密度為0.30%~1.70%,日間精密度為0.9%~3.2%,回收率為94.3%~103.2%,均符合要求(表1).

      表1 VK和VKO的精密度和回收率結(jié)果

      2.4 GGCX基因敲除細胞中測定VKOR活性

      收集不同處理組的GGCX基因敲除細胞,按1.2.4方法萃取VK和VKO,在萃取過程中加入維生素E醋酸酯為內(nèi)標,用于分析不同樣品在萃取過程中的誤差.結(jié)果表明,在未處理組,可以檢測到特異的維生素E醋酸酯的峰,且峰值與VKO處理組相似,但沒有檢測到VK和VKO的特異峰(圖3(a)),說明細胞內(nèi)源的VK和VKO極少,檢測不到,因此用該細胞測定VKOR活性時,內(nèi)源的VK和VKO對測定VKOR活性的影響可以忽略.在VKO處理組,可以檢測到VK和VKO的峰,說明細胞吸收VKO后,在VKOR的催化下部分VKO被還原為K(圖3(b));依據(jù)峰面積和標準曲線分別計算出VK和VKO的濃度,VKO的轉(zhuǎn)化率為CVK/(CVK+CVKO),可計算出VKO的轉(zhuǎn)化率約為35.5%.在VKO與華法林共處理組(圖3(c)),由于華法林特異抑制VKOR活性,導致VKO不能被VKOR還原為K,所以在色譜圖上只檢測到VKO,而沒有檢測到VK(圖3(c)),因此VKO的轉(zhuǎn)化率為0.

      3 討 論

      VKOR作為開發(fā)抗凝藥的重要靶點,其活性測定對鑒定新型VKOR抑制劑具有重要的應(yīng)用價值[12],但由于該蛋白是一種整合膜蛋白,其活性測定方法較為有限.目前,測定VKOR活性的常用方法為基于報告基因的方法,是一種間接測定VKOR活性的方法,不能用于鑒定靶向抑制VKOR的新型抑制劑,因為該方法還可以分析維生素K循環(huán)中GGCX的活性[12].本研究建立了一種基于HPLC檢測VK和VKO的方法,該方法簡便快速,準確性高,重復性好,且各檢測物色譜峰分離良好.在流動相優(yōu)化過程中,乙腈和異丙醇的比例對峰形和出峰時間很重要,減少異丙醇比例,各檢測物的出峰時間將延長,且峰形可能為非對稱單峰.為了兼顧各檢測物的分離效果和縮短每個樣品的檢測時間,流動相乙腈和異丙醇的體積比例為92.5∶7.5.另一方面,由于維生素K以3種形式在細胞內(nèi)循環(huán),在測定VKOR活性中,為使VKOR還原的VK不被GGCX轉(zhuǎn)化為KO,本研究選擇在GGCX基因敲除的細胞中測定VKOR活性,可以排除細胞中GGCX活性對VKOR活性測定的干擾.在從細胞中萃取VK和VKO的過程中,為了分析萃取操作過程對結(jié)果的影響,實驗選擇維生素E醋酸酯為內(nèi)標,可分析操作過程對結(jié)果的影響[12].綜上,本研究通過建立檢測VK和VKO的方法,利用GGCX基因敲除的細胞直接測定VKOR活性,將為靶向VKOR抑制劑的鑒定和新型抗凝藥的研發(fā)提供技術(shù)支持.

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