郭春艷 劉楊 封青 梁導(dǎo)艷 孫晶瑩 李慧瑾 趙向絨 李研 趙彭花 胡軍
710068 西安,陜西省人民醫(yī)院(郭春艷、劉楊、封青、梁導(dǎo)艷、孫晶瑩、趙向絨、李研、趙彭花、胡軍); 710068 西安交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院第三附屬醫(yī)院(郭春艷、劉楊、封青、梁導(dǎo)艷、孫晶瑩、趙向絨、李研、趙彭花、胡軍);710021 西安醫(yī)學(xué)院(李慧瑾)
流感大流行對(duì)人類健康危害嚴(yán)重。流感病毒型別多,血凝素(Hemagglutinin, HA)抗原表位變異是造成流感反復(fù)流行的主要因素[1-4]。接種疫苗是預(yù)防流感的主要措施,但傳統(tǒng)思路開發(fā)的疫苗往往滯后于疫情暴發(fā)[5]。研制能夠誘導(dǎo)持久保護(hù)性免疫的通用流感疫苗對(duì)流感預(yù)防具有現(xiàn)實(shí)意義,而HA抗原表位預(yù)測(cè)工作是通用流感疫苗研究的重要基礎(chǔ)之一。目前研究抗原表位的方法主要是計(jì)算機(jī)模擬技術(shù)和單克隆抗體(monoclonal antibody, mAb, 簡(jiǎn)稱單抗)技術(shù)。Igaroshi等[6]采用計(jì)算機(jī)同源建模方法對(duì)2009年H1N1流感病毒HA抗原表位進(jìn)行預(yù)測(cè),并將HA抗原表位分為4個(gè)。應(yīng)用生物信息學(xué)方法預(yù)測(cè)流感病毒HA的抗原表位成了主流,但是缺乏相應(yīng)的實(shí)驗(yàn)室數(shù)據(jù)進(jìn)行佐證[7]。
單抗能識(shí)別并結(jié)合單一的抗原表位,在生命科學(xué)研究領(lǐng)域中得到極為廣泛的應(yīng)用[8]。Rockman等[9]利用與H5N1各毒株具有廣泛交叉反應(yīng)性的單抗識(shí)別HA中和表位,詳細(xì)說明了H5N1流感病毒抗原漂移的機(jī)制。本文以H1N1流感病毒裂解疫苗為免疫原,通過篩選制備3株識(shí)別HA蛋白的單抗,同時(shí)以單抗作為研究工具,從抗體相互阻斷試驗(yàn)著手,并以計(jì)算機(jī)模擬方法對(duì)其驗(yàn)證,深入研究HA的抗原表位,其結(jié)果完善并補(bǔ)充了現(xiàn)有抗原表位預(yù)測(cè)方法,同時(shí)為闡明流感病毒免疫機(jī)制提供研究思路。
1.1主要試劑甲型H1N1流感病毒裂解疫苗(國(guó)藥準(zhǔn)字S20090015)購(gòu)自華蘭生物疫苗有限公司;RNA提取試劑盒(DP419)、cDNA第一鏈合成試劑盒(KR103)購(gòu)自天根生化科技(北京)有限公司;DNA聚合酶、pMD19-T載體、DNA Marker為TaKaRa(日本)公司產(chǎn)品;SBA ClonotypingTMSystem/HRP單抗亞類鑒定試劑盒(5300-05)購(gòu)自SouthernBiotech公司。
1.2單抗的制備和鑒定首次免疫:弗氏完全佐劑與流感裂解疫苗乳化后,進(jìn)行皮下免疫,20~25μg/只;二次免疫:應(yīng)用弗氏不完全佐劑,同首次免疫劑量和方法;加強(qiáng)免疫:融合前3 d,只用流感裂解抗原腹腔追加免疫。采用間接ELISA方法、有限稀釋法進(jìn)行3~4次亞克隆,篩選分泌抗體的陽(yáng)性細(xì)胞株[10];BALB/c小鼠體內(nèi)注入液體石蠟,7 d后腹腔注入篩選出的陽(yáng)性雜交瘤細(xì)胞株制備腹水[11];然后采用辛酸-硫酸銨方法純化腹水[12]。采用SBA ClonotypingTMSystem/HRP單抗亞類鑒定試劑盒測(cè)定,具體方法見說明書。
1.3單抗識(shí)別抗原位點(diǎn)分析用改良的過碘酸鈉法將各株純化的單抗標(biāo)記HRP,間接ELISA方法測(cè)定酶標(biāo)單抗的工作濃度(當(dāng)待測(cè)單抗與抗原反應(yīng)的OD450 nm值出現(xiàn)下降前的一個(gè)稀釋度作為該抗體的工作濃度)。H1N1抗原包被96孔ELISA檢測(cè)板,濃度為2 μg/ml;分別用過飽和的單抗與之反應(yīng)進(jìn)行封閉,150 μl/孔,37 ℃孵育1 h,常規(guī)洗滌;然后加入某一工作濃度的HRP標(biāo)記單抗,100 μl/孔,以SP2/0作為陰性對(duì)照,37 ℃反應(yīng)1 h后洗滌;TMB顯色后2 mol/L濃硫酸終止反應(yīng),酶標(biāo)儀檢測(cè)OD450 nm值。根據(jù)(對(duì)照組-實(shí)驗(yàn)組)/對(duì)照組判定抑制率(IR)。其中IR小于或等于0.4為標(biāo)記抗體和封閉抗體識(shí)別不相同的位點(diǎn);IR大于或等于0.8為兩株抗體識(shí)別的表位高度相關(guān)或一致;IR在0.4~0.8范圍內(nèi)代表識(shí)別的位點(diǎn)有相關(guān)性[13]。
1.4克隆3株單抗的輕鏈和重鏈可變區(qū)基因收集3株分泌抗H1N1流感病毒HA蛋白單抗的雜交瘤細(xì)胞株,提取RNA,逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA,作為后續(xù)基因克隆的模板。對(duì)NCBI公布的小鼠單抗輕鏈和重鏈的可變區(qū)基因序列進(jìn)行比對(duì)分析,共設(shè)計(jì)27條引物,見表1。用8條引物(7條上游引物+1條下游引物)PCR擴(kuò)增單抗輕鏈可變區(qū)基因,用9條引物(5條上游引物+4條下游引物)PCR擴(kuò)增單抗重鏈可變區(qū)基因。輕鏈基因約320 bp,重鏈基因約350 bp。將PCR擴(kuò)增得到的產(chǎn)物再次進(jìn)行PCR鑒定(輕鏈在擴(kuò)增產(chǎn)物下游設(shè)計(jì)5條引物,重鏈在擴(kuò)增產(chǎn)物上游設(shè)計(jì)5條引物)。輕鏈鑒定陽(yáng)性目的條帶約180 bp,重鏈鑒定為陽(yáng)性的條帶約150 bp。T載體與膠回收的陽(yáng)性片段連接后轉(zhuǎn)化DH5α大腸埃希菌,經(jīng)PCR和酶切鑒定后測(cè)序,將測(cè)序正確的核苷酸序列翻譯為氨基酸序列。
1.5計(jì)算機(jī)模擬分析HA蛋白與單抗結(jié)合的氨基酸位點(diǎn)操作方法如下:① 查找已經(jīng)報(bào)告的抗體與流感病毒HA蛋白結(jié)合的晶體結(jié)構(gòu)模板,并明確二者之間的結(jié)合表位;② 應(yīng)用NCBI blast軟件分別比對(duì)A1-12、H1-13、H1-15與晶體模板中抗體序列的同源性,以同源性最高的晶體模板中的抗體作為目標(biāo)抗體;③ 找出該目標(biāo)抗體與HA晶體結(jié)合的位點(diǎn);④ 將本文所用的HA氨基酸序列與“③”中確定的HA晶體上的位點(diǎn)比對(duì),以此分別確定三株單抗與HA蛋白的結(jié)合表位。
表1 小鼠單抗輕鏈和重鏈可變區(qū)引物
2.1陽(yáng)性單抗的建立及其特性鑒定應(yīng)用現(xiàn)有的單抗融合技術(shù),最終獲得3株穩(wěn)定分泌抗HA的單抗,分別命名為H1-13、H1-15、A1-12。應(yīng)用單抗亞類鑒定試劑盒,測(cè)定3株單抗的型均為κ鏈,H1-15亞類為IgM,H1-13、A1-12亞類均為IgG1。
2.2單抗識(shí)別HA抗原表位分析將這3株單抗作為研究工具來研究抗原表位,具體結(jié)果見表2。H1-15與A1-12、H1-13間的反應(yīng)抑制率均在40%以下,抑制不明顯,抑制率越小,空間位置越遠(yuǎn),表明其識(shí)別的位點(diǎn)可能不同,H1-15單獨(dú)成為第一組。如先加H1-13,再加入HRP標(biāo)記的A1-12,兩者間的抑制率為27%,說明H1-13與A1-12識(shí)別兩個(gè)不同的位點(diǎn)。如先加A1-12再加入HRP標(biāo)記的H1-13,反應(yīng)抑制率在93%,表明其識(shí)別的抗原表位具有相關(guān)性,推測(cè)其針對(duì)比較接近的2個(gè)不同的抗原表位,所以A1-12和H1-13成為第二組。
表2 3株單克隆抗體之間反應(yīng)抑制率(%)
2.3抗體輕、重鏈可變區(qū)氨基酸序列分析分別克隆上述3株抗體細(xì)胞系的輕鏈和重鏈可變區(qū)基因序列VL和VH,見表3。
VH和VL配對(duì)時(shí),各個(gè)高變區(qū)的環(huán)在分子表面形成抗原結(jié)合部位,由于抗體用這些高變環(huán)以表面互補(bǔ)的方式來結(jié)合抗原,一般又將這些高變環(huán)稱為互補(bǔ)決定區(qū)(complementary-determining region, CDR),各個(gè)不同CDR的分別稱作CDR1、CDR2和CDR3。在CDR之間的區(qū)域氨基酸序列的變化則較小,稱為骨架區(qū)(framework region,FR),輕鏈和重鏈各有4個(gè)FR,即FR1,F(xiàn)R2,F(xiàn)R3,F(xiàn)R4。以H1-13為例進(jìn)行說明,應(yīng)用abYsis軟件分析抗體的CDR區(qū)及FR區(qū),具體見圖1。
2.4分析單抗結(jié)合H1N1流感病毒HA上的氨基酸位點(diǎn)用計(jì)算機(jī)模擬方法分別分析3株單抗與2009年和1918年流感病毒結(jié)合的氨基酸位點(diǎn),其中H1-13識(shí)別的位點(diǎn)與A1-12識(shí)別的位點(diǎn)非常相似,可將這兩株抗體分為一組;H1-15識(shí)別的位點(diǎn)與另外兩株截然不同,將其劃為一組,具體預(yù)測(cè)結(jié)果見表4。
近幾年,流感大流行嚴(yán)重威脅人們的生命安全,抗原表位預(yù)測(cè)是研究流感流行、致病及開發(fā)疫苗的重要工具,目前已經(jīng)確定的HA表位非常有限。單克隆抗體技術(shù)在研究抗原表位方面應(yīng)用日益廣泛[14],計(jì)算機(jī)模擬技術(shù)研究抗原表位可以有效簡(jiǎn)化表位研究過程。因此,本研究以本實(shí)驗(yàn)室制備的3株抗H1N1流感病毒單抗為研究對(duì)象,聯(lián)合應(yīng)用ELISA阻斷試驗(yàn)和計(jì)算機(jī)模擬技術(shù),將這3株單抗識(shí)別的抗原表位區(qū)分為2類。兩種方法預(yù)測(cè)的結(jié)果得到了相互印證,也進(jìn)行了相互補(bǔ)充,間接驗(yàn)證了應(yīng)用ELISA阻斷試驗(yàn)預(yù)測(cè)抗體識(shí)別抗原表位方法的可行性[15]。
圖1 H1-13抗體的輕鏈和重鏈可變區(qū)及骨架區(qū)基因序列Fig.1 Analysis of light and heavy chain variable region and skeleton region sequences of H1-13 antibody
單克隆抗體序列A1-12VHVQLVESGPGLVAPSQSLSITCTVSGFSLTDYGVNWVRQPPGKGLEWLGLIWGEGSTDYNSALKSRLSISKDNSKSQVFLKMNSLQTDDTARYYCARDKGINYWYFDVWGQGTTVTVSSVLDIVLTQSPLSLPVSLGDQASMSCRSSQSLVHSNGNTYLHWYLQKPGQSPKLLIHKVSNRFSGVPDRFSGSGSGTDFTLKISRVEAEDLGVYFCSQSTHVPPLTFGAGTKLEH1-13VHVQLEESGGGLVQPGGSLKLSCAASGFTFSSYTMSWVRQTPEKRLEWVAYISNGGGSTYYPDTVKGRFTISRDNAKNTLYLQMSSLKSEDTAMYYCARNYGYGFAYWGQGTTVTVSSVLDIVLTQSPATLSVTPGDSVSLSCRASQSISNNLHWYQQKSHESPRLLIKYASQSISGIPSRFSGSGSGTDFTLSINSVETEDFGMYFCQQSNSWPHTFGGGTKLELH1-15VHVQLQESGPELVKPGASVKISCKASGYSFTAYFMNWVMQSHGKSLEWIGRINPYNGDTFYNQKFKGKATLTVDKSSSTAHMELRSLASEDSAVYYCARHPFYAMDYWGQGTTVTVSSVLDVLMTQAPKFMSTSVGGRVSITCKASQDVNTAVAWYQQKPGQSPKLLIYSASYRYTGVPDRFTGSGSGTDFTFTISSVQAEDLAVYYCQQHYTTPYTFGGGTKLELK
表4 3株mAbs與H1N1流感病毒HA結(jié)合的氨基酸位點(diǎn)結(jié)果
阻斷ELSIA試驗(yàn)中出現(xiàn)了疊加順序不同,抑制率不同。從單抗與1918年流感病毒結(jié)合的位點(diǎn)可見,H1-13識(shí)別的位點(diǎn)位于A1-12識(shí)別的位點(diǎn)內(nèi);從與2009年流感病毒識(shí)別的位點(diǎn)可見,H1-13與A1-12識(shí)別的位點(diǎn)非常接近。原因可能是由于先加入H1-13作為封閉抗體后,導(dǎo)致了抗原表位結(jié)構(gòu)的變構(gòu),Reynolds等[16]提出了變構(gòu)數(shù)據(jù)庫(kù),利用這個(gè)數(shù)據(jù)庫(kù)可以研究、分析變構(gòu)蛋白的結(jié)構(gòu)、功能。Alix等[17]利用PEOPLE程序來預(yù)測(cè)線性抗原表位,發(fā)現(xiàn)抗原與抗體發(fā)生反應(yīng)的時(shí)候,抗原表位的構(gòu)象發(fā)生了變化,因此抗原表位是有柔韌性的。此外,表面極性大、親水性強(qiáng)的氨基酸殘基通常也參與表位構(gòu)成,所以須用其他實(shí)驗(yàn)方法來進(jìn)一步驗(yàn)證。
1918年H1N1流感病毒與2009年H1N1流感病毒在HA抗原表位區(qū)域具有極高的相似度[18],對(duì)這3株單抗進(jìn)行預(yù)測(cè),共預(yù)測(cè)出二種結(jié)合模式,比對(duì)到1918、2009年流行的H1N1的血凝素HA蛋白上,分別預(yù)測(cè)出了結(jié)合位點(diǎn)。發(fā)現(xiàn)3株單抗結(jié)合HA上的氨基酸位點(diǎn)均分布在HA結(jié)構(gòu)的頭部,頭部的抗原決定簇決定了病毒的抗原性,該結(jié)果為后期流感病毒HA表位疫苗的研究提供了實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)。
利益沖突無(wú)
[1]Garten RJ, Davis CT, Russell CA, et al. Antigenic and genetic characteristics of swine-origin 2009 A(H1N1) influenza viruses circulating in humans[J]. Science, 2009, 325(5937):197-201. DOI:10.1126/science.1176225.
[2]Huang SS, Banner D, Fang Y, et al. Comparative analyses of pandemic H1N1 and seasonal H1N1, H3N2, and influenza B infections depict distinct clinical pictures in ferrets[J]. PLoS One, 2011, 6(11):1-14. DOI:10.1371/journal.pone.0027512.
[3]Maines TR, Jayaraman A, Belser JA, et al. Transmission and pathogenesis of swine-origin 2009 A(H1N1) influenza viruses in ferrets and mice[J]. Science, 2009, 325(5939):484-487. DOI:10.1126/science.1177238.
[4]Dreyfus C, Laursen NS, Kwaks T, et al. Highly conserved protective epitopes on influenza B viruses[J]. Science, 2012, 337 (6100):1343-1348. DOI:10.1126/science.1222908.
[5]Subbarao K, Murphy BR, Fauci AS. Development of effective vaccines against pandemic influenza[J]. Immunity, 2006, 24(1): 5-9. DOI:10.1016/j.immuni.2005.12.005.
[6]Igarashi M, Ito K, Yoshida R, et al. Predicting the antigenic structure of the pandemic (H1N1) 2009 influenza virus hemagglutinin[J]. PLoS One, 2010, 5(1):1-5. DOI:10.1371/journal.pone.0008553.
[7]周芳燁, 陳愛敏, 彭海燕, 等. 北半球季節(jié)性甲型流感疫苗株HA抗原表位的分析[J]. 現(xiàn)代預(yù)防醫(yī)學(xué), 2016, 43(1):167-170.
[8]Hajighasemi F, Gharagozlou S, Ghods R, et al. Private idiotypes located on light and heavy chains of human myeloma proteins characterized by monoclone antibodies[J]. Hyhbridoma(Larehmt), 2006, 25(6):329-335. DOI: 10.1089/hyb.2006.25.329.
[9]Rockman S, Camuglia S, Vandenberg K, et al. Reverse engineering the antigenic architecture of the haemagglutinin from influenza H5N1 clade1 and 2.2 viruses with fine epitope mapping using monoclonal antibodies[J]. Mol Immunol, 2013, 53(4):435-442. DOI:10.1016/j.molimm.2012.10.001.
[10]Naundorf S, Preithner S, Mayer P, et al. In vitro and in vivo activity of MT201, a fully human monoclonal antibody for pancarcinoma treatment[J]. Int J Cancer, 2002, 100(1):101-110. DOI: 10.1002/ijc.10443.
[11]Walls HH, Harmon MW, Slagle JJ, et al. Characterization and evaluation of monoclonal antibodies developed for typing influenza A and influenza B viruses[J]. J Clin Microbial, 1986, 23(2):240-245.
[12]Shibaguchi H, Kuroki M, Badran A, et al. Cloning and sequencing of variable region cDNA of a novel human monoclonal antibody to carcinoembryonic antigen, and generation of a single chain variable fragmented antibody[J]. Anticancer Res, 2004, 24 (5C):3355-3360.
[13]Jens Wrammert, Dimitrios Koutsonanos, Gui-Mei Li, et al. Broadly cross-reactive antibodies dominate the human B cell response against 2009 pandemic H1N1 influenza virus infection[J]. J Exp Med, 2010, 208(1): 181-193. DOI:10.1084/jem.20101352.
[14]Paul SS, Mok CK, Mak TM, et al. A cross-clade H5N1 influenza A virus neutralizing monoclonal antibody binds to a novel epitope within the vestigial esterase domain of hemagglutinin[J]. Antiviral Res, 2017, 144: 299-310. DOI:10.1016/j.antiviral.2017.06.012.
[15]李慧瑾, 郭春艷, 趙彭花, 等. 運(yùn)用單克隆抗體分析流感病毒H1亞型HA蛋白的表位[J]. 西安交通大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版), 2012, 33(3):291-295. DOI:10.3969/j.issn.1671-8259.2012.03.007.
[16]Reynolds KA, McLaughlin RN, Ranganathan R. Hot spots for allosteric regulation on protein surfaces[J]. Cell, 2011, 147(7): 1564-1575. DOI:10.1016/j.cell.2011.10.049.
[17]Alix AJ. Predictive estimation of protein linear epitopes by using the program PEOPLE[J]. Vaccine,1999, 18(3-4):311-314.
[18]Xu R, Ekiert DC, Krause JC, et al. Structural basis of preexisting immunity to the 2009 H1N1 pandemic influenza virus[J]. Science, 2010, 328(5976):357-360. DOI: 10.1126/science.1186430.