鐘 鑫, 賈洪麗, 侯俊青, 王育文, 時 颯, 李志韜
(哈爾濱醫(yī)科大學(xué)1病理生理教研室,黑龍江生物醫(yī)藥工程重點實驗室,2附屬第二醫(yī)院檢驗科,黑龍江哈爾濱150081)
NO影響心臟功能的作用已經(jīng)被廣泛報導(dǎo),而作為它的去電子形式 -硝酰基(nitroxyl,HNO)對心臟功能的影響最近才被關(guān)注[1]。HNO在正常及衰竭[2,3]心臟都起到正性、非負荷依賴性肌力作用。研究表明HNO具備β受體激動劑的作用且不被β受體阻滯劑所阻斷。NO或硝酸鹽所產(chǎn)生的HNO在體內(nèi)對心血管活動作用非常明顯,因為后者在靜息心肌上只表現(xiàn)適度的正性肌力效應(yīng)[4]。與NO不同的是,如果細胞內(nèi)還原當(dāng)量的含量增加,HNO活性則明顯減低甚至消失[10],該結(jié)果支持了HNO基本化學(xué)作用中以硫基為靶點的論斷[1]。
HNO生理作用表明其可以作為心衰的一種新型治療手段,同時增加了對心衰細胞和分子機制進一步的理解。HNO能夠刺激鈣離子從心肌及骨骼肌[5]的ryanodine受體 (RyR)釋放。在心肌細胞,最初研究資料表明此作用是不依賴cGMP及cAMP的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)方式[6]。除對鈣離子影響之外,HNO也可能與原肌球蛋白(tropomyosin,Tm)相互作用改變其收縮反應(yīng)。NO及其相關(guān)物質(zhì)如過亞硝酸鹽[7,8]則以cGMP依賴的方式減低肌原纖維對鈣離子的反應(yīng)能力。HNO在可調(diào)節(jié)性細肌絲和/或肌原纖維蛋白上可能作用于巰基靶點改變張力的產(chǎn)生。
以往研究使用HNO供體,Angeli’s salt(AS)。AS不是純HNO供體,而是同時釋放HNO和亞硝酸鹽[9]。亞硝酸鹽不刺激心肌產(chǎn)生收縮性反應(yīng),在體內(nèi)主要導(dǎo)致血管舒張[3]。乙酸1-亞硝基環(huán)已酯(1-nitrosocyclohexyl acetate,NCA)不釋放亞硝酸鹽,是較純的HNO供體,其發(fā)展將對HNO生化作用及機制進行更有效的分析。目前的研究用來檢測NCA是否改變了肌原纖維對鈣離子的反應(yīng)能力。應(yīng)用完整的大鼠梳狀肌,觀察了HNO供體NCA對心臟興奮 -收縮偶聯(lián)的影響。我們發(fā)現(xiàn)NCA以劑量依賴的方式增加[Ca2+]i水平及心肌收縮力,同時增強肌原纖維對鈣離子的反應(yīng)性。NCA效應(yīng)被還原劑二硫蘇糖醇 (dithiothreitol,DTT)阻斷,支持硫醇鹽在此過程中發(fā)揮靶點角色的論斷。
20只Sprague-Dawley大鼠,體重250-300g,由哈爾濱醫(yī)科大學(xué)實驗動物中心提供;NCA由美國約翰霍普金斯大學(xué)高衛(wèi)東實驗室贈予。
大鼠腹腔注射戊巴比妥 (100 mg/kg)麻醉,沿胸骨中部切開暴露心臟,迅速摘除心臟并將其放置在標(biāo)本盤中。室溫下(21-22℃)進行主動脈插管并用含有95%O2及5%CO2的解剖Krebs-Henseleit(K-H)液逆行灌流。K-H液組成(mmol/L):NaCl 120,NaHCO320,KCl 5,MgCl21.2,葡萄糖10,CaCl20.5 及2,3 - 丁二酮 20,pH 7.35 - 7.45。取自于右心室的梳狀肌置于張力換能器和刺激電極之間。然后,對其進行K-H液表面灌流(10 mL/min),同時給予頻率為0.5 Hz的刺激。解剖顯微鏡下 (×40,分辨率10 μm)標(biāo)準(zhǔn)刻度線測量梳狀肌的尺寸。
應(yīng)用張力換能系統(tǒng) (KG7,Scientific Instruments GmbH)對收縮力進行測量并以mN/mm2橫斷面積來表示。肌小節(jié)長度通過激光衍射法[10]進行測量。通過網(wǎng)狀二極管線陣系統(tǒng) (RC0100-RG512,EG&G Reticon)檢測肌肉中部衍射光線。衍射的初級光強度被整合,應(yīng)用定制的肌小節(jié)長度檢測系統(tǒng)(University of Calgary)測出光強度分布中值,從而決定肌小節(jié)長度。實驗過程中靜息肌小節(jié)長度設(shè)定為2.2 -2.3 μm。
應(yīng)用Fura-2游離酸的形式對[Ca2+]i進行測定[11]。Fura-2鉀鹽采用離子透入法用玻璃電極顯微注射入一個細胞,經(jīng)縫隙連接擴散至整個肌組織。微電極頂端 (直徑0.2 μm)充滿Fura-2鹽溶液 (1 mmol/L),其余部分用150 mmol/L KCl充滿。在靜息肌組織中成功用微電極刺入表面細胞后,不間斷傳送5-10 nA超極化電流15 min。在一些肌組織不同部位可以重復(fù)注射 (最多3-4次),每個部位注射持續(xù)時間 <10 min以達到較好的信噪比。如前所述:此負載不影響張力發(fā)展[11]。Fura-2回波熒光在380 nm及340 nm激發(fā)并測定,在510 nm用光電倍增管 (R1527,Hamamatsu)收集熒光并進行數(shù)字化分析。通過下列方程得出[Ca2+]i(減去自發(fā)熒光):[Ca2+]i=K’d(R - Rmin)/(Rmax-R)。R是實測的熒光率 (340/380),K’d是表觀解離常數(shù),Rmax是[Ca2+]i飽和時340 nm/380 nm 比率,Rmin是[Ca2+]i為 0時 340 nm/380 nm 比率。K’d,Rmax及 Rmin的值由前述體內(nèi)校準(zhǔn)法[11]所決定。
Ryanodine(1.0 μmol/L)應(yīng)用于穩(wěn)態(tài)激活作用。暴露于 ryanodine 15 min后,在多種[Ca2+]o(0.5-20.0 mmol/L)下以10 Hz頻率刺激肌組織,不同水平的強直被暫時(4-8 s)誘導(dǎo)出現(xiàn)。1%Txiton X-100應(yīng)用于梳狀肌去肌膜反應(yīng)。心肌組織被1%Txiton X -100作用10 min后,膜性結(jié)構(gòu)破壞,僅保留蛋白質(zhì)骨架結(jié)構(gòu)進行實驗。實驗過程均在室溫下(20-22℃)進行。
取右心室心肌組織蛋白提取液,室溫下SDSPAGE電泳,4℃轉(zhuǎn)膜,5%脫脂奶粉室溫封閉1 h,常規(guī)洗脫,相應(yīng)Ⅰ抗 (1∶3 000稀釋)和Ⅱ抗 (1∶2 000稀釋)孵育,反復(fù)洗膜后堿性磷酸酶試劑顯色。Quality圖像分析系統(tǒng)對免疫印記結(jié)果進行定量分析。
圖1可見,給予NCA出現(xiàn)典型的收縮力及相應(yīng)的[Ca2+]i變化。收縮力的增強不是由于K -H緩沖液的堿化所致,因為檢測緩沖液pH不發(fā)生變化。圖1顯示收縮力增強而舒張力變化不明顯,同時,收縮期[Ca2+]i增加而舒張期[Ca2+]i不變。兩者均增加的情況下,收縮期力的增加比收縮期[Ca2+]i變化更為顯著,該結(jié)果支持NCA增加肌原纖維對鈣離子的敏感性。
Figure 1.Changes of force(B,D)and[Ca2+]itransient(A,C)treated with various concentrations of NCA.A,B:time-course changes;C,D:changes in systolic and diastolic phases.Temperature:22 ℃;sarcomere length=2.2 μm;[Ca2+]o=0.5 mmol/L±s.n=8-9.*P<0.05,**P<0.01 vs before drug.圖1 收縮力與[Ca2+]i的變化
不同頻率條件下 (0.5-3.0 Hz)同對照組相比,NCA處理組始終表現(xiàn)明顯更高的收縮力(P<0.01),而[Ca2+]i變化則無明顯差別 (P >0.05),見圖2。
Figure 2.Changes of force(A)and[Ca2+]itransient(B)at different frequencies(0.5-3.0 Hz)before and after NCA treatment.Experimental temperature was 22℃.Sarcomere length was set at 2.2 μm and[Ca2+]o=0.5 mmol/L.±s.n=9.*P<0.05,**P<0.01 vs control.圖2 收縮力-頻率相互關(guān)系
對照組最大鈣離子活化張力為(90.0±4.2)mN/mm2,達到 50% 活性需要[Ca2+]i(Ca50)為(0.57±0.03)μmol/L。給予NCA后,心肌收縮力峰值增加[(124.0±15.0)mN/mm2,P < 0.05 vs control],達到 50% 活性需要[Ca2+]i明顯降低[(0.39±0.01)μmol/L;P < 0.01 vs control]。給予NCA的心肌組織,其希爾系數(shù)沒有受到影響 (3.94±0.18 vs 4.92 ±0.84,P>0.05)。由此可見,NCA/HNO可以增強最大鈣離子活化張力。給予NCA后,不同細胞外鈣濃度 (0.01 -100 μmol/L)去肌膜心肌組織心肌收縮力峰值增加,Ca50降低[NCA - group,Ca50=0.3 μmol/L,P < 0.01 vs control(1.35 μmol/L);Fmax=(90.1 ± 1.6)mN/mm2,P <0.05 vs control[(85.2 ± 1.2)mN/mm2],見圖3。
Figure 3.Steady-state force-Ca2+relations in intact(A)and skinned(B)muscles.±s.n=9(A)or n=6(B).*P <0.05 vs control.圖3 NCA增加心肌纖維對Ca2+反應(yīng)性
DTT對于基本的收縮力無效;然而,它能阻斷NCA(20 μmol/L)誘導(dǎo)的Ca2+敏感作用。DTT在5-10 min內(nèi)逆轉(zhuǎn)NCA增加收縮力作用,見圖4。在無DTT存在條件下,收縮力將保持其興奮性長達20 min以上。由此可見,DTT可以阻止并逆轉(zhuǎn)NCA對收縮力的作用效果。
Figure 4.DTT(5 mmol/L)not only prevented but also reversed the effect of NCA on force development.±s.n=6.*P< 0.05 vs NCA.圖4 DTT影響NCA增加收縮力的作用
非還原條件下 (無DTT)NCA/HNO使肌原纖維(如Tm)分子發(fā)生交聯(lián),而還原條件則交聯(lián)條帶消失,見圖5。
Figure 5.Western blotting of cardiac non- reducing(A)and reducing(B)tropomyosin(39 kD).A cross- linking band(78 kD)in tropomyosin was seen under non- reducing condition.There was no change in reducing tropomysim.M:marker.10 μg,20 μg and 30 μg:the total protein loading quantity.圖5 NCA在還原條件下對Tm的翻譯后修飾作用
本實驗首次研究了NCA提供的HNO在分離、完整的心肌組織上產(chǎn)生一種直接劑量依賴性的正性變力作用。該作用不僅包括增加了心肌收縮力和[Ca2+]i瞬時電流峰值,而且由于最大[Ca2+]i升高活化了張力,使得這些變化在敏感性上的增長是不對稱的。此反應(yīng)與NO作用效果不同,可被還原劑DTT所阻斷,同時具備較強的氧化還原反應(yīng)敏感性。
NO與HNO僅相差1個電子。然而,HNO被認為能應(yīng)用巰基化合物和高鐵蛋白進行加成反應(yīng)[12]而NO則不能。NO的靶點首先是非氧合細胞溶質(zhì)內(nèi)可溶解性二價鐵鳥苷酸環(huán)化酶,而HNO生物活性的主要靶點則是巰基蛋白質(zhì)或巰基肽[1]。盡管NO cGMP非依賴性收縮效應(yīng)已經(jīng)被證實,但大部分NO對心臟的作用仍與cGMP/PKG激活作用相關(guān)。一項重要的證據(jù)支持cGMP/PKG的激活是NO(及其被氧化的同源物質(zhì))對心臟進行調(diào)節(jié)的主要轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑,借此減低了肌原纖維對Ca2+脫敏后的收縮性[7]。這樣的脫敏作用被認為對加速心肌舒張具有重要意義。該作用可因PKG藥物阻斷或遺傳缺失,或心肌鈣蛋白I在Ser23/24位點磷酸化[13]而被抑制?;钚缘愇镔|(zhì)過亞硝酸鹽也能降低肌原纖維對鈣離子的反應(yīng)性,導(dǎo)致心臟抑制效應(yīng),部分效應(yīng)是由 PKG介導(dǎo)的[8]。
由NCA提供的HNO反應(yīng)則完全不同,這可能由于其與鳥苷酸環(huán)化酶或作為收縮機制的主要靶點半胱氨酸殘基相互作用。研究表明HNO對選取的硫醇鹽(-S·)發(fā)生反應(yīng),對巰基化合物亞群(-SH)也有高反應(yīng)性[1],這些反應(yīng)都證實了HNO具有選擇性和作用可逆性。目前和以往資料表明,收縮作用可迅速用DTT逆轉(zhuǎn)。在分離的家兔心臟肌漿網(wǎng)囊泡[5]或大鼠心肌細胞上[8]研究發(fā)現(xiàn)HNO誘導(dǎo)的肌漿網(wǎng)鈣離子的釋放也可被DTT完全逆轉(zhuǎn)。最近在酵母的一項研究中也顯示了HNO選擇性,不改變細胞內(nèi)巰基化合物前提下,HNO在其活化位點硫醇鹽殘基內(nèi)具有特異性的靶點磷酸甘油醛脫氫酶[14]。我們假設(shè)NCA/HNO可以在肌原纖維和/或調(diào)節(jié)蛋白質(zhì)內(nèi)的半胱氨酸“靶點”上誘發(fā)相似的具有選擇性的化學(xué)修飾,Western blotting證實NCA在非還原條件下使肌原纖維的Tm分子發(fā)生交聯(lián),該作用可能促進橫橋轉(zhuǎn)換率發(fā)生變化,進而增加收縮張力的產(chǎn)生。進一步的研究旨在明確這些變化的分子性質(zhì)和位點。
HNO增加最大Ca2+活化張力機制至今尚不清楚。然而,研究表明僅最大Ca2+活化張力的增加即可導(dǎo)致橫橋的變化。張力發(fā)展依賴于相關(guān)橫橋的數(shù)目及其動力學(xué)特征。橫橋轉(zhuǎn)換率能明顯影響張力 -pCa之間的相互關(guān)系,從而增加與Ca2+活化張力相關(guān)性的比率。HNO誘導(dǎo)的橫橋循環(huán)性的改變是引起改變收縮性的唯一途徑,這與在調(diào)節(jié)蛋白質(zhì)內(nèi)進行變化來調(diào)節(jié)收縮性的機制密切相關(guān)。
我們的研究也證實了在完整心肌組織內(nèi)[Ca2+]i增加是由NCA誘導(dǎo)的。盡管[Ca2+]i的增加與肌原纖維致敏作用的相關(guān)性已經(jīng)被證實,但這種增加可能是在較高NCA劑量條件下成為增強心肌收縮力的基礎(chǔ)。在分離的小鼠肌細胞實驗研究中,HNO可以增加鈣離子的吸收及其從肌漿網(wǎng)的釋放,適當(dāng)增加瞬時電流而不出現(xiàn)舒張期鈣離子的逆轉(zhuǎn)[6]。這可以對目前研究中所觀察的[Ca2+]i的變化進行解釋。這些機制與致敏效應(yīng)一起表明HNO對心臟肌原纖維及肌漿網(wǎng)具有新奇的效應(yīng),可以在缺乏能量供應(yīng)的條件下增加心肌潛在的收縮能力。
總言之,NCA提供的HNO能增強大鼠心肌組織收縮力和細胞內(nèi)鈣瞬變,且前者變化幅度大于后者,這種作用部分由于肌原纖維對鈣離子敏感性的增加所致。該作用對于還原性環(huán)境較敏感。該作用的主要分子靶點可能是Tm半胱氨酸的巰基蛋白質(zhì)。進一步研究需要證實NCA對心力衰竭動物模型心肌收縮力的作用效果,為實現(xiàn)NCA/HNO的臨床應(yīng)用奠定基礎(chǔ)。
[1]Fukuto JM,Bartberger MD,Dutton AS,et al.The physiological chemistry and biologicalactivity ofnitroxyl(HNO):the neglected,misunderstood,and enigmatic nitrogen oxide[J].Chem Res Toxicol,2005,18(5):790–801.
[2]Paolocci N,Saavedra WF,Miranda KM,et al.Nitroxyl anion exerts redox-sensitive positive cardiac inotropy in vivo by calcitonin gene - related peptide signaling[J].Proc Natl Acad Sci USA,2001,98(18):10463–10468.
[3]Paolocci N,Katori T,Champion HC,et al.Positive inotropic and lusitropic effects of HNO/NO-in failing hearts:independence from β - adrenergic signaling[J].Proc Natl Acad Sci USA,2003,100(9):5537–5542.
[4]Preckel B,Kojda G,Schlack W,et al.Inotropic effects of glyceryl trinitrate and spontaneous NO donors in the dog heart[J].Circulation,1997,96(8):2675 –2682.
[5]Cheong E,Tumbev V,Abramson J,et al.Nitroxyl triggers Ca2+release from skeletal and cardiac sarcoplasmic reticulum by oxidizing ryanodine receptors[J].Cell Calcium,2005,37(1):87–96.
[6]Tocchetti CG,Wang W,F(xiàn)roehlich JP,et al.Nitroxyl improves cellular heart function by directly enhancing cardiac sarcoplasmic reticulum Ca2+cycling[J].Circ Res,2007,100(1):96-104.
[7]Layland J,Li JM,Shah AM.Role of cyclic GMP-dependent protein kinase in the contractile response to exogenous nitric oxide in rat cardiac myocytes[J].J Physiol,2002,540(2):457–467.
[8]Brunner F,Wolkart G.Peroxynitrite- induced cardiac depression:role of myofilament desensitization and cGMP pathway[J].Cardiovasc Res,2003,60(2):355 –364.
[9]Miranda KM,Dutton AS,Ridnour LA,et al.Mechanism of aerobic decomposition of Angeli’s salt(sodium trioxodinitrate)at physiological pH[J].J Am Chem Soc,2005,127(2):722–731.
[10]Gao WD,Dai T,Nyhan D.Increased cross-bridge cycling rate in stunned myocardium[J]Am J Physiol Heart Circ Physiol,2006,290(2):H886– H893.
[11]Gao WD,Perez NG,Marban E.Calcium cycling and contractile activation in intact mouse cardiac muscle[J].J Physiol,1998,507(1):175–184.
[12]Miranda KM,Paolocci N,Katori T,et al.A biochemical rationale for the discrete behavior of nitroxyl and nitric oxide in the cardiovascular system[J].Proc Natl Acad Sci USA,2003,100(16):9196–9201.
[13]Bilchick KC,Duncan JG,Ravi R,et al.Heart failureassociated alterations in troponinⅠphosphorylation impair ventricular relaxation-afterload and force-frequency responses and systolic function[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2007,292(1):H318– H325.
[14]Lopez BE,Rodriguez CE,Pribadi M,et al.Inhibition of yeast glycolysis by nitroxyl(HNO):mechanism of HNO toxicity and implications to HNO biology[J].Arch Biochem Biophys,2005,442(1):140–148.