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      靛玉紅對腫瘤血管內(nèi)皮細胞增殖遷移及血管形成的影響

      2017-03-09 18:29:40李卓虹祝朝富安佰平
      云南中醫(yī)中藥雜志 2017年2期
      關(guān)鍵詞:增殖遷移

      李卓虹+祝朝富+安佰平

      摘要:目的 探討靛玉紅(Indirubin)對腫瘤血管內(nèi)皮細胞增殖、遷移、血管形成影響。方法 采用肝癌HepG2細胞上清誘導(dǎo)人臍靜脈內(nèi)皮細胞(human umbilical vein endothelial cells,HUVEC)成為腫瘤血管內(nèi)皮細胞(tumor-derived endothelial cells,Td-EC),通過MTT法、細胞遷徙試驗、血管形成實驗檢測靛玉紅對HUVEC與Td-EC增殖、遷移、血管形成的影響。結(jié)果 靛玉紅在體外對Td-EC有顯著的生長抑制作用,并具有時間和濃度依賴性;一定濃度的靛玉紅能顯著降低Td-EC細胞遷徙活性和抑制血管的形成,而同樣條件下,靛玉紅對HUVEC的抑制作用弱于Td-EC。結(jié)論 靛玉紅在體外可特異地抑制Td-EC增殖、遷移、血管形成。

      關(guān)鍵詞:靛玉紅;腫瘤血管內(nèi)皮細胞;增殖;遷移;血管形成

      中圖分類號:R285.5 文獻標(biāo)志碼:A 文章編號:1007-2349(2017)02-0072-04

      【Abstract】Objective: To investigate the effect of indirubin on the proliferation, migration and angiogenesis of vascular endothelial cells. Methods: Human umbilical vein endothelial cells (HUVEC) were induced to differentiate into tumor-derived endothelial cells (Td-EC) by HepG2 cell supernatant. MTT assay, cell migration assay and angiogenesis test were used to detect the effect of indirubin on the proliferation, migration and angiogenesis of HUVEC and Td-EC. Results: Indirubin had significant growth inhibitory effect on Td-EC in vitro and time and concentration dependence. Indirubin with certain concentration could significantly reduce the migration of Td-EC cells and inhibit the formation of blood vessels. In the similarity condition, the inhibitory effect of indirubin on HUVEC was weaker than that of Td-EC. Conclusion: Indirubin can specifically inhibit the proliferation, migration and angiogenesis of Td-EC in vitro.

      【Key words】indirubin, tumor vascular endothelial cell, proliferation, migration, angiogenesis

      腫瘤的生長、轉(zhuǎn)移依賴于血管生成,血管生成可為腫瘤組織提供充足的營養(yǎng)和氧氣,并帶走其代謝產(chǎn)物,因而抗腫瘤血管生成成為目前理想的抗癌治療策略[1]。靛玉紅是從我國傳統(tǒng)中藥青黛、板藍根、大青葉中提煉而成,已經(jīng)有大量研究表明靛玉紅具有抑制細胞周期[2]、殺傷腫瘤細胞以及抗炎[3]等多種功效。但對靛玉紅抑制腫瘤血管內(nèi)皮細胞生成的機制尚不清楚,本研究中,我們將探討靛玉紅對腫瘤血管內(nèi)皮細胞增殖、遷移、血管形成影響,以期揭示其對腫瘤血管內(nèi)皮細胞生長及相關(guān)功能的影響。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      1.1.1 主要試劑 Trizol(Ambion公司),抗體(Santa公司),胰蛋白酶(HyClone公司),胎牛血清(Invitrogen公司),Matrix基質(zhì)膠(BD公司),人肝癌HepG2細胞(四川大學(xué) 生物醫(yī)學(xué)工程研究室)。

      1.2 方法

      1.2.1 細胞培養(yǎng) 取健康、足月剖宮產(chǎn)胎兒臍帶20-30 cm,以胰酶灌注法分離臍靜脈血管內(nèi)皮細胞,用含20%胎牛血清、10 ng/L VEGF的PRMI1640 培養(yǎng)傳代,流式細胞術(shù)檢測Ⅷ因子相關(guān)抗原以鑒定HUVEC,人肝癌HepG2細胞用含10%胎牛血清的RPMI1640 液培養(yǎng)至70% 匯合時,換成無血清的RPMI1640 液再培養(yǎng)48 h。收集培養(yǎng)上清液,經(jīng)0.22 μm 濾膜過濾后,于-80℃保存?zhèn)溆?。取?代HUVEC,用含體積分?jǐn)?shù)50% HepG2細胞培養(yǎng)上清培養(yǎng),匯合至80%時收集細胞,即為腫瘤血管血管內(nèi)皮細胞(Td-EC),并可培養(yǎng)傳代。

      1.2.2 RT-PCR 檢測 以正常HUVEC 為對照組,提取Td-EC細胞總RNA。根據(jù)TEM1及TEM8 的cDNA 設(shè)計引物,并由成都寶信生物工程技術(shù)有限公司合成。用RT-PCR來檢測TEM1及TEM8 mRNA的表達,總RNA用RevertAid First Strand cDNA試劑盒反轉(zhuǎn)錄合成cDNA鏈。TEM1、TEM8和β-actin引物為:TEM1:5-cattatcccaactgcccagc-3(R)和5-ctgatgggtgaggtctggtt5-(F);TEM8:5-gctgcaccactggaatgaaa-3(R)和5-gtctcctcctggcagaactt5-(F)β-actin:5-cctgcttgctgatccacatc-3(R)和5-cctctatgccaacacagtgc-3(F)用Deam Taq PCR Master Mix(2X)進行PCR。反應(yīng)條件為:95℃,3 min的預(yù)變性;95℃,30 s;68℃,30 s;72℃,1 min;30個循環(huán);延伸72℃,10 min。PCR產(chǎn)物用1.0%瓊脂糖凝膠電泳后,用凝膠電泳成像系統(tǒng)進行觀察并采集圖片。

      1.2.3 細胞增殖能力測定 采用MTT 法檢測細胞增殖能力,取對數(shù)生長期HUVEC、Td-EC細胞,調(diào)整細胞濃度為2×104 cells/mL接種于96孔培養(yǎng)板,200 μL/孔。以0、5、10 μmol/L濃度靛玉紅處理細胞。置37℃、5% CO2 培養(yǎng)箱培養(yǎng),分別在24、48、72 h后,加入MTT(5 mg/mL)20 μl/孔繼續(xù)培養(yǎng)4 h,棄原培養(yǎng)液,加入DMSO 150 μl/孔,室溫輕度振蕩10 min,酶標(biāo)儀檢測490 nm的OD值,實驗重復(fù)3次。

      1.2.4 腫瘤血管內(nèi)皮細胞遷移能力測定 采用劃痕法測定腫瘤血管內(nèi)皮細胞遷移能力。將HUVEC及Td-EC細胞接種于6孔板,以0、5、10 μmol/L濃度靛玉紅處理細胞。待細胞融合后劃痕,48 h后,用導(dǎo)倒置顯微鏡觀察、拍照,測量劃痕距離。

      1.2.5 血管形成實驗 在24孔板中加入matrigel膠(按1:2比例與無血清培養(yǎng)基混合),置37℃凝固后,將HUVEC、Td-EC細胞以1.5×105 cells/mL接種于24孔板中,每4 h觀察1次管腔形成情況,12 h終止培養(yǎng)。繼續(xù)加入5 μmol/L靛玉紅的培養(yǎng)基培養(yǎng)48 h后觀察、計數(shù)。

      1.2.6 體外侵襲能力實驗 細胞侵襲實驗采用Transwell 小室法。Transwell小室的上室膜鋪ECM 凝膠。下室加10% FBS 的培養(yǎng)液500 μl/室,上室接種無血清培養(yǎng)基過夜的HUVEC、Td-EC細胞,1×105cells/孔(200 μl),每組設(shè)3個平行孔,置37℃、5% CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)24 h 后取出小室固定細胞,用上述方法染色計數(shù)遷移細胞數(shù)。

      1.3 統(tǒng)計學(xué)分析 統(tǒng)計分析所有數(shù)據(jù)的統(tǒng)計分析均在SPSS21.0中進行,計量資料用(x±s)表示;各組組間比較采用t檢驗,以P<0.05為有顯著性差異。

      2 結(jié)果

      2.1 HUVEC的鑒定 HUVEC具有純度高、活性好,可在體外培養(yǎng)并可傳代七代以上的特性。培養(yǎng)細胞經(jīng)流式細胞儀檢測細胞表面標(biāo)記(CD31、CD45、CD62、vWF)和對低密度脂蛋白(LDL)的吞噬功能檢測細胞純度[4-5],用碘化丙錠(PI)檢測細胞活性,細胞純度和活性分別達到95%以上。結(jié)果見下表1、圖1。

      2.2 腫瘤血管內(nèi)皮細胞的誘導(dǎo)生成及鑒定 RT-PCR 擴增產(chǎn)物的電泳顯示:從Td-EC 中能擴增出約290 bp 及460 bp 的條帶(圖2),說明HUVEC 經(jīng)HepG2細胞培養(yǎng)上清誘導(dǎo)后,細胞表達TEM1 和TEM8,這是腫瘤血管內(nèi)皮細胞特有的表達抗原,故誘導(dǎo)細胞具備了腫瘤血管內(nèi)皮細胞的特性(見圖2)。

      2.3 靛玉紅對Td-EC細胞增殖的影響 靛玉紅處理24 h 后,HUVEC、Td-EC細胞增殖能力均明顯受到抑制,并與時間及劑量成正相關(guān),與對照組正常HUVEC、Td-EC 細胞相比,差異有顯著性,并具有時間和濃度依賴性(P<0.05);而靛玉紅對HUVEC 細胞增殖能力抑制作用弱于Td-EC,對照組正常Td-EC細胞增殖能力強于HUVEC細胞(見圖3)。

      2.4 靛玉紅對Td-EC細胞遷移能力的影響 靛玉紅處理48 h 后,HUVEC、Td-EC細胞遷移能力均明顯受到抑制,并與劑量成正相關(guān),與對照組正常HUVEC、Td-EC 細胞相比,差異有顯著性,并具有濃度依賴性;靛玉紅對Td-EC細胞遷移能力抑制作用明顯強于HUVEC細胞(見圖4)。

      2.5 靛玉紅對Td-EC細胞血管形成的影響 HUVEC是國內(nèi)外建立體外血管生成模型的常用細胞,利用其在膠原組織上的爬行、融合形成小管樣結(jié)構(gòu)來觀察研究藥物對小管形成的影響是經(jīng)典研究方法[6]。靛玉紅處理前,Td-EC細胞管腔形成能力明顯強于HUVEC(P<0.05),表明Td-EC細胞較正常HUVEC具有更強的血管形成能力。靛玉紅處理后,Td-EC細胞管腔形成能力明顯受到抑制(P<0.05),與HUVEC細胞相比,靛玉紅對Td-EC細胞血管形成能力抑制效果更明顯(P<0.05)(見圖5、表2)。

      2.6 靛玉紅對Td-EC細胞體外侵襲能力的影響 HUVEC在靛玉紅處理前后細胞遷徙數(shù)無顯著性差異(P>0.05);而Td-EC細胞經(jīng)靛玉紅處理后其遷徙數(shù)明顯減少(P<0.05);未經(jīng)靛玉紅處理Td-EC細胞遷徙數(shù)明顯多于HUVEC細胞(P<0.05)。表明Td-EC 細胞較正常內(nèi)皮細胞具有更強的遷徙能力,利于腫瘤的生長,而對正常內(nèi)皮細胞的影響較小。(見圖6)

      3 結(jié)論

      靛玉紅為吲哚類化合物,存在于靛藍、多種腹足綱軟體動物、健康和患病人群的尿液,及各種野生型或重組細菌中[7],靛玉紅最早被我國用于臨床治療慢性粒細胞白血病。近些年隨著研究的深入,靛玉紅及其衍生物不斷地被發(fā)掘,在抗炎、抗腫瘤、增強免疫[3,8,9]等方面均有顯著的療效。血管內(nèi)皮細胞是指襯于心、血管和淋巴管內(nèi)表面的單層扁平上皮,它形成血管的內(nèi)壁。血管內(nèi)皮細胞具有吞噬異物、細菌、壞死和衰老組織的作用,還參與集體免疫活動。感染、炎癥情況下,內(nèi)皮細胞通過活化、釋放細胞因子、促血小板凝集等參與病理變化,其自身還可以發(fā)生凋亡或通過增殖而自我修復(fù)。在腫瘤發(fā)生發(fā)展過程中,需伴隨血管內(nèi)皮細胞的異常增殖和血管新生[10]。

      本研究證明靛玉紅在體外對Td-EC在增殖、遷移、血管形成以及侵襲能力均具有顯著的生長抑制作用,并具有時間和濃度依賴性;一定濃度的靛玉紅能顯著降低Td-EC細胞遷徙活性和抑制血管的形成,而同樣條件下,靛玉紅對HUVEC的抑制作用弱于Td-EC,說明相對正常內(nèi)皮細胞靛玉紅影響更加明顯。由于體外腫瘤血管內(nèi)皮細胞模型仍存在一定局限性,靛玉紅對腫瘤內(nèi)皮細胞生長抑制作用有待于動物體內(nèi)實驗的進一步證實,從而有利于新型抑制腫瘤血管內(nèi)皮生長藥物的開發(fā)。

      參考文獻:

      [1]唐月汀,焦曉陽.血管內(nèi)皮生長因子C惡性腫瘤轉(zhuǎn)移中的作用與臨床研究[J].汕頭大學(xué)醫(yī)學(xué)院學(xué)報,2015,25(3):176-178.

      [2]Carassou P,Meijer L,Le Moulec S,et al.Cell cycle and molecular targets:CDK inhibition.Bull Cancer,2012,99(2):163-171.

      [3]Eisenbrand G,Hippe F,Jakobs S,et al.Molecular mechanisms of indirubin and its derivatives:Novel anticancer molecules with their origin in traditional Chinese phytomedicine.J Cancer Res Clin Oncol,2004,130(11):627-635.

      [4]Piebe M,Paulsen F,Jalnke T,et al.Mechanical brushcatheter abrasion method for the isclation and crlture of human conbilical veir endothelial cells.First in vitro results,2001,173(10):955-958.

      [5]秦明春,王若光,秦莉花,等.人臍靜脈內(nèi)皮細胞的體外分離培養(yǎng)及鑒定[J].湖南中醫(yī)藥大學(xué)學(xué)報,2007,27(4):12-15.

      [6]Vailhe B,Vittet D,F(xiàn)eige JJ.In v itrom odels of vascu logenesis and angiogenesis.Lab Invest,2001,81(4):439 – 452.

      [7]Polychronopoulos P,Magiatis P,Skaltsounis A L,et al.Structural basis for the synthesis of indirubins as potent and selective inhibitors of glycogen synthase kinase-3 and cyclin-dependent kinases[J].J Med Chem,2004,47:935-946.

      [8]王通,曾耀英,肇靜嫻,等.靛藍和靛玉紅對小鼠T細胞活化與增殖的影響[J].中國藥科大學(xué)學(xué)報,2005(5):444-447.

      [9]吳琦瑋,葛忠良,高月,等.靛玉紅對腫瘤細胞抑制作用的研究及相關(guān)機制探討[J].天津中醫(yī)藥,2008,25(1):55-56.

      [10]Toya SP,Malik AB.Role of endothelial injury in disease mechanisms and contribution of progenitor cells in mediating endothelial repair[J].Immunobiology,2012,217(5):569-580.

      (收稿日期:2016-10-26)

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